Summary

Оценка здоровья митохондрий в связанных с раком фибробластах, выделенных из 3D-многоклеточных сфероидов опухоли легкого

Published: October 21, 2022
doi:

Summary

Многоклеточные 3D-сфероиды опухолей были получены с клетками аденокарциномы легких, фибробластами и моноцитами с последующим выделением связанных с раком фибробластов (CAF) из этих сфероидов. Изолированные CAF сравнивали с нормальными фибробластами для оценки здоровья митохондрий путем изучения митохондриального трансмембранного потенциала, активных форм кислорода и ферментативной активности.

Abstract

Связанные с раком фибробласты (ЦАФ) являются одними из наиболее распространенных стромальных клеток, присутствующих в микроокружении опухоли, способствуя росту и прогрессированию опухоли. Сложность в микроокружении опухоли, включая секретом опухоли, низкосортное воспаление, гипоксию и окислительно-восстановительный дисбаланс, способствует гетеротипическому взаимодействию и позволяет трансформировать неактивные резидентные фибробласты, чтобы стать активными ЦАФ. CAF метаболически отличаются от нормальных фибробластов (NF), поскольку они более гликолитически активны, производят более высокие уровни активных форм реактивного кислорода (АФК) и чрезмерно экспрессируют экспортер лактата MCT-4, что приводит к открытию митохондриальной проницаемости переходной поры (MPTP). Здесь был описан метод анализа митохондриального здоровья активированных ЦАФ, выделенных из многоклеточных 3D-сфероидов опухоли, состоящих из клеток аденокарциномы легкого человека (A549), моноцитов человека (THP-1) и клеток фибробластов легких человека (MRC5). Сфероиды опухолей распадались через разные промежутки времени и посредством магнитно-активированной сортировки клеток выделяли ЦАФ. Митохондриальный мембранный потенциал ЦАФ оценивали с использованием красителя JC-1, продукции АФК путем окрашивания 2′,7′-дихлордигидрофлуоресцеина диацетата (DCFDA) и активности ферментов в изолированных ЦАФ. Анализ митохондриального здоровья изолированных ЦАФ обеспечивает лучшее понимание обратного эффекта Варбурга, а также может быть применен для изучения последствий митохондриальных изменений CAF, таких как метаболические потоки и соответствующие регуляторные механизмы на гетерогенность рака легких. Таким образом, настоящее исследование выступает за понимание взаимодействия опухоли и стромы на здоровье митохондрий. Это обеспечит платформу для проверки кандидатов на митохондриальные препараты на их эффективность против ЦАФ в качестве потенциальных терапевтических средств в микроокружении опухоли, тем самым предотвращая участие CAF в прогрессировании рака легких.

Introduction

Солидные опухоли состоят из гетерогенных клеточных популяций, которые руководствуются микроокружением опухоли (TME), однако происхождение большинства клеток еще предстоит открыть. В основном стромальные и иммунные клетки (фибробласты, эндотелиальные клетки, моноциты, макрофаги, дендритные клетки, В-клетки, Т-клетки и их подмножества) отражают гетерогенность опухоли при раке легких, молочной железы, почек и других солидныхраковых заболеваниях 1,2,3. Понимание происхождения каждого подтипа и их трансдифференцировочного потенциала крайне необходимо для разработки передовых методов лечения этих видов рака. Анализ этой разнообразной клеточной популяции в биопсии человека представляет собой несколько проблем из-за типа опухоли, места, стадии, ограничения количества образца и специфических для пациента вариаций4. Таким образом, необходима экспериментальная модель, которая не только надежна, но и может имитировать состояние опухоли in vivo, зарекомендовав себя как идеальная для изучения перекрестных помех опухоль-строма и ее участия в патофизиологии заболевания.

Трехмерные (3D) многоклеточные опухолевые сфероидные (MCTS) культуры являются предпочтительной модельной системой опухолей in vitro из-за их сходства с природными аналогами. MCTS может лучше воспроизводить аспекты солидных опухолей, чем модели 2D-клеточных культур, включая их пространственную архитектуру, физиологические реакции, высвобождение растворимых медиаторов, паттерны экспрессии генов и механизмы лекарственной устойчивости. Более того, одним из основных преимуществ MCTS является то, что его можно использовать для изучения гетерогенности опухоли и микроокружения опухоли (TME). Метод подвешивания является наиболее часто используемым инструментом для разработки и анализа MCTS5. В этом методе различные клетки со средой суспендируются в виде капель, что позволяет их расти в согласованном 3D-агрегате и легко доступно для исследования. Техника проста; он не требует много клеток и устраняет потребность в специализированном субстрате, таком как агароза, для развития сфероидов6. Дополнительное преимущество данного метода заключается в воспроизводимости его методики. Кроме того, этот метод также использовался для совместной культивирования смешанных клеточных популяций, таких как эндотелиальные клетки и опухолевые клетки, для моделирования раннегоопухолевого ангиогенеза 7.

В этом исследовании многоклеточные 3D-сфероиды опухолей легких были получены с клетками аденокарциномы легких, фибробластами и моноцитами с использованием метода висячей капли, который имитирует микроокружение опухоли легких. Затем популяция связанных с раком фибробластов (CAF) была выделена для изучения здоровья митохондрий. Основная идея разработки этих сфероидов заключается в том, чтобы изолировать ЦАФ, поскольку перекрестные помехи между клетками в сфероидах могут преобразовать фибробласты в мио-фибробласт-подобное активированное состояние CAF. Во-вторых, это исследование может также показать, как аберрантная выработка АФК и митохондриальная дисфункция приводят нормальные фибробласты к более агрессивному фенотипу CAF. Было обнаружено, что фибробласты, собранные внутри сфероидов опухоли, приобрели миофибробластные характеристики с повышенной активностью АФК и индукцией экспрессии метаболических генов. Этот протокол подчеркивает важность микроокружения опухоли в активации CAF и может быть отличной моделью для генерации in vitro и изучения фенотипических характеристик CAF.

Protocol

1. Клеточная культура Культивирование клеточной линии аденокарциномы легких человека A549 и моноцитарной клеточной линии человека THP-1 в среде RPMI1640 с добавлением 10% FBS и 1% пенициллин-стрептомицина при 37 °C в увлажненной камере с 5% CO2. Культивирование клеток фибробл…

Representative Results

На рисунке 1 показано развитие многоклеточных сфероидов опухоли с использованием трех различных клеточных популяций – A549 (аденокарцинома легких), MRC-5 (фибробласты) и THP-1 (моноциты) – методом висячей капли, как это наблюдалось на 7-й и 10-й день под микроскопом. На 7-й день сфер?…

Discussion

Настоящее исследование вводит развитие многоклеточных сфероидов опухоли, включающих опухолевые клетки, популяцию стромальных клеток (т.е. фибробласты) и популяцию иммунных клеток (т.е. моноциты) с использованием модифицированного метода висячих капель. Фибробласты и моноциты / макроф?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана проектом SERB-Women Excellence Award Project, Индия (SB/WEA-02/2017) и проектом SERB-Early Career Research Award Project, Индия (ECR/2017/000892) для DP. Авторы, LA и SR, признают IIT Ropar и MHRD за их исследовательские стипендии. МК благодарит ICMR за ее исследовательскую стипендию.

Materials

Antibodies
APC anti-human α-SMA R&D systems Cat# IC1420A
Anti-fibroblast microbeads Miltenyi Biotec Cat# 130-050-601
Cell lines
A549 lung adenocarcinoma cells NCCS Pune
MRC-5 fetal lung fibroblasts ATCC CCL-171
THP-1 Human monocytes NCCS Pune
Chemicals
BSA Himedia Cat# 9048-46-8
2,6-dichloroindophenol (DCPIP) SRL Cat# 55287
Calcein-AM Thermo Fisher Scientific Cat# C3099
DAPI Thermo Fisher Scientific Cat# D1306
DCFDA Sigma Cat# D6883
DMEM Gibco Cat# 11995073
DPBS Gibco Cat# 14190-144
EDTA Thermo fisher scientific Cat# 17892
EGTA SRL Cat# 62858
EZcoun Lactate Dehydrogenase Cell Assay Kit HiMedia Cat# CCK036
FBS Gibco Cat# 10082147
Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail (100X) Thermo Fisher Scientific Cat# 87786
HEPES Thermo Fisher Scientific Cat# 15630080
Horse heart Cytochrome c SRL Cat# 81551
Image-iT Red hypoxia reagent Thermo Fisher Scientific Cat# H10498
JC-1 Dye Thermo Fisher Scientific Cat# T3168
KCl Merck Cat# P9541
MgCl2 Merck Cat# M8266
MOPS Thermo Fisher Scientific Cat# 69824
Nacl Sigma-Aldrich Cat# S9888
NADH MB Grade SRL Cat# 54941
NP-40 Thermo Fisher Scientific Cat# 85124
Penicillin/Streptomycin Gibco Cat# 15140122
Phenazine methosulfate (PMS) SRL Cat# 55782
Propidium iodide Thermo fisher scientific Cat# P1304MP
RPMI 1640 Gibco Cat# 11875093
Single Cell Lysis Kit Thermo Fisher Scientific Cat# 4458235
Sodium ascorbate Merck Cat# A7631
Sodium cyanide Sigma Cat# 205222
Sodium Deoxycholate Thermo Fisher Scientific Cat# 89904
Sodium dodecyl sulphate Sigma-Aldrich Cat# L3771
Sodium succinate hexahydrate SRL Cat# 36313
Sucrose Sigma Cat# S0389
SuperScript VILO cDNA synthesis kit Thermo Fisher Scientific Cat# 11754-050
Triton X-100 Sigma Cat# T8787
Trypsin 0.25% EDTA Gibco Cat# 25200072
Universal SYBR Green Supermix BIO-RAD Cat# 172-5124
Plasticware
MACS LS Columns Miltenyi Biotec Cat# 130-042-401
Equipment
Countess II FL Automated Cell Counter Thermo Fisher Scientific Cat# AMQAF1000
EVOS XL core imaging system Thermo Fisher Scientific Serial Number F0518-1727-0191
LAS X software Leica Microsystems
Leica fluorescent inverted microscope s DMi8 automated S/N 424150)
Midi MACS separator Miltenyi Biotec Cat# 130-042-302

Riferimenti

  1. Kim, N., et al. Single-cell RNA sequencing demonstrates the molecular and cellular reprogramming of metastatic lung adenocarcinoma. Nature Communications. 11 (1), 1-5 (2020).
  2. Davidson, S., et al. Single-cell RNA sequencing reveals a dynamic stromal niche that supports tumor growth. Cell Reports. 31 (7), 107628 (2020).
  3. Zhang, Y., et al. Single-cell analyses of renal cell cancers reveal insights into tumor microenvironment, cell of origin, and therapy response. Proceedings of the National Academy of Sciences. 118 (24), (2021).
  4. Bray, L. J., Hutmacher, D. W., Bock, N. Addressing patient specificity in the engineering of tumor models. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 217 (2019).
  5. Timmins, N. E., Nielsen, L. K. Generation of multicellular tumor spheroids by the hanging-drop method. Tissue Engineering. , 141-151 (2007).
  6. Dituri, F., et al. Complex tumor spheroid formation and one-step cancer-associated fibroblasts purification from hepatocellular carcinoma tissue promoted by inorganic surface topography. Nanomaterials. 11 (12), 3233 (2021).
  7. Arora, L., et al. Development of a multicellular 3D tumor model to study cellular heterogeneity and plasticity in NSCLC tumor microenvironment. Frontiers in Oncology. 12, 881207 (2022).
  8. Nurmik, M., Ullmann, P., Rodriguez, F., Haan, S., Letellier, E. In search of definitions: Cancer-associated fibroblasts and their markers. International Journal of Cancer. 146 (4), 895-905 (2020).
  9. Zhang, Y., et al. HIF-1α is necessary for activation and tumour-promotion effect of cancer-associated fibroblasts in lung cancer. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 25 (12), 5457-5469 (2021).
  10. Bu, L., et al. Biological heterogeneity and versatility of cancer-associated fibroblasts in the tumor microenvironment. Oncogene. 38 (25), 4887-4901 (2019).
  11. Whitaker-Menezes, D., et al. Evidence for a stromal-epithelial "lactate shuttle" in human tumors: MCT4 is a marker of oxidative stress in cancer-associated fibroblasts. Cell cycle. 10 (11), 1772-1783 (2011).
  12. Mandujano-Tinoco, E. A., Gallardo-Pérez, J. C., Marín-Hernández, A., Moreno-Sánchez, R., Rodríguez-Enríquez, S. Anti-mitochondrial therapy in human breast cancer multi-cellular spheroids. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Cell Research. 1833 (3), 541-551 (2013).
  13. Bregman, A. A. . Laboratory Investigations in Cell and Molecular Biology. , (2002).
  14. Berry, E. A., Trumpower, B. L. Simultaneous determination of hemes a, b, and c from pyridine hemochrome spectra. Analytical Biochemistry. 161 (1), 1-15 (1987).
  15. Avagliano, A., et al. Metabolic reprogramming of cancer associated fibroblasts: the slavery of stromal fibroblasts. BioMed Research International. , (2018).
  16. Lorusso, G., Rüegg, C. The tumor microenvironment and its contribution to tumor evolution toward metastasis. Histochemistry and Cell Biology. 130 (6), 1091-1103 (2008).
  17. Liu, T., Zhou, L., Li, D., Andl, T., Zhang, Y. Cancer-associated fibroblasts build and secure the tumor microenvironment. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 60 (2019).
  18. Sebastian, A., et al. Single-cell transcriptomic analysis of tumor-derived fibroblasts and normal tissue-resident fibroblasts reveals fibroblast heterogeneity in breast cancer. Cancers. 12 (5), 1307 (2020).
  19. Elyada, E., et al. Cross-species single-cell analysis of pancreatic ductal adenocarcinoma reveals antigen-presenting cancer-associated fibroblasts. Cancer Discovery. 9 (8), 1102-1123 (2019).
  20. Ganguly, D., et al. Cancer-associated fibroblasts: Versatile players in the tumor microenvironment. Cancers. 12 (9), 2652 (2020).
  21. Harryvan, T. J., Verdegaal, E. M., Hardwick, J. C., Hawinkels, L. J., vander Burg, S. H. Targeting of the cancer-associated fibroblast-T-cell axis in solid malignancies. Journal of Clinical Medicine. 8 (11), 1989 (2019).
  22. Santi, A., Kugeratski, F. G., Zanivan, S. Cancer associated fibroblasts: the architects of stroma remodeling. Proteomics. 18 (5-6), 1700167 (2018).

Play Video

Citazione di questo articolo
Arora, L., Kalia, M., Roy, S., Pal, D. Assessment of Mitochondrial Health in Cancer-Associated Fibroblasts Isolated from 3D Multicellular Lung Tumor Spheroids. J. Vis. Exp. (188), e64315, doi:10.3791/64315 (2022).

View Video