Summary

デジタル液滴PCRを用いた環状RNAの定量

Published: September 16, 2022
doi:

Summary

このプロトコルでは、ダイバージェントプライマーを使用して細胞内の環状RNA(circRNA)レベルを正確に定量するためのデジタルドロップレットPCR(dd-PCR)の詳細な方法について説明します。

Abstract

デジタル液滴ポリメラーゼ連鎖反応(dd-PCR)は、最も感度の高い定量方法の1つです。反応を約20,000個の油中水滴に分画し、PCRは個々の液滴で行われます。dd-PCRは、低存在量のターゲットの検出精度の向上、定量のための参照遺伝子の省略、サンプルの技術的な複製の排除、サンプル中の阻害剤に対する高い回復力を示すなど、従来のリアルタイムqPCRに比べていくつかの利点があります。最近、dd-PCRは、遺伝子発現解析および診断のために標的DNAまたはRNAを正確に定量するための最も一般的な方法の1つになっています。環状RNA(circRNA)は、最近発見された共有結合的に閉じたRNA分子の大きなファミリーで、5’末端と3’末端を欠いています。それらは、RNA結合タンパク質およびマイクロRNAのスポンジとして作用することによって遺伝子発現を調節することが示されている。さらに、circRNAは体液中に分泌され、エキソヌクレアーゼに対する耐性があるため、疾患診断のバイオマーカーとして機能します。本稿では、ダイバージェントプライマー設計、RNA抽出、cDNA合成、およびdd-PCR分析を実行して、細胞内の特定の環状RNA(circRNA)レベルを正確に定量する方法を示すことを目的としています。結論として、dd-PCRを用いたcircRNAの正確な定量を実証する。

Introduction

RNAシーケンシング技術と新しい計算アルゴリズムの最近の進歩により、環状RNA(circRNA)1と呼ばれるノンコーディングRNAファミリーの新しいメンバーが発見されました。名前が示すように、circRNAは自由末端を持たない一本鎖RNA分子のファミリーです。これらは、バックスプライシングと呼ばれる非標準的なヘッドツーテールスプライシングによって形成され、上流のスプライスアクセプター部位が下流のスプライスドナー部位と共有結合して安定したRNAサークルを形成します1,2。このプロセスは、環状エクソンの上流および下流に存在する逆Alu反復要素を含むいくつかの要因によって媒介されるか、またはいくつかのスプライシング因子またはRNA結合タンパク質(RBP)によって媒介される可能性があります2,3。エキソン配列またはイントロニック配列のみから生成された環状RNAは、エキソンcircRNAおよび環状イントロニックRNAまたはci-RNAに分類されますが、一部のエキソンcircRNAはイントロンを保持し、エクソン-イントロンcircRNA(EIcircRNA)と呼ばれます3,4。circRNAの機能は、miRNAおよび/またはRBPのスポンジング、転写の調節、ペプチドへの翻訳による細胞機能の調節など、多面的です3,5,6,7。いくつかの報告は、さまざまな疾患や生理学的プロセスにおけるcircRNAの重要性を強調しています8。さらに、組織特異的な発現パターンとエキソヌクレアーゼ消化に対する耐性は、疾患診断のための機能的なバイオマーカーとなり、適切な治療標的としても使用することができます8。健康と病気の調節におけるその重要性を考えると、circRNA発現の正確な定量は時間の必要性です。

生物学的サンプル中のcircRNAを定量するために、いくつかの生化学的方法が開発されている9。circRNA定量のための最も便利で広く受け入れられている方法の1つは、逆転写とそれに続くダイバージェントプライマーペア10を使用した定量的ポリメラーゼ連鎖反応(RT-qPCR)です。しかし、circRNAの大部分は直鎖状mRNAに比べて存在量が少ないため、定量することは困難です11。この問題を克服するために、デジタルドロップレットPCR(dd-PCR)を使用して、特定のサンプル中のcircRNAの数を正確に定量することを目指しました。dd-PCRは、マイクロフルイディクスの原理に従った高度なPCR技術です。油中に複数の水性液滴を生成し、個々の反応12として各液滴中でPCRが起こる。反応は個々の液滴で起こり、液滴リーダーを使用して分析され、目的の遺伝子に対する正または負の液滴の数が得られます12。これは、特定のサンプルにコピーが1つしかない場合でも、目的の遺伝子を正確に定量するための最も感度の高い手法です。阻害剤に対する感度の低下、精度の向上、定量のための参照遺伝子の省略により、従来のqPCR13,14,15よりも有利になります。これは、目的の遺伝子の絶対定量のための研究および診断ツールとして広く使用されています16,17。ここでは、ダイバージェントプライマーを用いたマウスC2C12筋細胞および増殖マウスC2C12筋芽細胞の分化におけるcircRNA定量のための詳細なdd-PCRプロトコルについて説明します。

Protocol

RNAはRNaseに敏感です。したがって、すべての試薬、機器、およびワークスペースはRNaseを含まず、取り扱いには注意が必要です。 1. circRNAのダイバージェントプライマー設計( 図1参照) BEDToolsを使用してcircRNAアノテーションデータから、またはバックスプライス接合座標18,19?…

Representative Results

各サンプル中のcircRNAの絶対数は、エクスポートされたdd-PCRデータから導き出すことができます。リアルタイム定量PCR分析は、分化したC2C12筋管細胞における circBnc2 の差次的発現を示唆した(データは示さず)。ここでは、増殖するC2C12筋芽細胞および筋管における circBnc2 の絶対コピー数を確認したいと考えました。 circBnc2 の発現は2つの条件で比較されるため、同じ試薬と?…

Discussion

CircRNAの研究は、ハイスループットシーケンシング技術の発見により、過去10年間で成長しました。その結果、将来のRNA治療薬の潜在的な分子と見なされています。さらに、癌や心血管疾患を含むいくつかの疾患においてバイオマーカーとして作用することが知られている4,8。しかしながら、circRNAの同定は、その存在量が少なく、親mRNA…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この研究は、生命科学研究所からの壁内資金、DBT研究助成金(BT / PR27622 / MED/30/1961/2018)、およびウェルカムトラスト/ DBTインドアライアンスフェローシップ[IA / I / 18/2/504017]によってサポートされましたアマレシュC.パンダに授与されました。論文を校正してくださった他の研究室メンバーに感謝します。

Materials

1.5 ml microcentifuge tube Tarson 500010
0.2 ml tube strips with cap Tarson 610020, 510073
Filter Tips Tarson 528104
DNase/RNase-Free Distilled Water Thermo Fisher Scientific 10977023
Phosphate-buffered saline (PBS) Sigma P4417
Cell scrapper HiMedia TCP223
Chloroform SRL 96764
DNA diluent HiMedia MB228
Random primers Thermo Fisher Scientific 48190011
dNTP set Thermo Fisher Scientific R0181
Murine RNase inhibitor NEB M0314S
Maxima reverse transcriptase Thermo Fisher Scientific EP0743
QX200 dd-PCR Evagreen Supermix Bio-Rad 1864033
Droplet generation oil for Evagreen Bio-Rad 1864006
PCR Plate Heat Seal, foil, pierceable Bio-Rad 1814040
DG8 Cartridges and Gaskets Bio-Rad 1864007
DG8 Cartridge holder Bio-Rad 1863051
QX200 Droplet Generator Bio-Rad 1864002
ddPCR 96-Well Plates Bio-Rad 12001925
PX1 PCR Plate Sealer Bio-Rad 1814000
C1000 Touch Thermal Cycler with 96–Deep Well Reaction Module Bio-Rad 1851197
QX200 Droplet Reader Bio-Rad 1864003
Quantasoft Software Bio-Rad 1864011
Silica column Umbrella Life Science 38220090
UCSC Genome Browser https://genome.ucsc.edu/
Primer 3 https://primer3.ut.ee/

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Das, A., Das, D., Panda, A. C. Quantification of Circular RNAs Using Digital Droplet PCR. J. Vis. Exp. (187), e64464, doi:10.3791/64464 (2022).

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