Summary

Model af iskæmi og reperfusionsskade hos kaniner

Published: November 03, 2023
doi:

Summary

Denne undersøgelse viser en meget reproducerbar dyremodel for akut regional myokardieiskæmi og reperfusionsskade hos kaniner ved hjælp af en venstre mini-thoracotomi til overlevelsestilfælde eller en midterlinjesternotomi til ikke-overlevelsestilfælde.

Abstract

Protokollen her giver en enkel, meget replikerbar metode til at inducere in situ akut regional myokardieiskæmi hos kaninen til ikke-overlevelses- og overlevelseseksperimenter. New Zealand White voksen kanin er bedøvet med atropin, acepromazin, butorphanol og isofluran. Dyret intuberes og anbringes på mekanisk ventilation. Et intravenøst kateter indsættes i den marginale ørevene til infusion af medicin. Dyret er præmedicineret med heparin, lidokain og lakteret Ringers opløsning. En carotis cut-down udføres for at opnå arteriel linjeadgang til blodtryksovervågning. Udvalgte fysiologiske og mekaniske parametre overvåges og registreres ved kontinuerlig realtidsanalyse.

Med dyret bedøvet og fuldt bedøvet udføres enten et fjerde interkostalt rum lille venstre thoracotomi (overlevelse) eller midterlinie sternotomi (ikke-overlevelse). Perikardiet åbnes, og den venstre forreste nedadgående (LAD) arterie er placeret.

En polypropylensutur føres rundt om den anden eller tredje diagonale gren af LAD-arterien, og polypropylenfilamentet trækkes gennem et lille vinylrør, der danner en snare. Dyret udsættes for 30 minutters regional iskæmi, opnået ved at lukke LAD ved at stramme snaren. Myokardieiskæmi bekræftes visuelt af epikardiets regionale cyanose. Efter regional iskæmi løsnes ligaturen, og hjertet får lov til at perfusere igen.

For både overlevelses- og ikke-overlevelsesforsøg kan myokardiefunktionen vurderes via en ekkokardiografi (ECHO) måling af den fraktionelle forkortelse. For ikke-overlevelsesundersøgelser kan data fra sonomikrometri indsamlet ved hjælp af tre digitale piezoelektriske ultralydssonder implanteret i det iskæmiske område og venstre ventrikel udviklet tryk (LVDP) ved hjælp af et apikalt indsat venstre ventrikel (LV) kateter kontinuerligt erhverves til evaluering af henholdsvis den regionale og globale myokardiefunktion.

Til overlevelsesundersøgelser lukkes snittet, en thoracentese med venstre nål udføres til pleural luftevakuering, og postoperativ smertekontrol opnås.

Introduction

Hjerte-kar-sygdomme er den største dødsårsag i verden og bidrager til over 18 millioner dødsfald hvert år 1,2,3. Akut myokardieinfarkt (MI) er en almindelig medicinsk nødsituation, der udvikler sig, når en blodprop eller et stykke atheromatøs plak blokerer blodgennemstrømningen i en koronararterie. Dette forårsager regional myokardieiskæmi i det område, som arterien perfuserer.

Denne undersøgelse beskriver en protokol, der anvender en enkel og pålidelig metode til at skabe in situ akut regional myokardieiskæmi i en kaninmodel til ikke-overlevelses- og overlevelsesforsøg. Det oprindelige mål med denne metode var at evaluere virkningerne af mitokondrietransplantation på modulerende myokardienekrose og øge den post-iskæmiske hjertefunktion efter en iskæmisk begivenhed. Tidligere forskning har vist forekomsten af mitokondrieændringer og et hurtigt fald i fosfatniveauer med høj energi efter iskæmi og en reduktion i iltforsyningen, hvilket resulterer i et drastisk fald i hjerteenergilagrene4. Forskere har forsøgt at forbedre post-iskæmisk funktion og mindske myokardievævsnekrose ved hjælp af farmakologiske indgreb og / eller procedureteknikker, men disse teknikker giver begrænset kardiobeskyttelse og har minimal indvirkning på mitokondrieskader og dysfunktion 5,6,7. Vores team og andre har tidligere vist, at mitokondrieskader primært opstår under iskæmi, og at kontraktil genopretning kan forbedres, og myokardieinfarktstørrelsen faldt med bevarelsen af mitokondriel åndedrætsfunktion under reperfusion 8,9,10. Således antog vi, at mitokondrietransplantation fra væv, der ikke er påvirket af iskæmi til området med iskæmi før reperfusion, ville give en alternativ tilgang til at reducere myokardienekrose og forbedre myokardiefunktionen. Heri beskriver vi protokollen, der bruges til at teste denne teori og de repræsentative resultater opnået fra vores indledende undersøgelsesanalyse.

Desuden har flere forskere fokuseret på andre emner, der er integreret i at definere virkningen af myokardieiskæmi-reperfusionsskade og etablere passende terapeutiske interventioner. Et sådant forskningsområde er prækonditionering. Myokardial iskæmisk prækonditionering er en kardiobeskyttende mekanisme aktiveret af kort iskæmisk stress, der resulterer i en reduktion i hastigheden af hjertecellenekrose under efterfølgende episoder af langvarig iskæmi. Disse mekanismer kan aktiveres ved enten hypoxi eller koronar okklusion. Mandel et al. demonstrerede, at hypoxisk-hyperoxisk prækonditionering hjalp med at opretholde balancen mellem nitrogenoxidmetabolitter, reducerede endothelin-1 hyperproduktion og understøttede organbeskyttelse11. Desuden er begrebet fjerniskæmisk prækonditionering, et fænomen, hvor enkeltorganprækonditionering giver systemisk beskyttelse, blevet undersøgt. Ali et al. fandt, at hos patienter, der gennemgik elektiv åben abdominal aortaaneurismereparation, fjernkonditionering, udført ved intermitterende krydsklemme af den fælles iliacarterie for at tjene som stimulus, reducerede forekomsten af postoperativ myokardieskade, myokardieinfarkt og nedsat nyrefunktion12.

Kaninmodeller tilbyder potentielle fordele i forhold til modeller med andre arter og er blevet brugt i flere forskellige scenarier i årtier, herunder induktion af arytmier, globale og regionale iskæmiske modeller og hjertekontraktionsforskning, blandt andet13,14,15. Selvom kaninhjertet er mindre end en hund eller gris, er det stort nok til nemt at udføre kirurgiske procedurer til en meget lavere pris13. Kaninhjertet bruges ofte, da det er tæt parallelt med det menneskelige hjerte; Faktisk har den en lignende metabolisk hastighed, udtrykker β-myosin tung kæde og mangler signifikant myokardial xanthinoxidase16. Teknikken heri beskrevet til at fremkalde regional myokardieiskæmi er enkel, gentagelig og omkostningseffektiv. Denne metode giver mulighed for både ikke-overlevelses- og overlevelsestilfælde, da kun regional iskæmi induceres snarere end global iskæmi, og de nødvendige materialer er ikke-specialiserede. To forskellige kirurgiske tilgange (dvs. sternotomi og mini-thoracotomi) kan anvendes, hvilket giver operatøren og eksperimentelle protokoller mere frihed med hensyn til undersøgelsesdesignet. Derudover kræver proceduren ikke brug af en kardiopulmonal bypass. I denne sammenhæng er minimalt invasive tilgange til koronararterie bypass podning blevet værdifulde alternativer for patienter med behov for multi-kar revaskularizaiton,17,18. Denne model kan bruges til at studere forskellene mellem disse tilgange og give et dyrebaseret læringsværktøj til kirurgiske praktikanter. Derudover kan udførelse af hjertekateterisering ved hjælp af denne model være nyttig til fysiologisk forskning og / eller kirurgisk træning.

Vores model giver en metode til applikationer, hvor inducering af regional myokardieiskæmi og efterfølgende måling af infarktstørrelse, myokardiefunktion og cellulære ændringer er af betydning. Med denne protokol har vi været i stand til at evaluere flere markører for cellulær funktion og tilpasning til iskæmi og det foreslåede terapeutiske indgreb (dvs. mitokondrietransplantation) ved at undersøge internaliseringen af organeller, iltforbrug, fosfatsyntese med høj energi og induktion af cytokinmediatorer og proteomiske veje. Disse resultater er vigtige for at bevare myokardieenergi, cellelevedygtighed og hjertefunktion og giver mulighed for objektiv evaluering af kardioprotektive teknikker efter iskæmi-reperfusionsskade. Denne model kan bruges til at studere lignende biologiske veje og alternativer inden for post-iskæmisk myokardiepatologi og genopretning.

Målet med denne protokol er at tilvejebringe en meget reproducerbar metode til at inducere in situ akut regional myokardieiskæmi hos kaninen til ikke-overlevelses- og overlevelsesforsøg. Denne model giver en metode med høj overlevelse, lav intraoperativ dødelighed og minimal sygelighed19. Andre modeller for akut regional myokardieiskæmi er blevet beskrevet ved hjælp af radioaktivt mærkede materialer, kontrastmidler, magnetisk resonansbilleddannelse eller computersimuleringer20,21,22. Vores protokol giver en pålidelig og enkel metode, der er omkostningseffektiv, konsekvent reproducerbar og har en lav teknisk efterspørgsel og dermed kan udføres af efterforskere uden kirurgisk ekspertise. Denne protokol rummer enten et overlevelsesprojekt ved hjælp af en venstre mini-thoracotomi eller en ikke-overlevelsesmodel ved hjælp af en midterlinjesternotomi.

Protocol

Denne undersøgelse blev udført i henhold til National Institutes of Health’s retningslinjer for dyrepleje og brug og blev godkendt af Boston Children’s Hospitals Animal Care and Use Committee (protokol 20-08-4247R). Alle dyrene modtog human pleje i overensstemmelse med vejledningen om pleje og brug af forsøgsdyr. 1. Dyrearter, bedøvelsesmidler og smertestillende midler Dyrearter: Brug New Zealand hvide kaniner (vildtype stamme; kvindelig køn; seksuelt moden 15-2…

Representative Results

Efter protokollen (figur 1) blev myokardieiskæmi bekræftet straks ved den direkte visualisering af cyanose af epikardiet. Standard EKG’er (tre lemmer: I, II og III og tre beregnede forstærkede ledninger: aVL, aVR og aVF) blev registreret kontinuerligt præiskæmi, under iskæmi og ved reperfusion (figur 2). EKG’erne demonstrerer takykardi, arytmier (dvs. ventrikelflimmer), ledningssystemdefekter (dvs. bundtgrenblok), udvikling af i…

Discussion

Vores protokol demonstrerer en pålidelig metode til udførelse af akut regional myokardieiskæmi hos kaninen. Den venstre mini-thoracotomi-tilgang er ideel til overlevelsestilfælde, hvor snittet og tilhørende smerte skal minimeres. Det er vigtigt, at diuretisk behandling ikke var nødvendig før ekstubation, og der var ingen dødelighed intraoperativt i ikke-overlevelsesgruppen eller efter 4 uger postoperativt i overlevelsesgruppen. Når udformningen af protokollen kræver et ikke-overlevelsestilfælde, eller når der…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Den oprindelige undersøgelse, hvor denne protokol blev brugt, blev støttet af National Heart, Lung, and Blood Institute Grants HL-103642 og HL-088206

Materials

#10 blade Bard Parker 371210
#11 blade Fisher Scientific B3L
22 G PIV needle BD Insyte 381423
Acepromazine VETONE NDC 13985-587-50 0.5 mg/kg IM and IV
Aline pressure bag Infu-Stat 2139
Angiocath Becton Dickinson 382512
Arterial Catheter Teleflex MC-004912
Atropine Hikma Pharmaceuticals NDC 0641-6006-01  0.01 mg/kg IM
Betadine and 70% isopropyl alcohol McKesson NDC 68599-2302-6
Blood gas machine Siemens MRK0025
Bovie Valleylab E6008
Bulldog clamps World Precision Instruments 14119
Bupivacaine Auromedics NDC 55150-249-50  3 mg/kg IM
Butorphanol Roxane NDC 2054-3090-36 0.5 mg/kg IM
Clear acetate sheet Oxford Instruments ID 51-1625-0213
Clipers Andis AGC2
DeBakey forceps Integra P6280
Echocardiography machine Philips IE33 F1
Electrocardiography machine Meditech MD908B
Endotracheal tube Medline #922774
Fentanyl West-Ward NDC 0641-6030-01 1–4 µg/kg transdermal patch
Formaldehyde solution 10% Epredia 94001
Glass plates  United Scientific B01MUHX6MR
Heparin Sodium Sagent NDC 69-0058-02 1000U in 1 mL 3 mg/kg
Hot water blanket 3M 55577
Isoflurane Penn Veterinary Supply, INC NDC 50989-606-15 1%–3%
Ketamine Dechra NDC 42023-138-10 10 mg/kg IV
Lab Chart 7 Acquisition Software Adinstruments
Lactated Ringer's solution ICUmedical NDC 0990-7953-09 10 mL/kg/h
Laryngoscope Welch Allyn 68044
Left ventricule lumen catheter 3Fr McKesson 385764-EA
Lidocaine (1%) Pfizer 4276-01 1–1.5 mL/kg IV
LVDP transducer Edward PDP-ED
Marking pen Viscot 1451SR-100 Unsterile
Mayo scissors Mayo S7-1098
Medetomidine Entireoly Pets Pharmacy NDC 015914-005-01 0.25 mg/kg IM
Metzenbaum scissors Cole-Parmer UX-10821-05
Monastra. Blue pigment 98% Chemsavers MBTR1100G
Monocryl 5-0 Ethicon Y463G
Mosquito clamp Shioda 802N
PDS 3-0 Ethicon 42312201
Piezoelectric sonomicrometry crystals Sonometrics Small 2mm round
Plegets DeRoyal 32-363
Povuine Iodine Prep Solutions Medline MDS093940
Precision vaporized system face mask Yuwell B07PNH69BF
Prolene 3-0 Ethicon 8665G
Proline 5-0 Ethicon 8661G
Pulse oximetry probe Masimo 9216-U
Rib spreader Medline MDS5621025
S12 Pediatric Sector Probe Phillips 21380A
Sonomicrometer Sonometrics BZ10123724
Sterile gauze Medline 3.00802E+13
Sterile towels McKesson MON 277860EA
Sternal retractor Medline MDS5610321
Sutures for closure J&J Dental 8698G
Telemetriy monitor Meditech MD908B
Temperature probe Omega KHSS-116G-RSC-12
Triphenyl tetrazolium chloride (1%) Millipore MFCD00011963
Ventilator MedGroup MSLGA 11
Vicryl 2-0 Ethicon V635H
Vinyl tubing ABE DISW 3001

Riferimenti

  1. Selvin, E., Erlinger, T. P. Prevalence of and risk factors for peripheral arterial disease in the United States: Results from the National Health and Nutrition Examination Survey, 1999-2000. Circulation. 110 (6), 738-743 (2004).
  2. Bolli, R., et al. Myocardial protection at a crossroads: The need for translation into clinical therapy. Circulation Research. 95 (2), 125-134 (2004).
  3. Cohn, J. N., et al. Report of the National Heart, Lung, and Blood Institute Special Emphasis Panel on Heart Failure Research. Circulation. 95 (4), 766-770 (1997).
  4. Rousou, A. J., Ericsson, M., Federman, M., Levitsky, S., McCully, J. D. Opening of mitochondrial KATP channels enhances cardioprotection through the modulation of mitochondrial matrix volume, calcium accumulation, and respiration. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 287 (5), H1967-H1976 (2004).
  5. Rao, V., et al. Insulin cardioplegia for elective coronary bypass surgery. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 119 (6), 1176-1184 (2000).
  6. Vinten-Johansen, J., Zhao, Z. Q., Jiang, R., Zatta, A. J. Myocardial protection in reperfusion with postconditioning. Expert Review of Cardiovascular Therapy. 3 (6), 1035-1045 (2005).
  7. Wakiyama, H., et al. Selective opening of mitochondrial ATP-sensitive potassium channels during surgically induced myocardial ischemia decreases necrosis and apoptosis. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 21 (3), 424-433 (2002).
  8. Chen, Q., Moghaddas, S., Hoppel, C. L., Lesnefsky, E. J. Reversible blockade of electron transport during ischemia protects mitochondria and decreases myocardial injury following reperfusion. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 319 (3), 1405-1412 (2006).
  9. Lesnefsky, E. J., et al. rather than reperfusion, inhibits respiration through cytochrome oxidase in the isolated, perfused rabbit heart: Role of cardiolipin. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 287 (1), H258-H267 (2004).
  10. McCully, J. D., Rousou, A. J., Parker, R. A., Levitsky, S. Age- and gender-related differences in mitochondrial oxygen consumption and calcium with cardioplegia and diazoxide. The Annals of Thoracic Surgery. 83 (3), 1102-1109 (2007).
  11. Mandel, I. A., et al. Influence of hypoxic and hyperoxic preconditioning on endothelial function in a model of myocardial is-chemia-reperfusion injury with cardiopulmonary bypass (Experimental study). International Journal of Molecular Sciences. 21 (15), 5336 (2020).
  12. Ali, Z. A., et al. Remote ischemic preconditioning reduces myocardial and renal injury after elective abdominal aortic aneurysm repair: A randomized controlled trial. Circulation. 116, 98-105 (2007).
  13. Pogwizd, S. M., Bers, D. M. Rabbit models of heart disease. Drug Discovery Today: Disease Models. 5 (3), 185-193 (2008).
  14. Tanaka, K., Hearse, D. J. Reperfusion-induced arrhythmias in the isolated rabbit heart: characterization of the influence of the duration of regional ischemia and the extracellular potassium concentration. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 20 (3), 201-211 (1988).
  15. Milani-Nejad, N., Janssen, P. M. L. Small and large animal models in cardiac contraction research: advantages and disadvantages. Pharmacology & Therapeutics. 141 (3), 235-249 (2014).
  16. Gupta, M. P. Factors controlling cardiac myosin-isoform shift during hypertrophy and heart failure. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 43 (4), 388-403 (2007).
  17. Lapierre, H., Chan, V., Sohmer, B., Mesana, T. G., Ruel, M. Minimally invasive coronary artery bypass grafting via a small thoracotomy versus off-pump: A case-matched study. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 40 (4), 804-810 (2011).
  18. Aubin, H., Akhyari, P., Lichtenberg, A., Albert, A. Additional right-sided upper "half-mini-thoracotomy" for aortocoronary bypass grafting during minimally invasive multivessel revascularization. Journal of Cardiothoracic Surgery. 10, 130 (2015).
  19. Hu, N., et al. Ligation of the left circumflex coronary artery with subsequent MRI and histopathology in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 49 (6), 838-844 (2010).
  20. Sievers, R. E., et al. A model of acute regional myocardial ischemia and reperfusion in the rat. Magnetic Resonance in Medicine. 10 (2), 172-181 (1989).
  21. Rodríguez, B., Trayanova, N., Noble, D. Modeling cardiac ischemia. Annals of the New York Academy of Sciences. 1080, 395-414 (2006).
  22. Sinusas, A. J., et al. Quantification of area at risk during coronary occlusion and degree of myocardial salvage after reperfusion with technetium-99m methoxyisobutyl isonitrile. Circulation. 82 (4), 1424-1437 (1990).
  23. Masuzawa, A., et al. Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 304 (7), H966-H982 (2013).
  24. Pombo, J. F., Troy, B. L., Russell, R. O. J. Left ventricular volumes and ejection fraction by echocardiography. Circulation. 43 (4), 480-490 (1971).
  25. McCully, J. D., Wakiyama, H., Hsieh, Y. J., Jones, M., Levitsky, S. Differential contribution of necrosis and apoptosis in myocardial ischemia-reperfusion injury. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 286 (5), H1923-H1935 (2004).
  26. Masuzawa, A., et al. Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 304 (7), 966-982 (2013).
  27. Abarbanell, A. M., et al. Animal models of myocardial and vascular injury. Journal of Surgical Research. 162 (2), 239-249 (2010).
  28. Pirat, B., et al. A novel feature-tracking echocardiographic method for the quantitation of regional myocardial function: Validation in an animal model of ischemia-reperfusion. Journal of the American College of Cardiology. 51 (6), 651-659 (2008).
  29. Verdouw, P. D., vanden Doel, M. A., de Zeeuw, S., Duncker, D. J. Animal models in the study of myocardial ischaemia and ischaemic syndromes. Cardiovascular Research. 39 (1), 121-135 (1998).
  30. Bolukoglu, H., et al. An animal model of chronic coronary stenosis resulting in hibernating myocardium. The American Journal of Physiology. 263, H20-H29 (1992).
  31. Heyndrickx, G. R., Millard, R. W., McRitchie, R. J., Maroko, P. R., Vatner, S. F. Regional myocardial functional and electrophysiological alterations after brief coronary artery occlusion in conscious dogs. Journal of Clinical Investigation. 56 (4), 978-985 (1975).
check_url/it/64752?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Alemany, V. S., Recco, D. P., Emani, S. M., del Nido, P. J., McCully, J. D. Model of Ischemia and Reperfusion Injury in Rabbits. J. Vis. Exp. (201), e64752, doi:10.3791/64752 (2023).

View Video