Summary

Évaluation rapide de la cytotoxicité in vitro du récepteur de l’antigène chimérique exprimant le jurkat à l’aide de l’imagerie fluorescente

Published: October 27, 2023
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Summary

Un protocole pour évaluer la destruction quantitative des cellules tumorales par les cellules de Jurkat exprimant le récepteur de l’antigène chimérique (CAR) ciblant l’antigène tumoral unique. Ce protocole peut être utilisé comme plate-forme de criblage pour l’optimisation rapide des constructions de charnières CAR avant la confirmation dans les lymphocytes T dérivés du sang périphérique.

Abstract

Les lymphocytes T à récepteur antigénique chimérique (CAR) sont à l’avant-garde de l’oncologie. Un CAR est constitué d’un domaine de ciblage (généralement un fragment variable à chaîne unique, scFv), accompagné d’un linker intra-chaîne, suivi d’une charnière, d’une membrane et d’un domaine costimulateur. La modification du domaine de liaison intra-chaîne et de charnière peut avoir un effet significatif sur la destruction médiée par le CAR. Compte tenu des nombreuses options différentes pour chaque partie d’une construction CAR, il existe un grand nombre de permutations. La fabrication de cellules CAR-T est un processus long et coûteux, et la fabrication et le test de nombreuses constructions représentent un investissement important en temps et en matériel. Ce protocole décrit une plate-forme permettant d’évaluer rapidement les constructions CAR optimisées pour les charnières dans les cellules Jurkat (CAR-J). Les cellules Jurkat sont une lignée de lymphocytes T immortalisée avec une absorption élevée des lentivirus, permettant une transduction efficace du CAR. Nous présentons ici une plate-forme permettant d’évaluer rapidement CAR-J à l’aide d’un imageur fluorescent, suivie d’une confirmation de la cytolyse dans les lymphocytes T dérivés de PBMC.

Introduction

La thérapie cellulaire CAR-T s’est révélée très prometteuse dans les hémopathies malignes, comme en témoignent les 6 produits CAR-T approuvés par la FDA depuis 2017, comme l’a rapporté le National Cancer Institute1. Il existe de nombreuses cellules CAR-T dans les essais cliniques pour cibler les tumeurs solides. L’ingénierie de nouvelles cibles CAR et l’optimisation de la construction CAR sont essentielles à l’efficacité d’une cellule CAR-T. Le choix de la construction CAR idéale pour chaque application est essentiel pour cibler avec précision les antigènes associés à la tumeur (TAA) tout en évitant de faibles niveaux d’expression de TAA dans les tissus normaux2.

Une construction CAR est principalement constituée de cinq compartiments : (1) le domaine extracellulaire à fragment variable à chaîne unique (scFv) ciblant l’antigène tumoral ; (2) domaine de charnière ; (3) domaine transmembranaire ; (4) domaine costimulateur des lymphocytes T cytoplasmiques intracellulaires ; et (5) domaine de signalisation. La modification de chacun de ces domaines affecte la précision de l’engagement de la cellule CAR-T avec sa cellule cible3. Par conséquent, l’évaluation de la cytotoxicité et de la réactivité croisée de ces constructions CAR in vitro est essentielle pour choisir la bonne construction pour progresser vers des expériences in vivo. Les méthodes actuelles d’évaluation de la cytolyse par les lymphocytes T comprennent le test de libération de 51Cr, le test de libération de lactate déshydrogénase, le test d’imagerie bioluminescente, l’analyse cellulaire basée sur l’impédance en temps réel et le test de cytométrie en flux cellulaire 4,5. La plate-forme d’imagerie fluorescente décrite ici identifie le nombre de cellules vivantes par rapport aux cellules mortes, ce qui est une quantification directe de la cytolyse des lymphocytes T par opposition à une méthode indirecte d’évaluation de la cytolyse par les lymphocytes T.

Voici une technique simple, rentable, rapide et à haut débit avec une intervention minimale pour évaluer la cytotoxicité des cellules de Jurkat exprimant le récepteur du facteur de croissance épidermique (EGFR) CAR contre les cellules de cancer du sein triple négatif (TNBC) MDA-MB-231 et les cellules EGFR CRISPR knock out MDA-MB-231. Les cellules Jurkat sont des lymphocytes T humains immortalisés6 qui ont été largement utilisés pour étudier les mécanismes d’activation et de signalisation des lymphocytes T7. De plus, les cellules de Jurkat ont été utilisées pour des tests in vitro de CAR dans de multiples études 8,9,10,11. Les cellules de Jurkat sont facilement transduites par les lentivirus et ont une prolifération soutenue, et ce système a été exploité pour optimiser le domaine charnière de diverses constructions EGFR CAR.

Ce test peut être utilisé pour le criblage de plusieurs constructions CAR ciblant divers antigènes tumoraux et utilisé contre plusieurs lignées cellulaires tumorales adhérentes et dans divers rapports effecteur/tumeur (E :T). De plus, plusieurs points temporels peuvent être évalués et le nombre de répétitions peut être modifié pour identifier le meilleur abattage parmi les différentes constructions de CAR. Les meilleures constructions doivent être confirmées à l’aide de cellules T CD3 dérivées de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC). L’objectif global derrière le développement de cette méthode est d’optimiser rapidement la géométrie de la charnière CAR à haut débit en surmontant des obstacles tels qu’une faible efficacité de transduction, suivie d’une confirmation dans les cellules T dérivées de PBMC.

Protocol

REMARQUE : Tous les travaux de culture cellulaire sont effectués dans une enceinte de sécurité biologique avec une blouse de laboratoire, des gants et en suivant les techniques aseptiques standard. 1. Génération de Jurkats exprimant le CAR (CAR-J) Achetez des cellules Jurkat, clonez E6-1 auprès d’ATCC. Décongeler 1 x 106 cellules dans une fiole T-75 et les cultiver dans des fioles T-75. Maintenez-les en suspension à raison de 0,6 x 106…

Representative Results

Une plage de rapport E :T comprise entre 1 :8 et 8 :1 pour CAR-J1 a été évaluée à 72 h et ciblait l’EGFR sur les cellules TNBC MDA-MB-231. Les cellules Jurkat ont été transduites avec le lentivirus CAR avec du polybrène pour générer des cellules CAR-J comme décrit à l’étape 2. La cytotoxicité du CAR-J1 augmentait significativement avec un rapport E :T plus élevé, sans différence dans la destruction à un rapport de 1 :8 (Figure 1). Plus de 50 % des abattages ont ét…

Discussion

Nous avons proposé ici une méthode rapide pour évaluer efficacement l’activité cytolytique spécifique à la cible induite par l’expression de CAR dans les cellules de Jurkat. Toutes les constructions CAR ont le même scFv mais des domaines de charnière et de transmembrane différents dont il a été démontré qu’ils affectent la puissance des cellules CAR-T13. Une évaluation plus poussée de la destruction non spécifique par ces CAR-J a été effectuée en les cultivant avec des cel…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

MDA-MB-231 était un cadeau aimable du Dr Shane Stecklein. Les auteurs reconnaissent le financement du Centre de cancérologie de l’Université du Kansas pour mener cette recherche.

Materials

15 mL Conical Tube (Sterile) Midwest Scientific #C15B Any similar will work
50 mL Conical Tube (Sterile) Thermo Scientific 339652 Any similar will work
Black/Clear 96 well plate Falcon 353219 Celligo has a list of compatible plates
Celigo 4 Channel Imaging Cytomenter Nexcelcom Bioscience 200-BFFL-5C Any similar will work
Celigo Software Nexcelcom Bioscience Version 5.3.0.0 Any similar will work
Cell Culture Incubator Thermo Scientific HeraCell 160i Any similar will work
Cell Culture Treated Flasks (T75, various sizes, Sterile) TPP 90076 Any similar will work
CFSE Tonbo 13-0850-U500 Any similar will work
Cytek Muse Cell Analyzer Cytek 0500-3115 Any similar will work
DMEM Gibco 11995-040 Any similar will work
FBS Gemini bio-products 900-108 Any similar will work
Flow Cytometer Cytek, BD, etc Aurora, LSR II, etc Any similar will work
FlowJo Sortware Becton Dickinson & Company  Version 10.7.1 Any similar will work
Fluorobrite DMEM Gibco A18967-01 Any similar will work
GraphPad Software GraphPad Version 9.3.1 (471) Any similar will work
Multichanel Pipette Thermo Scientific Finnpipette F2 Any similar will work
PBS Gibco 10010-031 Any similar will work
PenStrep Gibco 15070-063 Any similar will work
Pipette tips (Sterile, filtered, 1 mL, Various sizes) Pr1ma PR-1250RK-FL, etc Any similar will work
Pipettors  Thermo Scientific Finnpipette F2 Any similar will work
Propidium Iodide Invitrogen P1304MP Any similar will work
RPMI Corning 10-041-cv Any similar will work
Serological Pipette Aid Drummond Scientific 4-000-105 Any similar will work
Serological Pipettes (Sterile, various sizes) Pr1ma PR-SERO-25, etc Any similar will work
Sodium Pyruvate Corning 25-000-CI Any similar will work
Sterile Reservoirs Midwest Scientific RESE-2000 Any similar will work
Table top centrifuge Eppendorf 5810R Any similar will work

Riferimenti

  1. Mitra, A. From bench to bedside: the history and progress of CAR T cell therapy. Front Immunol. 14, 1188049 (2023).
  2. Labanieh, L., Mackall, C. L. CAR immune cells: design principles, resistance and the next generation. Nature. 614, 635-648 (2023).
  3. Sterner, R. C., Sterner, R. M. CAR-T cell therapy: current limitations and potential strategies. Blood Cancer J. 11 (4), 69 (2021).
  4. Lisby, A. N., Carlson, R. D., Baybutt, T. R., Weindorfer, M., Snook, A. E. . Methods in Cell Biology. 167, 81-98 (2022).
  5. Kiesgen, S., Messinger, J. C., Chintala, N. K., Tano, Z., Adusumilli, P. S. Comparative analysis of assays to measure CAR T-cell-mediated cytotoxicity. Nat Protoc. 16 (3), 1331-1342 (2021).
  6. Schneider, U., Schwenk, H. U., Bornkamm, G. Characterization of EBV-genome negative "null" and "T" cell lines derived from children with acute lymphoblastic leukemia and leukemic transformed non-Hodgkin lymphoma. Int J Cancer. 19 (5), 621-626 (1977).
  7. Abraham, R. T., Weiss, A. Jurkat T cells and development of the T-cell receptor signalling paradigm. Nat Rev Immunol. 4 (4), 301-308 (2004).
  8. Bloemberg, D., et al. A high-throughput method for characterizing novel chimeric antigen receptors in Jurkat cells. Mol Ther Methods Clin Dev. 16, 238-254 (2020).
  9. Lipowska-Bhalla, G., Gilham, D. E., Hawkins, R. E., Rothwell, D. G. Isolation of tumor antigen-specific single-chain variable fragments using a chimeric antigen receptor bicistronic retroviral vector in a Mammalian screening protocol. Hum Gene Ther Methods. 24 (6), 381-391 (2013).
  10. Alonso-Camino, V., et al. CARbodies: Human antibodies against cell surface tumor antigens selected from repertoires displayed on T cell chimeric antigen receptors. Mol Ther Nucleic Acids. 2 (5), e93 (2013).
  11. Jahan, F., et al. Using the Jurkat reporter T cell line for evaluating the functionality of novel chimeric antigen receptors. Front Mol Med. 3, 1070384 (2023).
  12. Subham, S., et al. EGFR as a potent CAR T target in triple negative breast cancer brain metastases. Breast Cancer Res Treat. 197 (1), 57-69 (2023).
  13. Guedan, S., Calderon, H., Posey, A. D., Maus, M. V. Engineering and Design of Chimeric Antigen Receptors. Mol Ther Methods Clin Dev. 12, 145-156 (2019).
  14. Zaritskaya, L., Shurin, M. R., Sayers, T. J., Malyguine, A. M. New flow cytometric assays for monitoring cell-mediated cytotoxicity. Expert Rev Vaccines. 9 (6), 601-616 (2010).
  15. Shan, X., et al. Deficiency of PTEN in Jurkat T cells causes constitutive localization of Itk to the plasma membrane and hyperresponsiveness to CD3 stimulation. Mol Cell Biol. 20 (18), 6945-6957 (2000).
  16. Wu, W., et al. Multiple signaling roles of CD3ε and its application in CAR-T cell therapy. Cell. 182 (4), 855-871 (2020).
  17. Wang, D. Glioblastoma-targeted CD4+ CAR T cells mediate superior antitumor activity. JCI Insight. 3 (10), e99048 (2018).
  18. Haggerty, T. J., Dunn, I. S., Rose, L. B., Newton, E. E., Kurnick, J. T. A screening assay to identify agents that enhance T-cell recognition of human melanomas. Assay Drug Dev Technol. 10 (2), 187-201 (2012).
  19. Spencer, V. A., Kumar, S., Paszkiet, B., Fein, J., Zmuda, J. F. Cell culture media for fluorescence imaging: Striking the right balance between signal strength and long-term cell health. Genetic Engineer Biotech News. 34 (10), 16-18 (2014).
  20. . Immune Cell Killing Assays for Live-Cell Analysis Available from: https://www.sartorius.com/en/applications/life-science-research/cell-analysis/live-cell-assays/cell-function/immune-cell-killing (2023)
  21. Kessel, S., et al. High-throughput 3D tumor spheroid screening method for cancer drug discovery using celigo image cytometry. SLAS Technol. 22 (4), 454-465 (2017).
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Citazione di questo articolo
Subham, S., Jeppson, J. D., Gibbs, B. K., Babai, J., Alker, R., Godwin, A. K., Akhavan, D. Rapid In Vitro Cytotoxicity Evaluation of Jurkat Expressing Chimeric Antigen Receptor using Fluorescent Imaging. J. Vis. Exp. (200), e65560, doi:10.3791/65560 (2023).

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