Summary

Single Cell Transfectie in kippenembryo's

Published: September 25, 2010
doi:

Summary

Met behulp van fijne punt micropipetten we plasmide DNA injecteren in deelgebieden van de kip somieten of neurale buizen. De concentratie van het plasmide is aangepast aan enkele getransfecteerde cellen te genereren. Vervolgens hebben we laten de cellen zich ontwikkelen tot klonale populaties.

Abstract

Een centraal thema in de ontwikkelingsbiologie is de diversificatie van de geslachten en de opheldering van de onderliggende moleculaire mechanismen. Dit houdt een grondige analyse van het lot van afzonderlijke cellen in normale en experimentele omstandigheden. Te dien einde, transfectie methoden die enkele voorlopers doel zijn een eerste vereiste. We beschrijven hier een technisch eenvoudige methode voor het transfecteren enkele cellen in kip weefsels in-ovo, waardoor betrouwbare afstamming tracing en genetische manipulatie. Specifiek weefsel domeinen zijn gericht binnen de somiet of neurale buis, en DNA wordt rechtstreeks geïnjecteerd in het epitheel van belang, wat resulteert in sporadische transfectie van individuele cellen. Met behulp van verslaggevers, kan klonale populaties dus te herleiden tot drie dagen, en het gedrag van genetisch gemanipuleerde klonale populaties kunnen worden vergeleken met die van controles. Deze methode maakt gebruik van de toegankelijkheid van het kippenembryo samen met de nieuwe tools voor genetische manipulatie. We vergelijken en bespreken de voordelen ten opzichte van de veel gebruikte methode elektroporatie, en de mogelijke toepassingen en gebruik in de extra in-vivo modellen zijn ook gesuggereerd. Wij pleiten voor het gebruik van deze methode als een belangrijke aanvulling en een aanvulling voor de bestaande lineage tracing en genetische storing tools.

Protocol

1. Voorbereiding van de Micropipetten Trekken we onze pipetten op een standaard Narishige pp-83 pipet trekker met een warmte instelling van 13,5. De precieze instelling moet worden gekalibreerd, gericht op een pipet tip diameter van tussen de 8 en 10 micron. We maken gebruik van filament-bevattende borosilicaat glazen buizen met een buitendiameter van 1,0 mm en een inwendige diameter van 0.75-0.78 mm. De pipetten zijn dus bewaard in een plastic schaaltje met de tips beschermd tegen contact met…

Discussion

De hierboven beschreven methode is een wijziging van een eerder beschreven techniek voor het leveren van lipofiele kleurstoffen aan kleine cel subsets of enkele voorouders 3. Het heeft drie belangrijke voordelen ten opzichte van de standaard electroporatie techniek. Ten eerste biedt het een middel voor het labelen met vertrouwen discrete sites in doelweefsels, wat een grotere ruimtelijke resolutie dan elektroporatie (zie bijvoorbeeld Figuur 1B, C). Ten tweede, het maakt het mogelijk de etikettering van enkele…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken Shlomi Krispin voor de neurale buis beeld. In het bijzonder, erkennen wij Yuval Kaneel voor het inleiden van de GFP transfectie techniek. Dit werk werd ondersteund door subsidies van de Israel Science Foundation, Association Française contre les Myopathie, en Deutche Forschungsgemeinshaft, Collaborative Research Centre 488 naar CK

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Pipette tubes   Sutter Instrument B100-75-10  
Capillaries   Drummond Scientific 2-000-100  
Insect needles   Watkins & Doncaster E6871  
Pen-Strep solution   Biological Industries 03-031-1B  

References

check_url/kr/2133?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ben-Yair, R., Kalcheim, C. Single Cell Transfection in Chick Embryos. J. Vis. Exp. (43), e2133, doi:10.3791/2133 (2010).

View Video