Summary

On-Chip phénotypage endothélium inflammatoire

Published: July 21, 2012
doi:

Summary

Chambres d'écoulement microfluidiques gravés par photolithographie et fabriqué à partir de PDMS sont appliqués à sonder les résultats fonctionnels associés à une dysfonction CE et de l'inflammation. Dans une expérience représentative, la capacité de contrainte de cisaillement différentiel de moduler l'adhésion cellulaire monocytaire à cytokine activé monocouches CE est démontrée.

Abstract

Athérogénèse est potentialisée par des anomalies métaboliques qui contribuent à un état d'inflammation systémique résultant dans la dysfonction endothéliale. Cependant, les premiers changements fonctionnels dans l'endothélium qui signifient au niveau d'un individu de risque ne sont pas directement évaluée en clinique pour aider à la stratégie de guide thérapeutique. En outre, la régulation de l'inflammation par l'hémodynamique locale contribue à la distribution spatiale non aléatoire de l'athérosclérose, mais les mécanismes sont difficiles à délimiter in vivo. Nous décrivons une approche de laboratoire-sur-une-puce basée sur la perturbation métabolique de déterminer quantitativement les événements inflammatoires dans les cellules endothéliales humaines (CE) et des monocytes dans des conditions d'écoulement précis. Les méthodes standard de lithographie douce sont utilisés pour microfabricate vasculaires mimétiques chambres microfluidiques VMMC), qui sont directement liés à la culture des monocouches de la CE. 1 Ces dispositifs ont l'avantage d'utiliser de petits volumes de réactifs, tout enfournir une plate-forme pour l'imagerie directement les réactions inflammatoires à la membrane de CE exposé à un champ de cisaillement bien définie. Nous avons appliqué avec succès ces dispositifs pour étudier les cytokines, 2 lipidique-3, 4 et 5 RAGE-induite dans l'inflammation humaine aortique CE (AHCE). Ici, nous documenter l'utilisation de la VMMC à la cellule de dosage monocytaire (THP-1) de roulement et à l'arrestation sur des monocouches de HAEC qui sont conditionnés selon des caractéristiques de cisaillement différentielles et activé par la cytokine inflammatoire TNF-α. Des études comme celles-ci fournissent une approche mécanistique dans atherosusceptibility sous facteurs de risque métaboliques.

Protocol

1. Culture cellulaire et de préparation des supports Couper 3-pouces substrats circulaires à partir d'un 100 x 20 mm boîte de culture de tissus (BD Falcon) en utilisant un tour. Stériliser substrats par immersion dans l'éthanol à 70%. Placer dans une boîte de Pétri et les enrober de 4 ml collagène de type I (100 pg / ml) pendant 1 h à température ambiante, puis rincer avec 4 ml de PBS 1 x. Suspendre les cellules endothéliales aortiques humaines (HAEC, le passage 4-6) à 6.5×10 <s…

Discussion

Nous décrivons l'utilisation de dispositifs microfluidiques en PDMS pour l'évaluation sur la puce du phénotype inflammatoire endothéliale par le biais de l'imagerie en temps réel de l'expression CAM et l'adhésion des monocytes. Un avantage majeur de notre approche réside dans la capacité à quantifier les résultats associés à une dysfonction endothéliale dans les cellules exposées à des médiateurs inflammatoires tels que les lipides alimentaires et des cytokines dans des conditions hyd…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par le NIH / NHLBI subvention R01 HL082689 à Scott I. Simon et Anthony G. Passerini.

Materials

Item Company Catalogue Number
100 x 20mm Petri Dishes BD Falcon 353003
Ethanol 95% EMD Chemicals EX0290-1
DPBS Cellgro 21-031-CV
Type I Rat Tail Derived Collagen Gibco A10483-01
Human Aortic Endothelial Cells Genlantis PH30405A
Antibiotic-Antimycotic Solution Invitrogen 15240-062
Endothelial BulletKit Lonza CC-4176
Endothelial Basal Media-2 Lonza CC-3156
10 ml Syringes BD Falcon 309604
Polyurethane tubing Tygon ABW0001
Leibovitz-15 Media Gibco 11415-069
Sylgard 184 Silicone Elastomer Base Dow Corning 184
Sylgard 184 Silicone Elastomer Curing Agent Dow Corning 184
SU8 Photoresist Master Wafer UC Davis Pan Lab N/A
Eclipse TE200 Inverted Microscope Nikon Eclipse TE200
Syringe Pump Harvard Apparatus PHD2000
19 gauge hypodermic needle Kendall 8881
THP-1 Monocytic Cell Line ATCC TIB-202
HBSS (Hanks Buffered Saline Solution) with Ca2+/Mg2+ Gibco 14025-092
Tumor Necrosis Factor Alpha (TNF-α) R&D Systems 210-TA-010
Stromal Derived Factor – 1 (SDF-1) R&D Systems 350-NS-010
RPMI 1640 Cellgro 10-040-CV
Human Serum Albumin (HSA) ZLB Behring NDC 0053-7680-32

Table 2. Specific reagents and equipment.

References

  1. Schaff, U. Y., Xing, M. M., Lin, K. K., Pan, N., Jeon, N. L., Simon, S. I. Vascular mimetics based on microfluidics for imaging the leukocyte–endothelial inflammatory response. Lab Chip. 7, 448-456 (2007).
  2. Tsou, J. K., Gower, R. M., Ting, H. J., Schaff, U. Y., Insana, M. F., Passerini, A. G., Simon, S. I. Spatial regulation of inflammation by human aortic endothelial cells in a linear gradient of shear stress. Microcirculation. 15, 311-323 (2008).
  3. Ting, H. J., Stice, J. P., Schaff, U. Y., Hui, D. Y., Rutledge, J. C., Knowlton, A. A., Passerini, A. G., Simon, S. I. Triglyceride-rich lipoproteins prime aortic endothelium for an enhanced inflammatory response to tumor necrosis factor-alpha. Circ. Res. 100, 381-390 (2007).
  4. Wang, Y. I., Schulze, J., Raymond, N., Tomita, T., Tam, K., Simon, S. I., Passerini, A. G. Endothelial inflammation correlates with subject triglycerides and waist size after a high-fat meal. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 300, H784-H791 (2011).
  5. Deverse, J. S., Bailey, K. A., Jackson, K. N., Passerini, A. G. Shear stress modulates rage-mediated inflammation in a model of diabetes-induced metabolic stress. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. , (2012).
  6. Dai, G., Kaazempur-Mofrad, M. R., Natarajan, S., Zhang, Y., Vaughn, S., Blackman, B. R., Kamm, R. D., Garcia-Cardena, G., Gimbrone, M. A. Distinct endothelial phenotypes evoked by arterial waveforms derived from atherosclerosis-susceptible and -resistant regions of human vasculature. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 14871-14876 (2004).
  7. Young, E. W., Wheeler, A. R., Simmons, C. A. Matrix-dependent adhesion of vascular and valvular endothelial cells in microfluidic channels. Lab Chip. 7, 1759-1766 (2007).
  8. Davies, P. F., Civelek, M., Fang, Y., Guerraty, M. A., Passerini, A. G. Endothelial heterogeneity associated with regional athero-susceptibility and adaptation to disturbed blood flow in vivo. Semin Thromb Hemost. 36, 265-275 (2008).
  9. Burdge, G. C., Calder, P. C. Plasma cytokine response during the postprandial period: A potential causal process in vascular disease. Br. J. Nutr. 93, 3-9 (2005).
  10. Hotamisligil, G. S. Inflammation and metabolic disorders. Nature. 444, 860-867 (2006).
  11. Libby, P. Inflammation in atherosclerosis. Nature. 420, 868-874 (2002).
  12. Nigro, P., Abe, J., Berk, B. C. Flow shear stress and atherosclerosis: A matter of site specificity. Antioxid Redox Signal. 15, 1405-1414 (2011).
  13. Chiu, J. J., Lee, P. L., Chen, C. N., Lee, C. I., Chang, S. F., Chen, L. J., Lien, S. C., Ko, Y. C., Usami, S., Chien, S. Shear stress increases icam-1 and decreases vcam-1 and e-selectin expressions induced by tumor necrosis factor-[alpha] in endothelial cells. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 24, 73-79 (2004).
  14. Li, Y. S., Haga, J. H., Chien, S. Molecular basis of the effects of shear stress on vascular endothelial cells. J. Biomech. 38, 1949-1971 (2005).
  15. Usami, S., Chen, H. H., Zhao, Y., Chien, S., Skalak, R. Design and construction of a linear shear stress flow chamber. Ann. Biomed. Eng. 21, 77-83 (1993).
  16. Helmke, B. P. Molecular control of cytoskeletal mechanics by hemodynamic forces. Physiology (Bethesda). 20, 43-53 (2005).
  17. Gower, R. M., Wu, H., Foster, G. A., Devaraj, S., Jialal, I., Ballantyne, C. M., Knowlton, A. A., Simon, S. I. Cd11c/cd18 expression is upregulated on blood monocytes during hypertriglyceridemia and enhances adhesion to vascular cell adhesion molecule-1. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 31, 160-166 (2011).
  18. Wu, H., Gower, R. M., Wang, H., Perrard, X. Y., Ma, R., Bullard, D. C., Burns, A. R., Paul, A., Smith, C. W., Simon, S. I., Ballantyne, C. M. Functional role of cd11c+ monocytes in atherogenesis associated with hypercholesterolemia. Circulation. 119, 2708-2717 (2009).
  19. Bussolari, S. R., Dewey, C. F., Gimbrone, M. A. Apparatus for subjecting living cells to fluid shear stress. The Review of scientific instruments. 53, 1851-1854 (1982).
check_url/kr/4169?article_type=t

Play Video

Cite This Article
DeVerse, J. S., Bailey, K. A., Foster, G. A., Mittal, V., Altman, S. M., Simon, S. I., Passerini, A. G. On-Chip Endothelial Inflammatory Phenotyping. J. Vis. Exp. (65), e4169, doi:10.3791/4169 (2012).

View Video