Summary

Kromosom Replikerer Timing Kombineret med Fluorescent<em> In situ</em> Hybridisering

Published: December 10, 2012
doi:

Summary

En kvantitativ metode til analyse af kromosomreplikation timing er beskrevet. Fremgangsmåden anvender BrdU-inkorporering i kombination med fluorescerende<em> In situ</em> Hybridisering (FISH) til at vurdere replikation timingen af ​​mammale kromosomer. Denne teknik giver mulighed for direkte sammenligning af omlejrede og un-omlejrede kromosomer i samme celle.

Abstract

Mammalian DNA-replikation initierer flere steder langs kromosomer på forskellige tidspunkter i løbet af S-fasen, efter en tidsmæssig replikation program. Specifikationen af ​​replikation timing menes at være en dynamisk proces, reguleret af vævsspecifikke og udviklingsmæssige signaler, som reagerer på epigenetiske modifikationer. Men de mekanismer, der regulerer, hvor og hvornår DNA-replikation starter langs kromosomerne stadig dårligt forstået. Homologe kromosomer normalt replikere synkront, men der er markante undtagelser fra denne regel. For eksempel en af de to X-kromosomer hos kvindelige pattedyrceller bliver forsinket replikerende gennem en proces, der kaldes X-inaktivering 1. Sammen med denne forsinkelse i replikation timing, skønnes at være 2-3 timer, bliver størstedelen af ​​gener transkriptionelt tavs på én X-kromosom. Desuden regulerer en diskret cis-virkende locus, kendt som X-inaktivering er dette X inaktiveringsproces, herunder the induktion af forsinket replikation timing på hele inaktive X-kromosom. Desuden udsættes visse kromosomomlejringer fundet i cancerceller og i celler for ioniserende stråling vise en væsentlig forsinkelse i replikation timingen af> 3 timer, der påvirker hele kromosom 2,3. Seneste arbejde fra vores laboratorium viser, at afbrydelse af diskrete cis-agerende autosomal loci resulterer i et meget sent replikerende fænotype, der påvirker hele kromosom 4. Yderligere 'kromosom engineering "undersøgelser viser, at visse kromosomomlejringer påvirker mange forskellige kromosomer resultat i denne unormale replikations-timing fænotype, hvilket tyder på, at alle pattedyrs-kromosomer indeholder diskrete cis-virkende loci, der styrer korrekt replikation timingen af individuelle chromosomer 5.

Her præsenteres en metode til kvantitativ analyse af kromosomreplikation timing kombineret med fluorescerende in situ hybridisering. DetteFremgangsmåden muliggør en direkte sammenligning af replikation timing mellem homologe kromosomer i samme celle, og blev tilpasset fra 6. Derudover muliggør denne fremgangsmåde til utvetydig identifikation af kromosomale omlejringer, der korrelerer med ændringer i replikation timing, der påvirker hele kromosomet. Denne metode har fordele i forhold til nyligt udviklede high throughput mikro-array eller sekventering protokoller, der ikke kan skelne mellem homologe alleler stede på omarrangeret og un-omarrangeret kromosomer. Endvidere, fordi den her beskrevne fremgangsmåde evalueres enkelte celler kan detektere ændringer i kromosomreplikation timing for kromosomale omlejringer, der er til stede i kun en fraktion af cellerne i en population.

Protocol

1. BrdU Indbygning (Terminal Mærkning) Plade celler til omkring 70% konfluens i en 150 mm vævskulturskål 24 timer inden tilsætningen af ​​BrdU. Erstatte medierne med frisk komplet medium indeholdende 20 ug / ml BrdU (Sigma) ved passende tidspunkter før høst. Hvor længe celler dyrkes i medier med BrdU vil variere med celletypen og arter, typisk G2 fase varer mellem 2 og 5 timer (figur 1). 2. Kromosom Høst af enkeltlagskulturer cellekulture…

Representative Results

Et eksempel på replikationen timing analyse for humant kromosom 6 er vist i figur 2. Celler, der indeholder en deletion af ASAR6 gen 4, placeret på 6q16.1, blev udsat for BrdU i 5 timer, høstet til mitotiske celler og behandlet til FISH med en kromosom 6 maling probe (Vysis) og for BrdU-inkorporering. Bemærk, at der er en signifikant forskel i BrdU båndmønster mellem de to 6 s, hvilket er konsistent med en forsinkelse i replikation hvornår> 2 timer for en af kromosom 6 er [se 4…

Discussion

Fremstillingen af ​​kromosom spreads er et kritisk skridt for en vellykket replikation-timing assayet beskrevet her. Inddragelsen af ​​et colcemid forbehandling trin forud for hypotonisk behandling kan hjælpe i frekvens og spredning af mitotiske celler. Vi typisk udsætte celler for colcemdi for 1-3 timer før høst, og anvendelse Colcemid i en slutkoncentration på 10 ug / ml. Imidlertid kan medtagelse af et colcemid forbehandlingstrin ændre længden af G2 og derfor kan ændre den åbenbare replikation timing…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af en bevilling fra National Cancer Institute, CA131967.

Materials

Name of Reagent Company Catalogue Number Comments (optional)
Anti-BrdU-FITC Roche Millipore 11202593001 MAB326F 50 μg/μl
Nick Translation Kit Abbott Molecular (Vysis) 07J00-0001  
Spectrum Orange dUTP Abbott Molecular (Vysis) 02N33-050  
CEP Abbott Molecular (Vysis) Varies  
LSI/WCP hybridization buffer Abbott Molecular (Vysis) 06J67-011  
CEP hybridization buffer Abbott Molecular (Vysis) 07J36-001  
Chromosome paints MetaSystems Group D-14NN-050-TR  
Olympus BX61 Fluorescent Microscope Olympus BX61TRF-1-5  
Microscope imaging software system Applied Imaging Cytovision 3.93.1  
Digital Camera Olympus UCMAD3  
     

IN SITU HYBRIDIZATION RECIPES
Formamide Solutions
70% Formamide/2x SSC

35 ml Formamide* (Sigma)
10 ml 10x SSC
5 ml d2H20
pH to 7.0 with HCl (Sigma)

* It is important to use formamide that has been stored at -20 °C. Prolonged room temperature storage will generate formic acid and the pH will be too low.

50% Formamide/2x SSC

25 ml formamide (Sigma)
10 ml 10x SSC
15 ml dH2O
pH to 7.0 with HCl (Sigma)

20x SSC, 4 L

702 g NaCl (Sigma)
358 g Na Citrate (Sigma)
dH2O to volume

PN Buffer [0.1 M NaP04 0.1% NP_40 (Sigma)]

Make a 0.1 M solution each of sodium phosphate (Filter sterilize and store in 500 ml aliquots).

0.1 M NaH2P04 , 1 L

13.8 g NaH2P04 (Sigma):
dH2O to volume

0.1 M NaH2P04 1 L

14.2 g NaH2P04 (Sigma)
dH2O to volume.

PN: Adjust pH of 0.1 M Na2HP04 to pH 8.0 with .1 M NaH2P04. Filter sterilize and add 1 ml of NP-40.

PNM 50 ml

1.25 g Non-fat dry milk (Sigma)
25 ml PN buffer (Recipe above)

Mix for 15-20 min with constant stirring. Spin 2 times at 400 x g for 10 min. Use supernatant, and make sure not to disturb precipitated milk proteins.

References

  1. Payer, B., Lee, J. T. X chromosome dosage compensation: how mammals keep the balance. Annu. Rev. Genet. 42, 733-772 (2008).
  2. Breger, K. S., Smith, L., Turker, M. S., Thayer, M. J. Ionizing radiation induces frequent translocations with delayed replication and condensation. 암 연구학. 64, 8231-8238 (2004).
  3. Smith, L., Plug, A., Thayer, M. Delayed Replication Timing Leads to Delayed Mitotic Chromosome Condensation and Chromosomal Instability of Chromosome Translocations. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 13300-13305 (2001).
  4. Stoffregen, E. P., Donley, N., Stauffer, D., Smith, L., Thayer, M. J. An autosomal locus that controls chromosome-wide replication timing and mono-allelicexpression. Hum. Mol. Genet. 20, 2366-2378 (2011).
  5. Breger, K. S., Smith, L., Thayer, M. J. Engineering translocations with delayed replication: evidence for cis control of chromosome replication timing. Hum. Mol. Genet. 14, 2813-2827 (2005).
  6. Camargo, M., Cervenka, J. Patterns of DNA replication of human chromosomes. II. Replication map and replication model. Am. J. Hum. Genet. 34, 757-780 (1982).
  7. Cohen, S. M., Cobb, E. R., Cordeiro-Stone, M., Kaufman, D. G. Identification of chromosomal bands replicating early in the S phase of normal human fibroblasts. Exp. Cell Res. 245 (98), 321-329 (1998).
  8. Diaz-Perez, S., et al. The element(s) at the nontranscribed Xist locus of the active X chromosome controls chromosomal replication timing in the mouse. 유전학. 171, 663-672 (2005).
  9. Diaz-Perez, S. V., et al. A deletion at the mouse Xist gene exposes trans-effects that alter the heterochromatin of the inactive X chromosome and the replication time and DNA stability of both X chromosomes. 유전학. 174, 1115-1133 (2006).
  10. Salic, A., Mitchison, T. J. A chemical method for fast and sensitive detection of DNA synthesis in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 2415-2420 (2008).
  11. Schlesinger, S., Selig, S., Bergman, Y., Cedar, H. Allelic inactivation of rDNA loci. Genes Dev. 23, 2437-2447 (2009).
  12. Branzei, D., Foiani, M. The checkpoint response to replication stress. DNA Repair (Amst). 8, 1038-1046 (2009).
check_url/kr/4400?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Smith, L., Thayer, M. Chromosome Replicating Timing Combined with Fluorescent In situ Hybridization. J. Vis. Exp. (70), e4400, doi:10.3791/4400 (2012).

View Video