Summary

光偏好的检测,以研究的先天和昼夜调节感光特性<em>果蝇</em>幼虫

Published: April 20, 2013
doi:

Summary

在这里,我们描述了果蝇幼虫光暗偏好测试。此法提供了先天和昼夜节律调节的光传感和处理感光特性的信息。

Abstract

光作为环境信号来控制各级动物行为。 果蝇幼虫的神经系统是作为一个独特的模型,回答基本问题,如何快速昼夜行为之间的光信息处理和共享。 果蝇幼虫显示刻板的避税行为,当暴露在光线下。探讨可比简单的明暗偏好测试可应用于光依赖行为。参与传感和处理视觉输入的神经通路在脊椎动物和节肢动物部分重叠与处理光的昼夜信息。迷人的光传感系统和昼夜系统如何互动,以保持输出协调行为的问题,仍然在很大程度上未被果蝇是影响生物模型来处理这些问题,由于在大脑中的神经元数量少,遗传工具的可用性。神经manipul的BULLETIN。呈现明暗偏好测定允许视觉行为包括昼夜的控制趋光性了一系列的调查。

Introduction

在这里,我们描述了一个基于行为的检测暗(或光)幼虫偏好。幼虫的反应与一个强大和刻板避光反应在觅食阶段(L1至L3月初)1。幼虫避光行为的测定法的目的是评估和比较亮或暗的幼虫自由移动,在涂有琼脂的陪替氏培养皿中的一组的偏好。这种行为的检测不仅提供信息的敏感性,一体化和时间的视觉系统可塑性,它进一步提供了光敏感性及其过程控制的昼夜系统的提示。

果蝇幼虫眼(也被称为Bowlig的器官; BO),光感的主要器官。每只眼睛是由12个光感受器(PR),8 PRS表达绿色,:敏感rhodopsin6(RH6)和四个永久居民表达了对蓝色敏感rhodopsin5(RH5)2,3。此外PRS,ALSØIV级的multidendritic神经元,涵盖幼虫体壁,已经确定以应对4,5有害光线强度。它也被称为位于中央的幼虫脑起搏器的神经元表达光敏蛋白隐花色素(喊),作为时钟固有的蓝色光传感器大脑内的6,7。有趣的野生型动物photophobicity显示一昼夜成分在不同时间点的过程中,白天和夜间的时候,用这个方法测试。对L3幼虫觅食表现出较强的photophobicity在黎明和photophobicity的黄昏时进行测试时光黑暗的偏好7。有趣的是,只有RH5-PRS都需要避免轻,而RH6​​-PRS是可有可无的。两者RH5-PR和RH6-PRS参与重置分子钟光8。惊魂途径,必须协调与其他光感的途径,以协调在一个适当的行为输出一天的过程中。乙酰胆碱在PRS光回避行为,以及夹带的分子时钟起着至关重要的作用。从PRS昼夜起搏器神经元阻断神经递质乙酰胆碱减少光黑暗偏好测定8避光反应。采用相同的检测,两个对称的神经元对最近发现的第三龄幼虫果蝇 9开灯偏好。这两对神经元功能在后期幼体阶段,当动物留下的食物大概是找到一个合适的的pupariation网站。然而,视觉通路如何相互作用,一昼夜地控制幼虫的视觉行为的问题在很大程度上仍然未回答。光偏好测定允许昼夜时间点之间的比较,飞线和昼夜状态下不同光质。该法是很容易准备,价格低廉,一直是有用的,我以前Ñ​​几个实验室的描述和研究光派生行为在幼虫。

Protocol

1。苗种培育保持飞菌株或大众文化的遗传杂交玉米粉培养基上,在25°C下12小时轻12小时黑暗周期中一只苍蝇孵化器配备有光线和定时器。 稀释在水中,形成衬垫酵母的流体浆料(10克的背衬酵母稀释用3-4毫升蒸馏水H 2 O)。加一小滴玉米粉食品和覆盖小瓶。让至少一个小时的干燥,以避免成虫坚持酵母膏。将酵母水稀释一小滴表面上的食物可提高产卵。或者可以使用面包酵…

Representative Results

继上述协议,我们测试了两种不同的昼夜倍CT0和CT12明暗偏好早期幼虫第三体育场野生型广东-S飞。成人12小时光照,12小时黑暗饲养,并留下12小时产卵。幼虫生长的前两天,在相同的光线暗的政权。因为我们想在测试昼夜调制恒定的条件下(自由运行的生物钟),幼虫,然后转移到不断的黑暗未来三天,直到进行测试( 图3A)。 这里,我们用350勒克司,因为它已…

Discussion

光偏好测试幼虫的先天优势,感光特性。该法是很容易的建立,允许多次重复,以较低的成本和光传感和处理提供了有价值的信息。实验范式允许多少人喜欢浅色或深色的相对快速定量。这种偏好可以显示作为原油的百分比,或者偏好指数(县)。 PREF被表示为动物的差异,优选的光,优选黑暗除以动物的总的动物。

光偏好测试中的一个关键点是实验的时间。在这里,我们测…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢我们的同事在弗里堡大学生物系,富有成效的讨论。我们感谢布卢明顿联合中心提供飞股票。财政支持这项工作是由瑞士国家科学基金会(PP00P3_123339)和威卢克斯基金会SGS

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Agar Sigma-Aldrich A5093-500G 2.5%; Sigma-Aldrich, 9471 Buchs, Switzerland
Petri dishes Greiner Bio-One GmbH 633180 90-mm diameter; Greiner Bio-One GmbH, 4550 Kremsmeinster, Austria
LEDs Lamp OSARAM 80012 White LED lamp, 80012 White
Environment Meter PCE PCE EM882 Lux, Temp, RH%
Thermostatic cabinet Aqua Lytic (Liebherr) ET636-6
Light timer Timer T 6185.104 230V/50HZ (check specifications for your country)
Universal thermostat Conrad UT200
Humidifier Boneco
Balck tape Tesa 5 cm
Glue Uhu
lncubator lamp Phillips Softtone 5W
Timer clock Ziliss Ziliss, Switzerland
Excel Software Microsoft Excel
Origin Software 8.5 OriginLab
Backer Yeast Migros Switzerland
Iron support stand 17X28CM Fisher Scientific S47808
Acetic acid Sigma Aldrich A6283-100ML 20% acetic acid dilluted in H2O
Red light lamp Phillips PFE712E*8C
Spatula Fisher Scientific 14-373-25A
Power supply EA EA PS 2042-06B Optional
Aluminium foil Prix Coop
Heater GOON NSB200C
Microwave Oven Intertronic
Standard corn meal fly food
Destilled water

References

  1. Sawin-McCormack, E. P., Sokolowski, M. B., Campos, A. R. Characterization and genetic analysis of Drosophila melanogaster photobehavior during larval development. J. Neurogenet. 10, 119-135 (1995).
  2. Sprecher, S. G., Pichaud, F., Desplan, C. Adult and larval photoreceptors use different mechanisms to specify the same Rhodopsin fates. Genes Dev. 21, 2182-2195 (2007).
  3. Sprecher, S. G., Desplan, C. Switch of rhodopsin expression in terminally differentiated Drosophila sensory neurons. Nature. 454, 533-537 (2008).
  4. Xiang, Y., et al. Light-avoidance-mediating photoreceptors tile the Drosophila larval body wall. Nature. 468, 921-926 (2010).
  5. Diaz, N. N., Sprecher, S. G. Photoreceptors: unconventional ways of seeing. Curr. Biol. 21, R25-R27 (2011).
  6. Emery, P., et al. Drosophila CRY is a deep brain circadian photoreceptor. Neuron. 26, 493-504 (2000).
  7. Mazzoni, E. O., Desplan, C., Blau, J. Circadian pacemaker neurons transmit and modulate visual information to control a rapid behavioral response. Neuron. 45, 293-300 (2005).
  8. Keene, A. C., et al. Distinct visual pathways mediate Drosophila larval light avoidance and circadian clock entrainment. J. Neurosci. 31, 6527-6534 (2011).
  9. Gong, Z. F., et al. Two Pairs of Neurons in the Central Brain Control Drosophila Innate Light Preference. Science. 330, 499-502 (2010).
  10. Lilly, M., Carlson, J. smellblind: a gene required for Drosophila olfaction. 유전학. 124, 293-302 (1990).
  11. Bodenstein, D., Demerec, M. The postembryonic development of Drosophila. Biology of Drosophila. , 275-367 (1950).
  12. Pittendrigh, C. S. Circadian systems: Entrainment. Biological Rhythms. 4 Handbook of Behavioral Neurobiology, 95-124 (1981).
  13. Collins, B., Kane, E. A., Reeves, D. C., Akabas, M. H., Blau, J. Balance of Activity between LN(v)s and Glutamatergic Dorsal Clock Neurons Promotes Robust Circadian Rhythms in Drosophila. Neuron. 74, 706-718 (2012).
  14. Keene, A. C., Sprecher, S. G. Seeing the light: photobehavior in fruit fly larvae. Trends Neurosci. 35, 104-110 (2012).
  15. von Essen, A. M., Pauls, D., Thum, A. S., Sprecher, S. G. Capacity of visual classical conditioning in Drosophila larvae. Behav. Neurosci. 125, 921-929 (2011).

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Farca Luna, A. J., von Essen, A. M. H. J., Widmer, Y. F., Sprecher, S. G. Light Preference Assay to Study Innate and Circadian Regulated Photobehavior in Drosophila Larvae. J. Vis. Exp. (74), e50237, doi:10.3791/50237 (2013).

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