Summary

Generatie van transgene<em> Hydra</em> Door Embryo Microinjection

Published: September 11, 2014
doi:

Summary

Stably transgenic Hydra are made by microinjection of plasmid DNA into embryos followed by random genomic integration and asexual propagation to establish a uniform line. Transgenic Hydra are used to track cell movements, overexpress genes, study promoter function, or knock down gene expression using RNAi.

Abstract

As a member of the phylum Cnidaria, the sister group to all bilaterians, Hydra can shed light on fundamental biological processes shared among multicellular animals. Hydra is used as a model for the study of regeneration, pattern formation, and stem cells. However, research efforts have been hampered by lack of a reliable method for gene perturbations to study molecular function. The development of transgenic methods has revitalized the study of Hydra biology1. Transgenic Hydra allow for the tracking of live cells, sorting to yield pure cell populations for biochemical analysis, manipulation of gene function by knockdown and over-expression, and analysis of promoter function. Plasmid DNA injected into early stage embryos randomly integrates into the genome early in development. This results in hatchlings that express transgenes in patches of tissue in one or more of the three lineages (ectodermal epithelial, endodermal epithelial, or interstitial). The success rate of obtaining a hatchling with transgenic tissue is between 10% and 20%. Asexual propagation of the transgenic hatchling is used to establish a uniformly transgenic line in a particular lineage. Generating transgenic Hydra is surprisingly simple and robust, and here we describe a protocol that can be easily implemented at low cost.

Introduction

Hydra is gebruikt voor regeneratie, patroonvorming bestuderen en stamcellen ongeveer 250 jaar 2 Hydra een eenvoudige body opgesteld met drie cellijnen. Ectodermale epitheel, endodermale epitheliale en interstitiële. Het buisvormige lichaam wordt gevormd door de ectodermale en endodermale epitheliale lijnen, die elk een enkele cellaag. Alle epitheliale cellen in de kolom lichaam mitotische. Wanneer epitheelcellen verplaatst naar de uiteinden 3, de kop (mond en tentakels) aan het einde orale of voet (basale schijven) op aboral zij daartoe arresteren in de G2 fase van de celcyclus en veranderen lot van de cel 4. De cellen van het interstitiële lineage verblijf op de tussenruimten tussen de epitheelcellen. Deze lijn wordt ondersteund door multipotente stamcellen die zich in het ectodermale epitheliale laag van het lichaam kolom 5. De interstitiële stamcellen leiden tot drie somatische cell types (zenuwen, klier cellen, en nematocytes) en de kiemcellen 6,7.

Als lid van de phylum Cnidaria, de zuster groep om alle bilateria, Hydra kan licht werpen op fundamentele biologische processen verdeeld onder meercellige dieren. Tot voor kort werden deze pogingen belemmerd door het gebrek aan betrouwbare methoden voor de verstoring van de genfunctie. Echter, met de ontwikkeling van transgene methodologie 1, we zijn nu in staat om optimaal te profiteren van Hydra tot een beter begrip van de fundamentele mechanismen gebruikelijk om meercellige dieren, zoals stamcel functie, regeneratie, en patroonvorming krijgen. Hydra Transgene lijnen worden vastgesteld door injectie van plasmide DNA in embryo, wat resulteert in willekeurige integratie en chimere expressie in een aanzienlijke frequentie van jongen. Een lijn uniforme expressie in een bepaalde lijn kan worden vastgesteld door ongeslachtelijke voortplanting. Het vermogen om klonale vermeerderen transgenic Hydra lijnen is een voordeel boven de meeste diermodellen, die kan worden vermeerderd alleen geslachtelijke voortplanting. Bovendien kunnen transgene cellen gemakkelijk in vivo worden gevolgd door de transparantie van het dier en de afwezigheid van endogene fluorescerende eiwitten 8.

In de zeven jaar sinds de eerste transgene Hydra lijnen werden 1, dergelijke lijnen zijn gebruikt voor een verscheidenheid aan toepassingen. Expressie van proteïnen verschillende celtypen is het mogelijk om celbeweging te volgen, veranderingen in celvorm waarnemen en volgen celtypes zowel wildtype omstandigheden en na chemische verstoring 1,5,9-12. Bovendien expressie van verschillende proteïnen de diverse lineages maakt FACS isolatie van specifieke celpopulaties. Deze techniek is gebruikt voor het sequencen van stamcellen specifiek mRNA en afstammings-specifieke RNA's 13,14. Terwijl de promotor vaneen van de twee Hydra actinegenen is meest gebruikt, enkele celtype specifieke promotors geïdentificeerd en gebruikt om expressie van GFP rijden transgene Hydra 9,11,15,16. In de toekomst zal celtype specifieke promotors zorgen voor waarneming en verzameling van specifieke celtype. Bovendien werd een transgene benadering succes gebruikt om de cis-werkende regulerende elementen van de promoter Wnt3 17 definiëren.

De ontwikkeling van transgene werkwijzen Hydra biedt een robuuste benadering voor het testen van de functie van genen door ectopische expressie, overexpressie en knockdown. Transgene dieren gemaakt die fluorescent-gemerkte eiwitten tot expressie teneinde zowel de functie en cellulaire lokalisatie 18-20 onderzocht. Daarnaast is de expressie van RNA haarspelden in de 3'UTR van een GFP-transgen leidt tot knockdown van doelgenen 21,22. In deze benaderingen GFP moet identificerenen volgen de transgene weefsel tijdens de creatie van de transgene lijn. Het is echter waarschijnlijk dat in sommige gevallen de GFP molecuul zou interfereren met de functie van het gecodeerde eiwit. Een recente studie toont aan dat Hydra genen kan worden geregeld in een operon configuratie, dwz polycistronische transcripten gemaakt, die vervolgens worden gescheiden door trans-spliced ​​leader toevoeging afzonderlijk 23 vertaald. Door een gen dat codeert voor een eiwit of een RNA haarspeld in de stroomopwaartse positie van een operon en een fluorescent eiwit gen in de stroomafwaartse positie, kan een transgeen weefsel te volgen zonder het gen dat voor het eiwit of RNA haarspeld taggen. Deze werkwijze is gebruikt om een RNA haarspeld in een operon configuratie met DsRed2 drukken om te komen gen knockdown 14.

Protocol

1 Voorbereiding van plasmide DNA, naalden en injectie Gerechten Bereid het plasmide-DNA met behulp van een High Speed ​​Maxi of Midi kit en concentreer het DNA tot 2,5 mg / ml met ethanol precipitatie. De DNA pellet moet worden opgelost in nuclease-vrij gedeïoniseerd water. Bewaar het DNA in 10-20 pi aliquots bij -20 ° C. (Zie Aanvullende tabel 1 voor een overzicht van beschikbare vectoren) Een injectie schotel middels agarose een trog construeren voor het vasthouden van embry…

Representative Results

Oprichting van transgene Hydra lijnen Feed transgene jongen om de 2-3 dagen met Artemia naupliën. Hatchlings soms niet eten voor een dag of twee na het uitkomen. Sommige nieuwe jongen zal nooit eten, en dus zal het niet overleven. Als het jong is transgene in ofwel de ectodermale (Figuur 1A) of endodermaal epitheelweefsel, zodat het dier uit te lopen en het verzamelen van de knoppen die de meeste transgene weefsel (Figuur 1B, C) ​​te hebb…

Discussion

Hydra reproduceert routinematig ongeslachtelijk, maar vereist prikkels uit de omgeving naar de productie van gameten beginnen. Deze stimuli zijn niet goed gedefinieerd voor de meeste Hydra soorten en kunnen van stam tot stam. Een belangrijke hindernis voor de productie van transgene Hydra is het verkrijgen van embryo's regelmatig omdat het moeilijk in een laboratoriumomgeving te induceren Hydra seksuele thuis hoort. De AEP stam 25 echter produceert gameten gemakkelijk i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door een G. Harold & Leila Y. Mathers Award voor HL en een NIH-subsidie ​​(R24 GM080527) om RESCEJ was een NRSA Postdoctoraal (NIH F32GM9037222) en wordt momenteel ondersteund door een Mentored Research Scientist Development Award van de National Institute on Aging (K01AG04435). We willen de reviewers bedanken voor nuttig commentaar.

Materials

AEP Hydra Strain NA NA Email: Celina Juliano at celina.juliano@yale.edu or Hiroshi Shimizu bubuchin2006@yahoo.co.jp
High Speed Maxi Kit Qiagen 12662
100 x 15 mm Petri Dishes BD Falcon 351029
75 x 50 mm Glass Microscope Slide Sigma CLS294775X50
Microinjection Fish Mold IBI Scientific FM-600
Borosilicate Glass with Filament Sutter Instrument BF100-50-10 O.D.: 1.0 mm, I.D.: 0.50 mm, 10 cm length
Flaming/Brown Micropipette Puller Sutter Instrument P-97
Phenol Red Sigma P3532
Jewelers Forceps, Durmont #5 Sigma F6521
Scalpel Blade #15 Fisher 50-822-421
Mineral oil Sigma M8410-500ML
Microinjector Narishige IM-9B
Magnetic Stand Narishige GJ-1
Iron Plate Narishige IP
Joystick Micromanipulator Narishige MN-151

References

  1. Wittlieb, J., Khalturin, K., Lohmann, J. U., Anton-Erxleben, F., Bosch, T. C. Transgenic Hydra allow in vivo tracking of individual stem cells during morphogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 6208-6211 (2006).
  2. Glauber, K. M., Dana, C. E., Steele, R. E. Hydra. Curr Biol. 20, 964-965 (2010).
  3. Holstein, T. W., Hobmayer, E., David, C. N. Pattern of epithelial cell cycling in hydra. Dev Biol. 148, 602-611 (1991).
  4. Dubel, S., Hoffmeister, S. A., Schaller, H. C. Differentiation pathways of ectodermal epithelial cells in hydra. Differentiation. 35, 181-189 (1987).
  5. Khalturin, K., et al. Transgenic stem cells in Hydra reveal an early evolutionary origin for key elements controlling self-renewal and differentiation. Dev Biol. 309, 32-44 (2007).
  6. Bosch, T., David, C. Stem Cells of Hydra magnipapillata can differentiate into somatic cells and germ line cells. Dev Biol. 121, 182-191 (1987).
  7. David, C. N., Murphy, S. Characterization of interstitial stem cells in hydra by cloning. Dev Biol. 58, 372-383 (1977).
  8. Chapman, J. A., et al. The dynamic genome of Hydra. Nature. 464, 592-596 (2010).
  9. Boehm, A. M., Bosch, T. C. Migration of multipotent interstitial stem cells in Hydra. Zoology (Jena). 115, 275-282 (2012).
  10. Glauber, K. M., et al. A small molecule screen identifies a novel compound that induces a homeotic transformation in Hydra. Development. 140, 4788-4796 (2013).
  11. Siebert, S., Anton-Erxleben, F., Bosch, T. C. Cell type complexity in the basal metazoan Hydra is maintained by both stem cell based mechanisms and transdifferentiation. Dev Biol. 313, 13-24 (2008).
  12. Anton-Erxleben, F., Thomas, A., Wittlieb, J., Fraune, S., Bosch, T. C. Plasticity of epithelial cell shape in response to upstream signals: a whole-organism study using transgenic Hydra. Zoology (Jena). 112, 185-194 (2009).
  13. Hemmrich, G., et al. Molecular signatures of the three stem cell lineages in Hydra and the emergence of stem cell function at the base of multicellularity. Mol Biol Evol. , (2012).
  14. Juliano, C. E., et al. PIWI proteins and PIWI-interacting RNAs function in Hydra somatic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 337-342 (2014).
  15. Nishimiya-Fujisawa, C., Kobayashi, S. Germline stem cells and sex determination in Hydra. Int J Dev Biol. 56, 499-508 (2012).
  16. Milde, S., et al. Characterization of taxonomically restricted genes in a phylum-restricted cell type. Genome Biol. 10, 8 (2009).
  17. Nakamura, Y., Tsiairis, C. D., Ozbek, S., Holstein, T. W. Autoregulatory and repressive inputs localize Hydra Wnt3 to the head organizer. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 9137-9142 (2011).
  18. Gee, L., et al. beta-catenin plays a central role in setting up the head organizer in hydra. Dev Biol. 340, 116-124 (2010).
  19. Fraune, S., et al. In an early branching metazoan, bacterial colonization of the embryo is controlled by maternal antimicrobial peptides. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 18067-18072 (2010).
  20. Bridge, D., et al. FoxO and stress responses in the cnidarian Hydra vulgaris. PLoS One. 5, e11686 (2010).
  21. Boehm, A. M., et al. FoxO is a critical regulator of stem cell maintenance in immortal Hydra. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 19697-19702 (2012).
  22. Franzenburg, S., et al. MyD88-deficient Hydra reveal an ancient function of TLR signaling in sensing bacterial colonizers. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 19374-19379 (2012).
  23. Dana, C. E., Glauber, K. M., Chan, T. A., Bridge, D. M., Steele, R. E. Incorporation of a horizontally transferred gene into an operon during cnidarian evolution. PLoS One. 7, e31643 (2012).
  24. Lenhoff, H. M., Lenhoff, H. M. . Hydra: Research Methods. , 29-34 (1983).
  25. Miller, M. A., Technau, U., Smith, K. M., Steele, R. E. Oocyte development in Hydra involves selection from competent precursor cells. Dev Biol. 224, 326-338 (2000).
  26. Lenhoff, H. M., Lenhoff, H. M. . Hydra: Research Methods. , 53-62 (1983).
check_url/kr/51888?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Juliano, C. E., Lin, H., Steele, R. E. Generation of Transgenic Hydra by Embryo Microinjection. J. Vis. Exp. (91), e51888, doi:10.3791/51888 (2014).

View Video