Summary

Generering av Transgena<em> Hydra</em> Genom Embryo mikroinjektion

Published: September 11, 2014
doi:

Summary

Stably transgenic Hydra are made by microinjection of plasmid DNA into embryos followed by random genomic integration and asexual propagation to establish a uniform line. Transgenic Hydra are used to track cell movements, overexpress genes, study promoter function, or knock down gene expression using RNAi.

Abstract

As a member of the phylum Cnidaria, the sister group to all bilaterians, Hydra can shed light on fundamental biological processes shared among multicellular animals. Hydra is used as a model for the study of regeneration, pattern formation, and stem cells. However, research efforts have been hampered by lack of a reliable method for gene perturbations to study molecular function. The development of transgenic methods has revitalized the study of Hydra biology1. Transgenic Hydra allow for the tracking of live cells, sorting to yield pure cell populations for biochemical analysis, manipulation of gene function by knockdown and over-expression, and analysis of promoter function. Plasmid DNA injected into early stage embryos randomly integrates into the genome early in development. This results in hatchlings that express transgenes in patches of tissue in one or more of the three lineages (ectodermal epithelial, endodermal epithelial, or interstitial). The success rate of obtaining a hatchling with transgenic tissue is between 10% and 20%. Asexual propagation of the transgenic hatchling is used to establish a uniformly transgenic line in a particular lineage. Generating transgenic Hydra is surprisingly simple and robust, and here we describe a protocol that can be easily implemented at low cost.

Introduction

Hydra har använts för att studera regeneration, mönsterbildning, och stamceller i cirka 250 år 2 Hydra har en enkel kropp plan består av tre cellinjer:. Ektodermal epitel, endodermalt epiteliala och interstitiell. Den rörformiga kroppen är bildad genom den ektodermala och endodermala epiteliala härstamningar, vilka vardera är en enkelcellskikt. Alla av epitelceller i kroppen kolumn är mitotiska. När epitelceller är förskjutna i extremiteterna 3, huvudet (mun och tentakler) vid den muntliga änden eller foten (basal skiva) vid aboral slutet, de arresterar i G2-fasen av cellcykeln och ändra cell ödet 4. Cellerna i den interstitiella härstamning uppe inom mellanrummen mellan epitelceller. Denna härstamning stöds av multipotenta stamceller som finns i det ektodermala epitelskikt av kroppen kolumn 5. De interstitiella stamceller ger upphov till tre somatiska cell typer (nerver, körtelceller och nematocytes) och könscellerna 6,7.

Som en medlem av stammen Cnidaria, systergrupp till alla bilaterians kan Hydra belysa grundläggande biologiska processer delas av flercelliga djur. Tills nyligen var dessa insatser hindras av bristen på tillförlitliga metoder för störning av geners funktion. Men med utvecklingen av transgena metodik 1, kan vi nu att dra full nytta av Hydra för att få en bättre förståelse av de grundläggande mekanismer som är gemensamma för flercelliga djur, som till exempel stamcellsfunktion, regeneration, och mönstring. Transgen Hydra linjer etableras genom injektion av plasmid-DNA i embryon, som resulterar i slumpmässig integration och chimär expression i en betydande frekvens av ungarna. En linje med enhetligt uttryck i en viss härstamning kan fastställas genom asexuell förökning. Förmågan att klonalt fortplanta transgENIC Hydra linjer är en fördel över de flesta djurmodeller, som kan förökas endast genom sexuell reproduktion. Dessutom kan transgena celler spåras lätt in vivo på grund av öppenheten i djuret och avsaknaden av endogena fluorescerande proteiner 8.

Under de sju år som gått sedan de första transgena Hydra linjer gjordes 1, sådana linjer har använts för en mängd olika tillämpningar. Uttryck av fluorescerande proteiner i olika celltyper har gjort det möjligt att spåra cellrörelse, observera förändringar i cellform, och spåra cell öden både vildtyp villkor och efter kemisk störning 1,5,9-12. Dessutom uttryck av olika fluorescerande proteiner i de olika utvecklingslinjer möjliggör FACS isolering av specifika cellpopulationer. Denna teknik har använts för sekvensering av stamcells specifika mRNA och linjespecifika små RNA 13,14. Medan promotorn fören av de två Hydra aktin gener har mest använda, några celltypsspecifik promotorer har identifierats och används för att driva uttryck av GFP i transgena Hydra 9,11,15,16. I framtiden kommer celltypsspecifik promotorer möjliggöra observation och insamling av specifika celltyp. Dessutom gjordes en transgen tillvägagångssätt framgångsrikt använts för att definiera de cis-verkande regulatoriska elementen i Wnt3 promotorn 17.

Utvecklingen av transgena metoder i Hydra ger en robust metod för att testa funktionen hos gener som ektopisk uttryck, överuttryck och knockdown. Transgena djur har gjorts att uttrycka fluorescerande-märkta proteiner för att undersöka både funktion och cellulär lokalisering 18-20. Dessutom expressionen av RNA hårnålar i 3'UTR av en GFP-transgen leder till knockdown av målgener 21,22. I dessa metoder krävs GFP att identifieraoch spåra transgena vävnaden under skapandet av den transgena linjen. Det är emellertid troligt att GFP-molekyl i en del fall skulle störa funktionen av det märkta proteinet. En nyligen genomförd studie visar att Hydra gener kan arrangeras i ett operon konfiguration, dvs är polycistrona transkript, vilka därefter separeras genom trans splitsad ledare tillsats och translateras separat 23. Genom att placera en gen som kodar för ett protein eller en RNA-hårnål i positionen uppströms av ett operon och ett fluorescerande proteingenen i nedströms läge kan en spåra transgen vävnad utan att behöva märka den gen som kodar för proteinet eller RNA-hårnål. Denna metod har använts för att uttrycka en RNA hårnål i en konfiguration operon med DsRed2 för att uppnå gen knockdown 14.

Protocol

1. Framställning av plasmid-DNA, nålar, och Injection svDishes Förbered plasmid-DNA med användning av en höghastighets Maxi eller Midi-kit och koncentrera DNA till 2,5 mg / ml med användning av etanol-utfällning. DNA-pelleten löses upp i nukleasfritt avjoniserat vatten. Förvara DNA i 10 till 20 | il alikvoter vid -20 ° C. (Se Kompletterande tabell 1 för en lista över tillgängliga vektorer) Gör en injektion maträtt med hjälp av agaros att bygga ett tråg för att hål…

Representative Results

Etablering transgena Hydra linjer Feed transgena ungar var 2-3 dagar med Artemia nauplii. Hatchlings ibland inte äter för en dag eller två efter kläckning. Några nya ungar kommer aldrig att äta, och därför kommer inte att överleva. Om hatchling är transgena i antingen ektodermala (Figur 1A) eller endodermalt epitelvävnad, att djuret knoppas och samla knopparna som har den mest transgena vävnaden (Figur 1B, C). Fortsätt att göra d…

Discussion

Hydra återger rutin asexuellt, men kräver miljö stimuli för att börja producera könsceller. Dessa stimuli inte väldefinierad för de flesta Hydra arter och kan variera från stam till stam. En betydande hinder för produktion av transgena Hydra är att få embryon regelbundet eftersom det kan vara svårt att i laboratoriemiljö för att förmå Hydra för att bli sexuellt. Den AEP-stam 25, emellertid, producerar gameter lätt i laboratoriet, och detta är den enda st…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ett G. Harold & Leila Y. Mathers Award till HL och en NIH bidrag (R24 GM080527) till RESCEJ var en NRSA Forskarassistent (NIH F32GM9037222) och är för närvarande stöds av en mentor Forskare Development Award från National Institute on Aging (K01AG04435). Vi vill tacka granskarna för värdefulla kommentarer.

Materials

AEP Hydra Strain NA NA Email: Celina Juliano at celina.juliano@yale.edu or Hiroshi Shimizu bubuchin2006@yahoo.co.jp
High Speed Maxi Kit Qiagen 12662
100 x 15 mm Petri Dishes BD Falcon 351029
75 x 50 mm Glass Microscope Slide Sigma CLS294775X50
Microinjection Fish Mold IBI Scientific FM-600
Borosilicate Glass with Filament Sutter Instrument BF100-50-10 O.D.: 1.0 mm, I.D.: 0.50 mm, 10 cm length
Flaming/Brown Micropipette Puller Sutter Instrument P-97
Phenol Red Sigma P3532
Jewelers Forceps, Durmont #5 Sigma F6521
Scalpel Blade #15 Fisher 50-822-421
Mineral oil Sigma M8410-500ML
Microinjector Narishige IM-9B
Magnetic Stand Narishige GJ-1
Iron Plate Narishige IP
Joystick Micromanipulator Narishige MN-151

References

  1. Wittlieb, J., Khalturin, K., Lohmann, J. U., Anton-Erxleben, F., Bosch, T. C. Transgenic Hydra allow in vivo tracking of individual stem cells during morphogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 6208-6211 (2006).
  2. Glauber, K. M., Dana, C. E., Steele, R. E. Hydra. Curr Biol. 20, 964-965 (2010).
  3. Holstein, T. W., Hobmayer, E., David, C. N. Pattern of epithelial cell cycling in hydra. Dev Biol. 148, 602-611 (1991).
  4. Dubel, S., Hoffmeister, S. A., Schaller, H. C. Differentiation pathways of ectodermal epithelial cells in hydra. Differentiation. 35, 181-189 (1987).
  5. Khalturin, K., et al. Transgenic stem cells in Hydra reveal an early evolutionary origin for key elements controlling self-renewal and differentiation. Dev Biol. 309, 32-44 (2007).
  6. Bosch, T., David, C. Stem Cells of Hydra magnipapillata can differentiate into somatic cells and germ line cells. Dev Biol. 121, 182-191 (1987).
  7. David, C. N., Murphy, S. Characterization of interstitial stem cells in hydra by cloning. Dev Biol. 58, 372-383 (1977).
  8. Chapman, J. A., et al. The dynamic genome of Hydra. Nature. 464, 592-596 (2010).
  9. Boehm, A. M., Bosch, T. C. Migration of multipotent interstitial stem cells in Hydra. Zoology (Jena). 115, 275-282 (2012).
  10. Glauber, K. M., et al. A small molecule screen identifies a novel compound that induces a homeotic transformation in Hydra. Development. 140, 4788-4796 (2013).
  11. Siebert, S., Anton-Erxleben, F., Bosch, T. C. Cell type complexity in the basal metazoan Hydra is maintained by both stem cell based mechanisms and transdifferentiation. Dev Biol. 313, 13-24 (2008).
  12. Anton-Erxleben, F., Thomas, A., Wittlieb, J., Fraune, S., Bosch, T. C. Plasticity of epithelial cell shape in response to upstream signals: a whole-organism study using transgenic Hydra. Zoology (Jena). 112, 185-194 (2009).
  13. Hemmrich, G., et al. Molecular signatures of the three stem cell lineages in Hydra and the emergence of stem cell function at the base of multicellularity. Mol Biol Evol. , (2012).
  14. Juliano, C. E., et al. PIWI proteins and PIWI-interacting RNAs function in Hydra somatic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 337-342 (2014).
  15. Nishimiya-Fujisawa, C., Kobayashi, S. Germline stem cells and sex determination in Hydra. Int J Dev Biol. 56, 499-508 (2012).
  16. Milde, S., et al. Characterization of taxonomically restricted genes in a phylum-restricted cell type. Genome Biol. 10, 8 (2009).
  17. Nakamura, Y., Tsiairis, C. D., Ozbek, S., Holstein, T. W. Autoregulatory and repressive inputs localize Hydra Wnt3 to the head organizer. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 9137-9142 (2011).
  18. Gee, L., et al. beta-catenin plays a central role in setting up the head organizer in hydra. Dev Biol. 340, 116-124 (2010).
  19. Fraune, S., et al. In an early branching metazoan, bacterial colonization of the embryo is controlled by maternal antimicrobial peptides. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 18067-18072 (2010).
  20. Bridge, D., et al. FoxO and stress responses in the cnidarian Hydra vulgaris. PLoS One. 5, e11686 (2010).
  21. Boehm, A. M., et al. FoxO is a critical regulator of stem cell maintenance in immortal Hydra. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 19697-19702 (2012).
  22. Franzenburg, S., et al. MyD88-deficient Hydra reveal an ancient function of TLR signaling in sensing bacterial colonizers. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 19374-19379 (2012).
  23. Dana, C. E., Glauber, K. M., Chan, T. A., Bridge, D. M., Steele, R. E. Incorporation of a horizontally transferred gene into an operon during cnidarian evolution. PLoS One. 7, e31643 (2012).
  24. Lenhoff, H. M., Lenhoff, H. M. . Hydra: Research Methods. , 29-34 (1983).
  25. Miller, M. A., Technau, U., Smith, K. M., Steele, R. E. Oocyte development in Hydra involves selection from competent precursor cells. Dev Biol. 224, 326-338 (2000).
  26. Lenhoff, H. M., Lenhoff, H. M. . Hydra: Research Methods. , 53-62 (1983).
check_url/kr/51888?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Juliano, C. E., Lin, H., Steele, R. E. Generation of Transgenic Hydra by Embryo Microinjection. J. Vis. Exp. (91), e51888, doi:10.3791/51888 (2014).

View Video