Summary

Используя специально разработанный гальванотаксис палаты по изучению направленной миграции из клеток простаты

Published: December 07, 2014
doi:

Summary

We present a method to apply a physiological electric field to migrating, immortalized prostate cells in a custom-made galvanotaxis chamber. Using this method, we demonstrate that 2 lines of non-tumorigenic prostate cells demonstrate different degrees of migration directionality in the field.

Abstract

Физиологический электрическое поле служит специфические биологические функции, такие как направление миграции клеток в развитие эмбриона, нейронов и эпителиальных нарост заживления ран. Применение постоянного тока электрическое поле культивируемых клеток в пробирке индуцирует направленную миграцию клеток, или гальванотаксис. 2-мерный метод гальванотаксис демонстрируется здесь модифицированный заказ поли (винилхлорида) (PVC) камер, поверхность стекла, платиновыми электродами и использования моторизованной стадии, на которой клетки изображаемого. Камеры ПВХ и платиновые электроды обладают низкой цитотоксичности и являются доступными и повторного использования. Поверхность стекла и моторизованный столик микроскопа улучшить качество изображения и позволяют возможные изменения в поверхности стекла и лечения к клеткам. Мы снимали гальванотаксис из двух не онкогенных, SV40-увековечена клеточных линий простаты, PRNS-1-1 и PNT2. Эти два клеточных линий показывает, подобные скорости миграции и, как мигрировать в направлениикатод, но они показывают различную степень направленности в гальванотаксис. Полученные результаты с помощью этого протокола предполагают, что PRNS-1-1 и клеточные линии PNT2 могут иметь различные присущие особенности, которые регулируют их направляющие мигрирующих ответов.

Introduction

Эндогенные электрические поля обнаружены в различных тканях, таких как кожа 1, 32, 33 и головного мозга 2. Физиологический электрическое поле служит специфические биологические функции, в том числе направляющего развития эмбриона 3, 4, направляя разрастание нервных процессов 5, 6 и продвижение эпителиальных и закрытие раны роговицы 1, 7. В пробирке, применение постоянного тока электрического поля в культивируемых клетках имитирует физиологическую электрического поля и вызывает направленную миграцию клеток, или гальванотаксис. Гальванотаксис была изучена в фибробластах 8, рыбные кератиноцитов 9, человеческого эпителия и роговицы кератиноцитов 10-12, лимфоциты 13, нейробласты 2, и нервных клеток-предшественников 14. При воздействии приложенного поля, большинство исследованных клеток мигрировать направленно к катодной (-) полюса. Тем не менее, несколько раковых клеток, в том числе высокой метастатическойчеловека клетки рака молочной железы и простаты человека линии раковых клеток РС-3М, перейти к анодной (+) полюса 15, 16. Некоторые механизмы, как предложено в качестве посредника гальванотаксис или объяснить способность клеток ощущать электрическое поле, в том числе активации рецепторов эпидермального фактора роста 12, эпителиальных натриевых каналов 17, PI3K и PTEN 18, и выпуск ионов кальция 15, 19. Механизм еще не полностью изучены, и вполне возможно, что несколько сигнальных путей участвуют в гальванотаксис.

2-мерный метод гальванотаксис демонстрируется здесь полезно характеризовать направленную миграцию адгезивных, подвижных клеток, либо контролировать отдельные миграцию клеток 10, 12, 17 или миграцию листе сливающихся клеток 18, 20. Этот метод модифицированной из Пэн и Джаффе 21, а Нисимура и др. 10 с на заказ, четких камер ПВХ, со съемным coverslIPS позволяет легко поиска клеток после гальванотаксис для вторичного анализа, такие как томография иммуно-флуоресценции. Стекло поверхность гальванотаксис камер оптико-совместимый, которая позволяет съемку на высоких увеличениях и с флуоресцентно-меченых клеток. Это также позволяет экспериментальную конструкцию с модификацией поверхности стекла, например, изменение поверхностного покрытия или сборы. Распорки из № 1 покровного стекла используются в камерах, чтобы минимизировать ток через клеток; Поэтому джоулева тепла, которое пропорционально квадрату тока, не перегреть клетки в ходе эксперимента. Соединительные агар мосты предотвратить непосредственный контакт электродов с клетками и предотвратить изменение рН среды или концентрации ионов при гальванотаксис.

Два не-онкогенные линии предстательной железы человека клеток были исследованы на их ответ гальванотаксис в данном исследовании. В PRNS-1-1 22 и PNT2 23 оба SV40-иммортализованные, фактор роста-зависимой линии клеток, экспрессирующих эпителиальные маркеры Цитокератин 5, 8, 18 и 19 с низким или вообще без экспрессии простатического специфического антигена (ПСА). Обе клеточные линии поддерживают многоугольную морфологию нормальных эпителиальных клеток, но хромосомных аномалий наблюдался в кариотипированием 22, 24. Несмотря на то, PRNS-1-1 и PNT2 схожие поведения в большинстве экспериментов, они показывают различия в формировании структуры ацинозной и в гальванотаксис. На 3-D матрицы, Matrigel, что PRNS-1-1 клетки образуют полые ацинарные структуры с просветами, напоминающих нормально предстательной железы ткани 25. Тем не менее, PNT2 клетки образуют твердые сфероидов без просвета или поляризованного эпителия 26. В PRNS-1-1 клетки также демонстрируют более высокую galvanotactic ответ, чем PNT2 в данном исследовании. Корреляция между образованием структуры ацинозной и гальванотаксис в PRNS-1-1 предположить, что galvanotactic сигналы могут играть определенную роль в организации PRostate железы движения ткани в ответ на эндогенные электрических полей, а также предоставляет дополнительные характеристики для различения этих 2 клеточных линий.

Protocol

1. Культивирование клеток простаты Культура PRNS-1-1 и PNT2 клеток простаты на 100 мм чашки для культивирования в среде RPMI 1640 с добавлением 10% FBS и антибиотиков противогрибкового средства при температуре 37 ° С с 5% СО 2. Обновить питательной среды каждый день до тех пор, пока клетки не ?…

Representative Results

Две линии клеток предстательной железы (PRNS-1-1 и PNT2) были исследованы с помощью этого метода. Клетки обеих линий переноса при подобных скоростью 1,0 +/- 0,3 мкм / мин в течение 2 часов (фиг.5А). Тем не менее, направленность к электрическому полю составляет 0,7 +/- 0,3 для PRNS-1-1 линии, и 0,2 +/- 0,8 д?…

Discussion

Анализ ответ гальванотаксис клетки был важным функциональным показателем для многих клеточных миграционных или ростовых процессов 27, 28. Здесь мы используем заказ камеру со стеклянной поверхностью, чтобы снять два сотовых простаты линий. Эти клеточные линии показали, различные ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Клеточные простаты линии любезно предоставлены доктором Лин-Ю Ванг и д-р Син-Jien Кунг на онкологический центр Калифорнийского университета в Дэвисе. Этот проект поддерживается NIH гальванотаксис гранта 4R33AI080604.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cells
pRNS-1-1 prostate cells Lee et. al., (1994)
PNT2 prostate cells Sigma-Aldrich 95012613-1VL Berthon et al., (1995)
Medium and solutions
RPMI 1640 medium  Invitrogen 11875-093 warm up to 37°C before use
Fetal Bovine Serum – Premium Atlanta Biologicals S11150 10% in PBS, warm up to 37°C before use
Antibiotic-Antimycotic (100x) Life Technologies 15240 add 5mL to 500mL medium
2-propanol VWR BDH1133-5GL
PBS 137mM NaCl, 2.7mM KCl, 4.3mM Na2HPO4 and 1.5mM KH2PO4 in 1000mL of H2O, pH to 7.4 and autoclaved, warm up to 37°C before use
0.25% Trypsin-EDTA  Invitrogen 25200-056 warm up to 37°C before use, treat cells for 3-5 min at 37°C
Galvanotaxis device
Galvanotaxis chambers Precision Plastics Inc, CA custom-designed (1/4" X 2" X 3.5"), non-toxic, clear PVC chambers
Galvanotaxis electrodes UCD electric shop platinum coiled electrodes with flexable cords
Galvanotaxis power box Substrate Engineering, CA custom-designed DC power output with voltmeter
Microscope Cover Glass, Large, 45X50mm-No. 1.5 Fisher 12-544-F
Microscope Cover Glass, small, 25X25mm, No. 1 ThermoScientific 3307
Diamond point marker ThermoScientific 750
Marine grade silicon sealer, clear 3M 051135-08019
High vacuum grease Dow Corning 2021846-0807
6mL syringe Fisher Scientific 05-561-64
Nichiryo Syringe, 1.5mL Nichiryo SG-M
Cotton applicators Purtian Medical Products 806-WC
Qtips Johnson & Johnson 729389
Nalgene 180 PVC tubing  Nalgene 8000-9030 503/16 ID x 5/16 OD x 1/16 Wall
Bacto-Agar Difco 0140-01 make 2% agar solution
Razor Blade Personna 74-0001
Equipments and Software
Benchtop Centrifuge Eppendorf 5810R operated with an A-4-62 rotor
Cellometer Auto T4 Nexcelom Auto T4
Cellometer counting chambers Nexcelom CHT4-SD100-002 load 20uL cell solutions to count
Culture Temp Warming plate Bel-Art Scienceware 370150000 to keep the galvanotaxis chambers at 37°C 
Eclipse TE-2000 microscope with motorized stage and environmental chamber Nikon
Plan Fluor 10X/0.30 objective len Nikon
Retiga EX CCD camera  Qimaging Cooled CCD camara, mono-color, 12-bit
Compressed air with 5% CO2  Airgas special order
Volocity 6.3 PerkinElmer Image acquiring software
Improvision OpenLab 5.5.2 PerkinElmer Cell tracking software and customized to measure migration angles
FileMaker Pro Advanced, 8.0 FileMaker
Microsoft Excel 2008 for Mac Microsoft

References

  1. Reid, B., Nuccitelli, R., Zhao, M. Non-invasive measurement of bioelectric currents with a vibrating probe. Nat Protoc. 2 (3), 661-669 (2007).
  2. Cao, L., et al. Endogenous electric currents might guide rostral migration of neuroblasts. EMBO Rep. 14 (2), 184-190 (2013).
  3. Hotary, K. B., Robinson, K. R. Endogenous electrical currents and voltage gradients in Xenopus embryos and the consequences of their disruption. Dev Biol. 166 (2), 789-800 (1994).
  4. Hotary, K. B., Robinson, K. R. Evidence of a role for endogenous electrical fields in chick embryo development. Development. 114 (4), 985-996 (1992).
  5. Yamashita, M. Electric axon guidance in embryonic retina: galvanotropism revisited. Biochem Biophys Res Commun. 431 (2), 280-283 (2013).
  6. Wood, M. D., Willits, R. K. Applied electric field enhances DRG neurite growth: influence of stimulation media, surface coating and growth supplements. J Neural Eng. 6 (4), 046003 (2009).
  7. Kucerova, R., et al. The role of electrical signals in murine corneal wound re-epithelialization. J Cell Physiol. 226 (6), 1544-1553 (2011).
  8. Sillman, A. L., Quang, D. M., Farboud, B., Fang, K. S., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. Human Dermal fibroblasts do not exhibit directional migration on collagen I in direct-current electric fields of physiological strength. Exp Dermatol. 12 (4), 396-402 (2003).
  9. Allen, G. M., Mogilner, A., Theriot, J. A. Electrophoresis of cellular membrane components creates the directional cue guiding keratocyte galvanotaxis. Curr Biol. 23 (7), 560-568 (2013).
  10. Nishimura, K. Y., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. Human keratinocytes migrate to the negative pole in direct current electric fields comparable to those measured in mammalian wounds. J Cell Sci. 109 (1), 199-207 (1996).
  11. Farboud, B., Nuccitelli, R., Schwab, I. R., Isseroff, R. R. DC electric fields induce rapid directional migration in cultured human corneal epithelial cells. Exp Eye Res. 70 (5), 667-673 (2000).
  12. Fang, K. S., Ionides, E., Oster, G., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. Epidermal growth factor receptor relocalization and kinase activity are necessary for directional migration of keratinocytes in DC electric fields. J Cell Sci. 112 (12), 1967-1978 (1999).
  13. Li, J., et al. Activated T lymphocytes migrate toward the cathode of DC electric fields in microfluidic devices. Lab Chip. 11 (7), 1298-1304 (2011).
  14. Meng, X., Arocena, M., Penninger, J., Gage, F. H., Zhao, M., Song, B. PI3K mediated electrotaxis of embryonic and adult neural progenitor cells in the presence of growth factors. Exp Neurol. 227 (1), 210-217 (2011).
  15. Wu, D., Ma, X., Lin, F. DC Electric Fields Direct Breast Cancer Cell Migration, Induce EGFR Polarization, and Increase the Intracellular Level of Calcium Ions. . Cell Biochem Biophys. 67 (3), 1115-1125 (2013).
  16. Martin-Granados, C., et al. A role for PP1/NIPP1 in steering migration of human cancer cells. PLoS One. 7 (7), 40769 (2012).
  17. Yang, H. Y., Charles, R. P., Hummler, E., Baines, D. L., Isseroff, R. R. The epithelial sodium channel mediates the directionality of galvanotaxis in human keratinocytes. J Cell Sci. 126 (9), 1942-1951 (2013).
  18. Zhao, M., et al. Electrical signals control wound healing through phosphatidylinositol-3-OH kinase-gamma and PTEN. Nature. 442 (7101), 457-460 (2006).
  19. Shanley, L. J., Walczysko, P., Bain, M., MacEwan, D. J., Zhao, M. Influx of extracellular Ca2+ is necessary for electrotaxis in Dictyostelium. J Cell Sci. 119 (22), 4741-4748 (2006).
  20. Zhao, M., Agius-Fernandez, A., Forrester, J. V., McCaig, C. D. Directed migration of corneal epithelial sheets in physiological electric fields. Invest Ophthalmol Vis Sci. 37 (13), 2548-2558 (1996).
  21. Peng, H. B., Jaffe, L. F. Polarization of fucoid eggs by steady electrical fields. Dev Biol. 53 (2), 277-284 (1976).
  22. Lee, M., et al. Characterization of adult human prostatic epithelial-cells immortalized by polybrene-induced DNA transfection with a plasmid containing an origin-defective sv40-genome. Int J Oncol. 4 (4), 821-830 (1994).
  23. Berthon, P., Cussenot, O., Hopwood, L., Leduc, A., Maitland, N. Functional expression of sv40 in normal human prostatic epithelial and fibroblastic cells – differentiation pattern of non-tumorigenic cell-lines. Int J Oncol. 6 (2), 333-343 (1995).
  24. Aurich-Costa, J., Vannier, A., Grégoire, E., Nowak, F., Cherif, D. IPM-FISH, a new M-FISH approach using IRS-PCR painting probes: application to the analysis of seven human prostate cell lines. Genes Chromosomes Cancer. 30 (2), 143-160 (2001).
  25. Tyson, D. R., Inokuchi, J., Tsunoda, T., Lau, A., Ornstein, D. K. Culture requirements of prostatic epithelial cell lines for acinar morphogenesis and lumen formation in vitro: role of extracellular calcium. Prostate. 67 (15), 1601-1613 (2007).
  26. Lang, S. H., Sharrard, R. M., Stark, M., Villette, J. M., Maitland, N. J. Prostate epithelial cell lines form spheroids with evidence of glandular differentiation in three-dimensional Matrigel cultures. Br J Cancer. 85 (4), 590-599 (2001).
  27. Babona-Pilipos, R., Popovic, M. R., Morshead, C. M. A galvanotaxis assay for analysis of neural precursor cell migration kinetics in an externally applied direct current electric field. J Vis Exp. (68), (2012).
  28. Meng, X., et al. Electric field-controlled directed migration of neural progenitor cells in 2D and 3D environments. J Vis Exp. (60), (2012).
  29. Pullar, C. E., Isseroff, R. R. Cyclic AMP mediates keratinocyte directional migration in an electric field. J Cell Sci. 118 (9), 2023-2034 (2005).
  30. Sheridan, D. M., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. Imposition of a physiologic DC electric field alters the migratory response of human keratinocytes on extracellular matrix molecules. J Invest Dermatol. 106 (4), 642-646 (1996).
  31. Feng, J. F., et al. Guided migration of neural stem cells derived from human embryonic stem cells by an electric field. Stem Cells. 30 (2), 349-355 (2012).
  32. Mukerjee, E. V., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R., Collins, S. D., Smith, R. L. Microneedle array for measuring wound generated electric fields. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 1, 4326-4328 (2006).
  33. Nuccitelli, R., Nuccitelli, P., Li, C., Narsing, S., Pariser, D. M., Lui, K. The electric field near human skin wounds declines with age and provides a noninvasive indicator of wound healing. Wound Rep. and Reg. 19, 645-655 (2011).

Play Video

Cite This Article
Yang, H., Dinh La, T., Isseroff, R. R. Utilizing Custom-designed Galvanotaxis Chambers to Study Directional Migration of Prostate Cells. J. Vis. Exp. (94), e51973, doi:10.3791/51973 (2014).

View Video