Summary

MYH6プロモーター - 選択と組み合わせたES細胞のプログラミングに基づいて、マウス心臓ペースメーカー細胞凝集体の生成

Published: February 17, 2015
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Summary

このプロトコルは、マウス多能性幹細胞(PSC)から機能洞結節組織を生成する方法について説明します。 T-BOX3(TBX3)過剰発現プラス心臓ミオシン-重鎖(MYH6)プロモーター抗生物質選択は、高純度のペースメーカー細胞凝集につながる。これらの「誘導された-洞房-体」(「iSABs」)、80%以上のペースメーカー細胞を含む非常に増加鼓動率を示し、ex vivoで心筋をペーシングすることができます。

Abstract

「洞不全症候群」の治療は、人工ペースメーカーに基づいています。これらには、バッテリ障害や感染症などの危険を負担する。さらに、それらは、ホルモン応答性を欠いており、全体的な手順は、コスト集約的である。のPSCから生成された「生物学的ペースメーカーは、「代替になることがあり、まだ胚様体(EB)におけるペースメーカー細胞の典型的な含有量は極めて低い。記載されているプロトコルはMYH6プロモーターベースの抗生物質選択で洞結節デューサTBX3 を経由して 、ネズミのPSCの「前方プログラミング」を兼ね備えています。これは> 80%の生理学的に機能的なペースメーカー細胞の一貫性の心筋細胞凝集体が得られます。これらの「誘導された-洞房-体」(「iSABs」)自発的にマウス心臓から単離したリンパ節の細胞に対応するまだ未達の周波数(400〜500 BPM)に委託し、ex vivoでのマウス心筋をペーシングすることができますされている。記載されているプロトコル高純度洞の使い方結節単一細胞は、in vitro薬物試験のために使用することができるを生成することができる。さらに、このプロトコルに従って生成iSABsは、心臓組織工学に向けての重要なステップになることがある。

Introduction

用語「洞不全症候群は、「心臓ペースメーカーシステムの劣化につながる複数の疾患をまとめたもの。それは病的な、症候性洞性徐脈、洞房ブロック、洞停止だけでなく、頻脈、徐脈症候群を含む。これにより、「洞不全症候群」は、多くの場合、虚血性心疾患、心筋症または心筋炎などの一般的な心疾患を伴っている。現在、治療のアプローチは、電気的ペースメーカーの移植に基づいている。しかし、このような感染症やバッテリ障害などのリスクの数と共に進む。全体として、合併症の発生率は、人工ペースメーカーを移植した患者では依然として非常に高い。内因性のペースメーカーとは対照的に、また、これらのデバイスは、ホルモン刺激に応答しない。

将来の選択肢はいるのPSCが役立つことができる「生物学的ペースメーカー」の利用可能性に依存してもよい適切な細胞源とそれはまた、インビトロ薬物試験のために非常に有用であるように。しかし、大きな問題は、胚様体(EB)内の洞結節細胞の非常にまれな外観にある-これは通常、〜0.5%1を超えない。

以前は、それが特定の心筋細胞のサブタイプに向かって「前方プログラミング」は、関連する中胚葉、固有事後1(MesP1)及びNK2転写因子、遺伝子座5(Nkx2.5の)2のような明確な早期の心血管系の転写因子の過剰発現を介して実行可能であることが示された、 3。洞房結節(SAN)の通常のサイズおよび機能のために、Tボックス転写因子TBX3ペースメーカー遺伝子プログラムを開始し、SAN 4の分化を制御することが示されている、非常に重要である。これは機能的ペースメーカー細胞の出現を高めながら、コンテンツがまだ全体cardiomyocytic細胞集団内の約40%を超えなかった。

したがって、追加のMYH6プロモーターベースの抗生物質選択ステップ5は、私たちによって導入された。 in vitroでの栽培にネズミの心臓のものと同等のを近似初めてin vitroで非常に増加鼓動の周波数(> 400 BPM)を示す;これは最終的にまだ未観測心筋細胞凝集体(iSABs「「誘導された洞房体」)につながるマウスの心臓6から分離洞結節細胞。イソプレナリン政権下では550 BPMのさえ破っ周波数が達成される。注目すべきは、iSABsは7を解析し大規模な生理的から明らかなように、80%以上の機能的な結節細胞で構成されています。最近では、直接リプログラミング19を使用して、洞結節細胞を生成するには、いくつかのアプローチが、表面が16,17が記述された小分子との14または薬理学的治療マーカー。しかし、これらの方法はいずれも、ペースメーカー細胞のような高純度につながっていないと、マウスに近い周波数を破って、彼iSABsで観察されたように芸術。

さらに、それらの自発的な拍動活性を失った栽培成体マウス脳切片のex vivoモデルにおいて、iSABsそれによって自発的にアクティブ残りとロバスト収縮7に心臓切片ペーシング、スライス組織に組み込むことができる。これらのiSABsを生成するための詳細なプロトコルは、この論文に記載されている。

Protocol

起動する前に1.提言彼らは洞結節細胞に適切に区別しないので、マイコプラズマで汚染されたのPSCを使用しないでください。プロトコルを開始する前に、マイコプラズマ汚染のためのテスト。マイコプラズマの迅速、高感度検出のためのPCRキットを使用してこれを行うとmanufacturer`sプロトコルに従う。 各ペトリ皿(ステップ2.3.4)、被膜37°Cで1時間冷水魚皮から無菌7ミリリット?…

Representative Results

記載されているプロトコルは、マウス心臓の鼓動周波数に近い(映画で示されている)のPSCから約450 BPMの叩解周波数でiSABsの生成を可能にする。 図1に示すようにiSABsの解離(ステップ2.8.8)の後に観察された単一細胞が洞結節(スピンドルおよびクモ細胞)の細胞の典型的な形状を示す。これらの細胞機能に必須であることが知られている高発現タンパク質Connexin45(Cx45)、Connex…

Discussion

細胞由来の心臓ペースメーカー幹細胞生産能」とは、生物学的ペースメーカー」の意味での適切な心臓リズムの再構成を可能にすることができる。同様に、in vitroでの薬物検査は、それらの利用の恩恵を受ける。 PSCがペースメーカー細胞特性8,9,10,11,12,13心筋細胞を含む哺乳動物の体の任意の細胞型を生じさせることができる。しかし、典型的には、「胚様ボディ」内の細胞集団は、?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number
Iscove's liquid medium with stable glutamine Biochrom AG FG 0465
DMEM liquid medium without Na-pyruvate, with stable glutamine Biochrom AG FG 0435
CLS type IV, CLS IV Biochrom AG C4-22
Non-essential amino acids Biochrom AG K 0293
FBS Superior Biochrom AG S 0615
Sodium pyruvate (100 mM) Biochrom AG L 0473
G 418-BC liquid (ready-to-use solution), sterile Biochrom AG A 2912
Reagent reservoir PP f.multichannel pip. 60ml,sterile Brand 703409
Accutase eBioscience,Inc. 00-4555-56
Eppendorf Xplorer/Xplorer plus, electronic pipette Eppendorf 4861000155
Falcon Cell Strainer 40µm Falcon 352340
Penicillin/Streptomycin  GE Healthcare P11-010
Petri Dishes Greiner BioOne 663102
DPBS without Ca and Mg PAN-Biotech P04-36500
Fetal bovine serum PAN-Biotech P30-3302
Leukemia inhibitory factor Phoenix Europe GmbH LIF-250
Quadratic petri dishes Roth PX67.1
Gelatin from cold water fish skin SigmaAldrich G7765
2-Mercaptoethanol SigmaAldrich M3148 
1-Thioglycerol SigmaAldrich M6145
Tissue culture dishes TPP 93100
Tissue culture flask TPP 90076
Tissue culture test plates (24 well) TPP 92424

References

  1. Wobus, A. M., Wallukat, G., Hescheler, J. Pluripotent mouse embryonic stem cells are able to differentiate into cardiomyocytes expressing chronotropic responses to adrenergic and cholinergic agents and Ca2+ channel blockers. Differentiation. 48 (3), 173-182 (1991).
  2. David, R., et al. MesP1 drives vertebrate cardiovascular differentiation through Dkk-1-mediated blockade of Wnt-signalling. Nat Cell Biol. 10, 338-345 (2008).
  3. David, R., et al. Forward programming of pluripotent stem cells towards distinct cardiovascular cell types. Cardiovasc Res. 84 (2), 263-272 (2009).
  4. Hoogaars, W. M., et al. Tbx3 controls the sinoatrial node gene program and imposes pacemaker function on the atria. Genes Dev. 21 (9), 1098-1112 (2007).
  5. Klug, M. G., Soonpaa, M. H., Koh, G. Y., Field, L. J. Genetically selected cardiomyocytes from differentiating embronic stem cells form stable intracardiac grafts. J Clin Invest. 98 (1), 216-224 (1996).
  6. Marger, L., et al. Pacemaker activity and ionic currents in mouse atrioventricular node cells. Channels (Austin). 5 (3), 241-250 (2011).
  7. Jung, J. J., et al. Programming and isolation of highly pure physiologically and pharmacologically functional sinus-nodal bodies from pluripotent stem cells). Stem cell reports. 2 (5), 592-605 (2014).
  8. Maltsev, V. A., Wobus, A. M., Rohwedel, J., Bader, M., Hescheler, J. Cardiomyocytes differentiated in vitro from embryonic stem cells developmentally express cardiac-specific genes and ionic currents. Circulation research. 75 (2), 233-244 (1994).
  9. He, J. Q., Ma, Y., Lee, Y., Thomson, J. A., Kamp, T. J. Human embryonic stem cells develop into multiple types of cardiac myocytes: action potential characterization. Circ Res. 93 (1), 32-39 (2003).
  10. Yanagi, K., et al. Hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated channels and T-type calcium channels confer automaticity of embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. Stem cells. 25 (11), 2712-2719 (2007).
  11. Barbuti, A., et al. Molecular composition and functional properties of f-channels in murine embryonic stem cell-derived pacemaker cells. J Mol Cell Cardiol. 46 (3), 343-351 (2009).
  12. Ma, J., et al. High purity human-induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: electrophysiological properties of action potentials and ionic currents. American journal of physiology. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (5), H2006-H2017 (2011).
  13. David, R., Franz, W. M. From pluripotency to distinct cardiomyocyte subtypes. Physiology (Bethesda). 27 (3), 119-129 (2012).
  14. Scavone, A., et al. Embryonic stem cell-derived CD166+ precursors develop into fully functional sinoatrial-like cells). Circ Res. 113 (4), 389-398 (2013).
  15. Morikawa, K., et al. Identification, isolation and characterization of HCN4-positive pacemaking cells derived from murine embryonic stem cells during cardiac differentiation. Pacing Clin Electrophysiol. 33 (33), 290-303 (2010).
  16. Wiese, C., et al. Formation of the sinus node head and differentiation of sinus node myocardium are independently regulated by Tbx18 and Tbx3. Circ Res. 104 (3), 388-397 (2009).
  17. Kleger, A., et al. Modulation of calcium-activated potassium channels induces cardiogenesis of pluripotent stem cells and enrichment of pacemaker-like cells. Circulation. 122 (18), 1823-1836 (2010).
  18. Bakker, M. L., et al. T-box transcription factor TBX3 reprogrammes mature cardiac myocytes into pacemaker-like cells. Cardiovasc Res. 94 (3), 439-449 (2012).
  19. Kapoor, N., Liang, W., Marban, E., Cho, H. C. Direct conversion of quiescent cardiomyocytes to pacemaker cells by expression of Tbx18. Nat Biotechnol. 31 (1), 54-62 (2013).
  20. Johns, D. C., et al. Adenovirus-mediated expression of a voltage-gated potassium channel in vitro (rat cardiac myocytes) and in vivo (rat liver). A novel strategy for modifying excitability. J Clin Invest. 96 (2), 1152-1158 (1995).
  21. Nuss, H. B., Marban, E., Johns, D. C. Overexpression of a human potassium channel suppresses cardiac hyperexcitability in rabbit ventricular myocytes. J Clin Invest. 103 (6), 889-896 (1999).
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Cite This Article
Rimmbach, C., Jung, J. J., David, R. Generation of Murine Cardiac Pacemaker Cell Aggregates Based on ES-Cell-Programming in Combination with Myh6-Promoter-Selection. J. Vis. Exp. (96), e52465, doi:10.3791/52465 (2015).

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