Summary

Ferric-Chloride geïnduceerde trombose Muis Model op halsslagader en Mesenterium Vessel

Published: June 29, 2015
doi:

Summary

The FeCl3 induced thrombosis model in mice is described herein. A method to monitor thrombus growth by intravital microscopy observation on a mesenteric vessel and by blood flow measurement in the carotid artery is presented.

Abstract

Severe thrombosis and its ischemic consequences such as myocardial infarction, pulmonary embolism and stroke are major worldwide health issues. The ferric chloride injury is now a well-established technique to rapidly and accurately induce the formation of thrombi in exposed veins or artery of small and large diameter. This model has played a key role in the study of the pathophysiology of thrombosis, in the discovery and validation of novel antithrombotic drugs and in the understanding of the mechanism of action of these new agents. Here, the implementation of this technique on a mesenteric vessel and carotid artery in mice is presented. The method describes how to label circulating leukocytes and platelets with a fluorescent dye and to observe, by intravital microscopy on the exposed mesentery, their accumulation at the injured vessel wall which leads to the formation of a thrombus. On the carotid artery, the occlusion caused by the clot formation is measured by monitoring the blood flow with a Doppler probe.

Introduction

Het onderzoek van de bij de ontwikkeling van trombose en de evaluatie van de effectiviteit van anti-trombotische geneesmiddelen mechanismen vereist gevestigde experimentele diermodellen. Grote diermodellen waren de eersten die worden gebruikt als zij grote schepen meer op mensen dan knaagdieren 1. Echter, hoge kosten, de grotere vereiste voorzieningen en de moeilijkheid genetisch manipuleren zijn belangrijke nadelen aan het gebruik en grote dieren zijn thans beperkt tot late preklinische studies eenmaal voorproeven op knaagdieren eindresultaten 2 gegeven. Met brede beschikbaarheid van transgene en knockout stammen en hun kleine grootte die de hoeveelheid antitrombotische geneesmiddelen nodig voor in vivo onderzoek minimaliseert worden muizen voornamelijk gebruikt voor trombose onderzoek. Daarom zijn verscheidene modellen van trombotische aandoeningen ontwikkeld bij muizen 3.

Vele gevestigde trombose modellen verstoren de intimeen laag van de vaatwand, gevolgd door blootstelling van de sub endotheliale extracellulaire matrix om de bloedstroom induceren van de vorming van bloedstolsels 4. De trombi kan van blootstelling van collageen waarvan bloedplaatjes activering triggers of / en de blootstelling van weefselfactor waarvan de stollingscascade 5 activeert. Verschillende technieken worden vervolgens gebruikt om de oorspronkelijke vaatschade bereiken. Pierangeli et al. Ontwikkelden een mechanische verstoring model met een microchirurgie tool op de dijader 6. Kikushi et al. Beschreef een model dat bestaat uit de toediening van een foto reactieve verbinding (Rose Bengal) dat zich ophoopt in de lipide bilaag van endotheliale cellen gevolgd door de specifieke excitatie van de vaatwand plaats met groen licht (540 nm) 7. De schade kan ook veroorzaakt worden door een korte hoge intensiteit pulse laser belichting 8. Een andere techniek allereerst vastgesteld aan de halsslagader van rattenbestaat in de topicale toepassing van ferrichloride (FeCl3) 9. In dit geval, het vaartuig erosie resultaten uit die door FeCl3 vrije radicalen die lipideperoxidatie en vernietiging van endotheelcellen 10 veroorzaakt. De schade induceert de expressie van verschillende adhesiemoleculen triggering bloedplaatjesadhesie en aggregatie en leukocyten rekrutering. Het is aangetoond dat leucocyten, met name neutrofielen, spelen een cruciale rol bij de activatie van de bloedcoagulatie cascade die leidt tot trombose 11. Deze methode is bijzonder geschikt voor de stollingscascade te reproduceren; onderzoekers moeten in gedachten houden dat, in dit muismodel, trombose wordt meestal veroorzaakt bij gezonde vaten terwijl trombose bij mensen voornamelijk plaatsvindt in zieke bv houden. atherosclerotische vaten.

Aangezien dit model is zeer eenvoudig te implementeren en is ook effectief bij muizen, is nu de meest gebruikte trombose model voor kleine dieren in vivo studies. Bovendien biedt deze techniek de mogelijkheid om de vorming van trombi in diverse vaten veroorzaken. Target schepen kunnen slagaders of aders van grote diameter (carotis, dijbeen, vena cava) of kleine diameter (mesenterium, cremaster) 12-14. Meer recent werd ook gebruikt op het proximale cerebralis media een model van beroerte 15 ontwikkelen. De trombose formatie kan direct worden waargenomen door het opklaren na fluorescerende etikettering van bloedplaatjes en leukocyten of gevolgd door het meten van de bloedstroom daling met een temperatuur sonde of een Doppler sonde 12,16,17. Diverse parameters zoals de occlusietijd, trombusvorming tijd of trombus grootte kan vervolgens worden onderzocht. De fysiologische verschillen tussen de vaten onderzochte resulteren in aanzienlijke verschillen in de trombi verkregen. Daarom onderzoekers selecteert gewoonlijk het doelvat volgens de parameters die ze willen measure en / of de ziekte instelling die ze willen onderzoeken. Kenmerkend het model de halsslagader relevanter voor onderzoek naar atherotrombose betrekking tot myocardinfarct of beroerte, terwijl studies naar de vena cava relevanter voor onderzoek naar diepe veneuze trombose. De toegankelijkheid van de verschillende vaten bepaalt ook de methode voor groei trombus te meten. Bijvoorbeeld, de mesenteriale vaten eenvoudig kunnen worden geopend waardoor dit model geschikt voor intravitale microscopische observatie en het bestuderen van de dynamica van trombusvorming. De halsslagader is minder toegankelijk, maar groter waardoor de bloedstroom metingen en bieden een uitstekend model om occlusieve trombose te bestuderen.

Het ferrichloride geïnduceerde trombose model heeft enorme vooruitgang die in het begrijpen van deze pathologie. Het is gebruikt in veel studies gericht op de rol van de von Willebrand factor in trombosevorming 18,19. Gecombineerd met genetische modicatie technieken heeft het mogelijk gemaakt een groot aantal specifieke gen betrokken bij trombotische aandoeningen. Lamrani et al. bijvoorbeeld gebleken dat een knock-in van het JAK2 V617F gen is gekoppeld aan een versnellende vorming van instabiele stolsel 20. Zhang et al. Hebben de fysiologische gevolgen van de bloedplaatjes P2Y12 receptor onderzocht en aangetoond dat transgene muizen overexpressie specifiek deze receptor in bloedplaatjes alleen weergegeven een snelle en stabiele trombusvorming in mesenterica verwond met FeCl3 21. De cruciale rol van weefsel-type plasminogeen activator (tPA) en urokinase-type plasminogeen activator (uPA) in fibrine degradatie leidt is onderzocht bij deze methode 22. Verder biedt dit model ook een eenvoudige en nauwkeurige manier testen van de fibrinolytische capaciteit van vele nieuwe geneesmiddelen in vivo. Zo hebben Wang et al. Dit model th tweedehandse preklinische validatie van een nieuw recombinant plasminogeenactivator gericht tegen geactiveerde plaatjes 23. Deze methode staat ook de validatie van therapeutische eiwitten geïsoleerd uit het speeksel van teken, vampier vleermuizen en muggen of uit het gif van slangen met een specifieke identificatie van de doelgroep 24-27. Deze voorbeelden demonstreren de veelzijdigheid van het ferrichloride model. In dit artikel richten we ons op twee methoden en studie ijzerchloride geïnduceerde trombose op twee verschillende type drukvat; mesenterische vat en halsslagader.

Protocol

Alle experimenten met dieren werden goedgekeurd door de Alfred Medical Research en Opleiding Precinct Animal Ethics Committee (E / 1534/2015 / B). Alle chirurgische manipulaties werden uitgevoerd onder volledige narcose en de dieren hebben geen pijn ervaren in elk stadium. Alle experimenten worden beschreven, zijn niet-herstel. 1. Voorbereiding Snijd dunne banden van filter papier (1 mm x 2 mm). Vers bereiden 2 oplossingen ferrichloride van 4% (w / v) en 6% (w / v) verdu…

Representative Results

De fluorescentie microscopie intravitale observatie van het mesenterium wordt de accumulatie van Rhodamine 6G tonen gelabelde bloedplaatjes en leukocyten langs de vatwand verwond door FeCl3. De geleidelijke vorming van een gedeeltelijk thrombus wordt bewaakt in een 200 urn mesenterium vat (Figuur 1). Een trombus langzaam weergegeven en is duidelijk herkenbaar na de eerste minuut van blootstelling aan FeCl3 (figuur 1, t = 60 sec). 40 sec na verwijdering van het filt…

Discussion

De ijzerchloride geïnduceerde trombose model is een uitstekend research tool. Zoals getoond in deze studie, is het uiterst eenvoudig te implementeren en bij gebruik in combinatie met intravitale microscopie of Doppler flowmeter, biedt een goede real-time monitoring van trombusvorming. De belichtingstijd en de concentratie van FeCl3 aanpassen, maar biedt ook de mogelijkheid om hetzij niet-occlusief of occlusieve trombi produceren.

Deze werkwijze heeft ook een aantal beperkingen. I…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen graag technische ondersteuning van Joy Yao en Dr. Karen Alt, evenals de financiering van de NHMRC en NHF erkennen.

Materials

Whatman chromatography paper GE Healthcare 3030917
Iron (III) chloride 40 % (w/v) VWR 24212.298
Rhodamine 6G Sigma R4127
Inverted microscope  Olympus IX81
Digital black-and-white camera  Olympus XM10
Doppler flowmeter Transonic TS420
Nano-doppler flow probe Transonic 0.5 PBS
Ketamine Hospira  0409-2051-05
Xylazine (Rampun) Bayer 75313 
Petri dish Sarstedt 82.1472
Insulin syringe (29 G) BD Ultra-Fine 326103
Cotton tipped applicators BSN medical 211827A
Dynek dysilk sutures Dynek Pty Ltd CS30100
Dulbecco's phosphate buffer saline (PBS) Gibco life technologies 21600-069
Heating pad Kirchner T60

References

  1. Leadley, R. J., Chi, L., Rebello, S. S., Gagnon, A. Contribution of in vivo models of thrombosis to the discovery and development of novel antithrombotic agents. J Pharmacol Toxicol Methods. 43 (2), 101-116 (2000).
  2. Johnson, G. J., Griggs, T. R., Badimon, L. The utility of animal models in the preclinical study of interventions to prevent human coronary artery restenosis: analysis and recommendations. On behalf of the Subcommittee on Animal, Cellular and Molecular Models of Thrombosis and Haemostasis of the Scientific and Standardization Committee of the International Society on Thrombosis and Haemostasis. Thromb Haemost. 81 (5), 835-843 (1999).
  3. Day, S. M., Reeve, J. L., Myers, D. D., Fay, W. P. Murine thrombosis models. Thromb Haemost. 92 (3), 486-494 (2004).
  4. Sachs, U. J. H., Nieswandt, B. In vivo thrombus formation in murine models. Circ Res. 100 (7), 979-991 (2007).
  5. Furie, B., Furie, B. C. Mechanisms of thrombus formation. N Engl J Med. 359 (9), 938-949 (2008).
  6. Pierangeli, S. S., Liu, X. W., Barker, J. H., Anderson, G., Harris, E. N. Induction of thrombosis in a mouse model by IgG, IgM and IgA immunoglobulins from patients with the antiphospholipid syndrome. Thromb Haemost. 74 (5), 1361-1367 (1995).
  7. Kikuchi, S., Umemura, K., Kondo, K., Saniabadi, A. R., Nakashima, M. Photochemically induced endothelial injury in the mouse as a screening model for inhibitors of vascular intimal thickening. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 18 (7), 1069-1078 (1998).
  8. Rosen, E. D., Raymond, S., et al. Laser-induced noninvasive vascular injury models in mice generate platelet- and coagulation-dependent thrombi. Am J Pathol. 158, 1613-1622 (2001).
  9. Kurz, K. D., Main, B. W., Sandusky, G. E. Rat model of arterial thrombosis induced by ferric chloride. Thromb Res. 60 (4), 269-280 (1990).
  10. Eckly, A., Hechler, B., et al. Mechanisms underlying FeCl3-induced arterial thrombosis. J Thromb Haemost. 9 (4), 779-789 (2011).
  11. Darbousset, R., et al. Involvement of neutrophils in thrombus formation in living mice. Pathol Biol (Paris). 62 (1), 1-9 (2014).
  12. Denis, C., Methia, N., et al. A mouse model of severe von Willebrand disease: defects in hemostasis and thrombosis). Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (16), 9524-9529 (1998).
  13. Wang, X., Hagemeyer, C. E., et al. Novel single-chain antibody-targeted microbubbles for molecular ultrasound imaging of thrombosis: validation of a unique noninvasive method for rapid and sensitive detection of thrombi and monitoring of success or failure of thrombolysis in mice. Circulation. 125 (25), 3117-3126 (2012).
  14. Wang, X., Smith, P. L., Hsu, M. -. Y., Ogletree, M. L., Schumacher, W. A. Murine model of ferric chloride-induced vena cava thrombosis: evidence for effect of potato carboxypeptidase inhibitor. J Thromb Haemost. 4 (2), 403-410 (2006).
  15. Karatas, H., Erdener, S. E., et al. Thrombotic distal middle cerebral artery occlusion produced by topical FeCl(3) application: a novel model suitable for intravital microscopy and thrombolysis studies. J Cereb Blood Flow Metab. 31 (6), 1452-1460 (2011).
  16. Jirousková, M., Chereshnev, I., Väänänen, H., Degen, J. L., Coller, B. S. Antibody blockade or mutation of the fibrinogen gamma-chain C-terminus is more effective in inhibiting murine arterial thrombus formation than complete absence of fibrinogen. Blood. 103 (6), 1995-2002 (2004).
  17. Dubois, C., Panicot-Dubois, L., Merrill-Skoloff, G., Furie, B., Furie, B. C. Glycoprotein VI-dependent and -independent pathways of thrombus formation in vivo. Blood. 107 (10), 3902-3906 (2006).
  18. Navarrete, A. -. M., Casari, C., et al. A murine model to characterize the antithrombotic effect of molecules targeting human von Willebrand factor. Blood. 120 (13), 2723-2732 (2012).
  19. Rayes, J., Hollestelle, M. J., et al. Mutation and ADAMTS13-dependent modulation of disease severity in a mouse model for von Willebrand disease type 2B. Blood. 115 (23), 4870-4877 (2010).
  20. Lamrani, L., Lacout, C., et al. Hemostatic disorders in a JAK2V617F-driven mouse model of myeloproliferative neoplasm. Blood. 124 (7), 1136-1145 (2014).
  21. Zhang, Y., Ye, J., et al. Increased platelet activation and thrombosis in transgenic mice expressing constitutively active P2Y12. J Thromb Haemost. 10 (10), 2149-2157 (2012).
  22. Schäfer, K., Konstantinides, S., et al. Different mechanisms of increased luminal stenosis after arterial injury in mice deficient for urokinase- or tissue-type plasminogen activator. Circulation. 106 (14), 1847-1852 (2002).
  23. Wang, X., Palasubramaniam, J., et al. Towards effective and safe thrombolysis and thromboprophylaxis: preclinical testing of a novel antibody-targeted recombinant plasminogen activator directed against activated platelets. Circ Res. 114 (7), 1083-1093 (2014).
  24. Decrem, Y., et al. Ir-CPI, a coagulation contact phase inhibitor from the tick Ixodes ricinus, inhibits thrombus formation without impairing hemostasis. J Exp Med. 206 (11), 2381-2395 (2009).
  25. Ma, D., et al. Desmolaris, a novel factor XIa anticoagulant from the salivary gland of the vampire bat (Desmodus rotundus) inhibits inflammation and thrombosis in vivo. Blood. 122 (25), 4094-4106 (2013).
  26. Lei, X., et al. Anfibatide, a novel GPIb complex antagonist, inhibits platelet adhesion and thrombus formation in vitro and in vivo in murine models of thrombosis. Thromb Haemost. 111 (2), 279-289 (2014).
  27. Waisberg, M., et al. Plasmodium falciparum infection induces expression of a mosquito salivary protein (Agaphelin) that targets neutrophil function and inhibits thrombosis without impairing hemostasis. PLoS Pathog. 10 (9), e1004338 (2014).
  28. Owens, A. P., Lu, Y., Whinna, H. C., Gachet, C., Fay, W. P., Mackman, N. Towards a standardization of the murine ferric chloride-induced carotid arterial thrombosis model. J Thromb Haemost. 9 (9), 1862-1863 (2011).
  29. Wang, X., Xu, L. An optimized murine model of ferric chloride-induced arterial thrombosis for thrombosis research. Thromb Res. 115 (1-2), 95-100 (2005).
  30. Tseng, M. T., Dozier, A., Haribabu, B., Graham, U. M. Transendothelial migration of ferric ion in FeCl3 injured murine common carotid artery. Thromb Res. 118 (2), 275-280 (2006).
  31. Bonnard, T., et al. Leukocyte mimetic polysaccharide microparticles tracked in vivo on activated endothelium and in abdominal aortic aneurysm. Acta Biomater. 10 (8), 3535-3545 (2014).
  32. Boulaftali, Y., Lamrani, L., et al. The mouse dorsal skinfold chamber as a model for the study of thrombolysis by intravital microscopy. Thromb Haemost. 107 (5), 962-971 (2012).
  33. Konstantinides, S., Schäfer, K., Thinnes, T., Loskutoff, D. J. Plasminogen activator inhibitor-1 and its cofactor vitronectin stabilize arterial thrombi after vascular injury in mice. Circulation. 103 (4), 576-583 (2001).
  34. Li, W., McIntyre, T. M., Silverstein, R. L. Ferric chloride-induced murine carotid arterial injury: A model of redox pathology. Redox Biol. 1 (1), 50-55 (2013).

Play Video

Cite This Article
Bonnard, T., Hagemeyer, C. E. Ferric Chloride-induced Thrombosis Mouse Model on Carotid Artery and Mesentery Vessel. J. Vis. Exp. (100), e52838, doi:10.3791/52838 (2015).

View Video