Summary

Временная Отслеживание клеточного цикла прогрессии Использование проточной цитометрии без необходимости синхронизации

Published: August 16, 2015
doi:

Summary

Этот протокол описывает использование бромдезоксиуридин (BrdU) поглощения, чтобы разрешить временную отслеживание клеток, которые были в S фазе на определенный момент времени. Добавление красителей ДНК и маркировки антител способствует детальный анализ судьбы S фазовых клеток в более поздние времена.

Abstract

This protocol describes a method to permit the tracking of cells through the cell cycle without requiring the cells to be synchronized. Achieving cell synchronization can be difficult for many cell systems. Standard practice is to block cell cycle progression at a specific stage and then release the accumulated cells producing a wave of cells progressing through the cycle in unison. However, some cell types find this block toxic resulting in abnormal cell cycling, or even mass death. Bromodeoxyuridine (BrdU) uptake can be used to track the cell cycle stage of individual cells. Cells incorporate this synthetic thymidine analog, while synthesizing new DNA during S phase. By providing BrdU for a brief period it is possible to mark a pool of cells that were in S phase while the BrdU was present. These cells can then be tracked through the remainder of the cell cycle and into the next round of replication, permitting the duration of the cell cycle phases to be determined without the need to induce a potentially toxic cell cycle block. It is also possible to determine and correlate the expression of both internal and external proteins during subsequent stages of the cell cycle. These can be used to further refine the assignment of cell cycle stage or assess effects on other cellular functions such as checkpoint activation or cell death.

Introduction

Оценка возможностей клеточного цикла и изменений, которые происходят в клетках в течение клеточного цикла является фундаментальным для понимания многих аспектов биологии, в частности биологии рака. Многие агенты в развитии для лечения злокачественных опухолей оказывают глубокое воздействие на прогрессирование клеточного цикла или индуцируют гибель клеток с помощью клеточного цикла зависимых механизмов-. С целью изучения динамики клеточного цикла или клеток в определенной фазе клеточного цикла, обычно для синхронизации клеток. Однако методы синхронизации может иметь пагубные последствия для клеток изучаются, потенциально сомнительных полученные результаты. 1 Недавно использование флуоресцентно меченых белков, которые присутствуют только в конкретных фаз цикла клетки имеют разрешенное анализ клеточного цикла в одиночных камерах в течение долгого времени 2, однако эти клетки должны быть изучены необходимость быть генетически манипулировать, чтобы выразить эти меченных белков, ограничивает их использование в системах, где это может быть прочитанаIly достигнута.

Клеточный цикл состоит из двух активных фаз: синтез-(S) фазы, где ДНК репликации и митоза (М), где деление клеток имеет место. Эти фазы разделяют три фазы пробел, G 0, G 1 и G 2. G 0 или неподвижность, это фаза отдыха, где клетка оставил цикл, G 1, когда клетки увеличиваются в размере до репликации ДНК и G 2, где рост клеток продолжается между завершением репликации ДНК, но до деления клеток. Прогрессирование через клеточный цикл контролируется числом пропускных пунктов. G 1 пункт пропуска активируется, когда условия окружающей среды не поддерживают синтеза ДНК и предотвращает попадание в S фазе. Фаза контрольно-пропускной пункт или задержка внутри S могут быть вызваны повреждением ДНК, что может привести к тупик вилки репликации. Во G 2 верность реплицированного ДНК подтвердил, и если обнаруживается дефект, то G 2 </суб> контрольно-пропускной пункт активируется репарации ДНК позволяет до клеточного деления. Окончательный контрольной точки во время митоза, что гарантирует хроматиды были выровнены в митотической пластины так, что деление клеток можно успешно завершена. 3 Активация этих пропускных пунктах обычно используется для синхронизации клеточных популяций. Контрольные клеточного цикла могут быть активированы с помощью целого ряда факторов, но в биологии рака наиболее распространенным является обнаружение повреждения ДНК. Реакция повреждение ДНК инициируется PI3-киназы-подобных киназ атаксии телеангиэктазии и Rad3 связанной (ATR) и атаксия-телеангиэктазия мутантный (ATM), что активации эффекторных киназ вниз по течению Chk1 и Chk2, соответственно. 3 спектр событий активирует Chk1 в том числе в тупик вилки репликации, сшивки ДНК, и ультрафиолетовое излучение, а ущерб Chk2 в первую очередь активируется двунитевых разрывов.

Обычный метод для изучения влияния изменившихся условий на длине I клеточного циклас синхронизировать клетки в определенной фазе клеточного цикла. 1 Это может быть достигнуто с помощью нескольких способов. Клетки могут быть физически разделены в зависимости от размера, плотности, боковое рассеивание (зернистости), и маркеров экспрессии клеточной поверхности. С практической точки, клетки могут быть синхронизированы с помощью химических средств. Несколько агенты, такие как гидроксимочевина тимидина, и цитозинарабинозидом может быть использовано, чтобы ингибировать синтез ДНК в S фазе клеточного цикла, что приводит к накоплению клеток в S фазе, которые продолжают велосипеде после агенты не будут удалены. Клетки обрабатывали нокодазолом, что предотвращает образование митотического веретена, остановки с G 2 – или М-фазы содержанием ДНК. Ликвидация сыворотки из результатов культуральной среды в накоплении клеток в G 0 фазе. Повторное добавление питательных веществ в культуре сыворотки возобновит нормальную велосипеде клеток. Тем не менее, все эти методы синхронизации мешать нормальной езды на велосипеде и рост клеток и может Ресулт в значительной гибели клеток.

Синхронизация острого лимфобластного лейкоза клеток является особенно сложным, и эти клетки не поддаются генетической манипуляции. Описанный здесь метод позволяет оценить динамику клеточного цикла и исследование клеток в отдельных фаз клеточного цикла без традиционных синхронизации или генетической модификации. Этот метод также может быть полезен для других типов клеток, где генетическая модификация и традиционные процедуры синхронизации не легко достигается. Метод основан на давние использования бромдезоксиуридина (BrdU) регистрации, которая имеет очень небольшое влияние на краткосрочный рост и пролиферацию клеток. 4 Установленные протоколы BrdU воспользоваться включения BrdU во вновь синтезированной ДНК во время S фазы , Это постоянно отмечает клетки, побывав в S фазе во время экспозиции BrdU. Это население может быть идентифицирован в более поздние моменты времени путем окрашивания BrdU для incorporвания и тем самым выступать в качестве синхронизированной населения, которые могут применяться, и в течение долгого времени оценочной позволяет изучение эффектов препарата по транзиту клеточного цикла. BrdU нужно подвергаться до окрашивания антител, как правило, достигается следующее ДНКазы или кислотной обработки. 6,7 Использование проточной цитометрии для обнаружения BrdU включены позволяет включение дополнительных маркеров. Наиболее важным является использование красителей для измерения содержания ДНК, позволяя оценку фазы клеточного цикла распределения клеток, которые были в S фазе в начале исследования. 8 Кроме дополнительные поверхности или внутриклеточные антигены также могут быть изучены. 9 Они может относиться к событиям клеточного цикла, таких как Ki67 или, казалось бы, не связанных между собой функций клеток, таких как апоптоз маркеров, как расщепляется каспазы-3. Потенциальные применения ограничены фантазией исследователя.

Protocol

Протокол, описанный здесь, использует острый лимфобластный лейкоз линию клеток NALM6 но может быть применено к другим типам клеток. 1. Решения и реагенты Полный RPMI Добавить 56 мл фетальной телячьей сыворотки (FCS) и 5,5 мл 200 мМ L-глутамина в 500 мл бутылку среде RPMI-1640. …

Representative Results

Эта методика может быть использована для получения различной информации. Через несколько приложений изложены здесь. Оценка длительности клеточного цикла Чтобы определить время, необходимое для клеток транзит через клеточного цикла, клетки собирают в р…

Discussion

Способность к анализу клеточного цикла имеет важное значение для понимания биологии рака и механизма действия обоих препаратов и генов, которые влияют на пролиферацию и рост клеток. В то время как есть множество анализов, которые, как сообщается измерения пролиферации клеток, большин?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The work was funded by the Leukemia and Lymphoma Society of the USA (6105-08), a Cancer Council NSW grant (13-02), an NHMRC Senior Research Fellowship (LJB) (1042305) and project grant (1041614).

Materials

APC BrdU Flow Kit BD Biosciences 552598 Contains BrdU antibody, 7-AAD and BD Cytofix/Cytoperm
Buffer (referred to as Fixation Buffer)
BD Cytoperm Permeabilization Buffer Plus BD Biosciences 561651 Referred to as Permeabilization buffer
BD Perm/Wash Buffer BD Biosciences 554723 Referred to as Wash buffer
DNase Sigma D-4513
BD Falcon 12 x 75-mm FACS tubes BD Biosciences 352008
BD Pharmingen Stain Buffer BD Biosciences 554656
BD LSR FORTESSA flow cytometer BD Biosciences FORTESSA
Pipetman Gilson P2, P20, P100, P1000
RPMI 1640 w/o L-Gln 500 ml Lonza 12-167F
DPBS Lonza 17-512F
Fetal Bovine Serum FisherBiotec FBS-7100113
L-Glutamine Sigma G7513-100ML
5-Bromo-2′-deoxyuridine Sigma B5002-1G
Falcon TC 150cm2 vented Flasks BD Biosciences 355001
Pipettes 25mL Greiner 760180
Aersol Pipettes 200µL Interpath 24700
Aersol Pipettes 1mL Interpath 24800
Centrifuge Spintron GT-175R
CO2 incubator Binder C 150
AF488 anti-Histone H3 Phospho (Ser10) Antibody Cell Signalling 9708S
Phospho-Chk2 (Thr68) (C13C1) Rabbit mAb Cell Signalling 2197S
Phospho-Chk1 (Ser345) (133D3) Rabbit mAb Cell Signalling 2348S
NALM6  DSMZ ACC-128

References

  1. Banfalvi, G., Banfalvi, G. . Methods Mol Biol. 761, 1-23 (2011).
  2. Sakaue-Sawano, A., et al. Visualizing spatiotemporal dynamics of multicellular cell-cycle progression. Cell. 132, 487-498 (2008).
  3. Harper, J. W., Elledge, S. J. The DNA damage response: ten years after. Molecular Cell. 28, 739-745 (2007).
  4. Latt, S. A., George, Y. S., Gray, J. W. Flow cytometric analysis of bromodeoxyuridine-substituted cells stained with 33258 Hoechst. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 25, 927-934 (1977).
  5. Gratzner, H. G. Monoclonal antibody to 5-bromo- and 5-iododeoxyuridine: A new reagent for detection of DNA replication. Science. 218, 474-475 (1982).
  6. Carayon, P., Bord, A. Identification of DNA-replicating lymphocyte subsets using a new method to label the bromo-deoxyuridine incorporated into the DNA. Journal of Immunological Methods. 147, 225-230 (1992).
  7. Gonchoroff, N. J., et al. S-phase detection with an antibody to bromodeoxyuridine. Role of DNase pretreatment. Journal of Immunological Methods. 93, 97-101 (1986).
  8. Rabinovitch, P. S., Torres, R. M., Engel, D. Simultaneous cell cycle analysis and two-color surface immunofluorescence using 7-amino-actinomycin D and single laser excitation: applications to study of cell activation and the cell cycle of murine Ly-1 B cells. Journal of Immunology. 136, 2769-2775 (1986).
  9. Saunders, P. O., et al. RAD001 (everolimus) induces dose-dependent changes to cell cycle regulation and modifies the cell cycle response to vincristine. Oncogene. 32, 4789-4797 (2013).
  10. Hendzel, M. J., et al. Mitosis-specific phosphorylation of histone H3 initiates primarily within pericentromeric heterochromatin during G2 and spreads in an ordered fashion coincident with mitotic chromosome condensation. Chromosoma. 106, 348-360 (1997).
  11. Draetta, G., Beach, D. Activation of cdc2 protein kinase during mitosis in human cells: cell cycle-dependent phosphorylation and subunit rearrangement. Cell. 54, 17-26 (1988).
  12. Saunders, P. O., et al. RAD001 (everolimus) induces dose-dependent changes to cell cycle regulation and modifies the cell cycle response to vincristine. Oncogene. , (2012).
  13. Knudsen, R. C., Ahmed, A. A., Sell, K. W. An in vitro microassay for lymphotoxin using microculture plates and the multiple automated sample harvester. Journal of Immunological Methods. 5, 55-63 (1974).
  14. Beck, H. P. Proliferation kinetics of perturbed cell populations determined by the bromodeoxyuridine-33258 technique: radiotoxic effects of incorporated [3H]thymidine. Cytometry. 2, 170-174 (1981).
  15. Miller, M. J., Wei, S. H., Parker, I., Cahalan, M. D. Two-photon imaging of lymphocyte motility and antigen response in intact lymph node. Science. 296, 1869-1873 (2002).
  16. Collins, J. M., Berry, D. E., Bagwell, C. B. Different rates of DNA synthesis during the S phase of log phase HeLa S3, WI-38, and 2RA cells. Journal of Biological Chemistry. 255, 3585-3590 (1980).
  17. Schwarting, R., Gerdes, J., Niehus, J., Jaeschke, L., Stein, H. Determination of the growth fraction in cell suspensions by flow cytometry using the monoclonal antibody Ki-67. Journal of Immunological Methods. 90, 65-70 (1986).
  18. Danova, M., et al. Cell cycle-related proteins: a flow cytofluorometric study in human tumors. Biology of the Cell. 64, 23-28 (1988).
  19. Juan, G., et al. Histone H3 phosphorylation and expression of cyclins A and B1 measured in individual cells during their progression through G2 and mitosis. Cytometry. 32, 71-77 (1998).
  20. Langan, T. J., Chou, R. C. Synchronization of mammalian cell cultures by serum deprivation. Methods in Molecular Biology. 761, 75-83 (2011).
  21. Kues, W. A., et al. Cell cycle synchronization of porcine fetal fibroblasts: effects of serum deprivation and reversible cell cycle inhibitors. Biology of Reproduction. 62, 412-419 (2000).
  22. Urbani, L., Sherwood, S. W., Schimke, R. T. Dissociation of nuclear and cytoplasmic cell cycle progression by drugs employed in cell synchronization. Experimental Cell Research. 219, 159-168 (1995).
check_url/kr/52840?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Welschinger, R., Bendall, L. J. Temporal Tracking of Cell Cycle Progression Using Flow Cytometry without the Need for Synchronization. J. Vis. Exp. (102), e52840, doi:10.3791/52840 (2015).

View Video