Summary

La recolección selectiva de leucocitos marginando-hepáticas

Published: July 21, 2016
doi:

Summary

Marginating-hepatic leukocytes exhibit unique characteristics and distinct immunological functions compared to other leukocyte populations. Here we describe a method for selective harvesting of this specific hepatic cell population, through forced perfusion of the liver of rats or mice. Marginating-hepatic leukocytes seem critical in determining susceptibility to hepatic-related diseases and metastases.

Abstract

Marginating-hepatic (MH) leukocytes (leukocytes adhering to the sinusoids of the liver), were shown to exhibit unique composition and characteristics compared to leukocytes of other immune compartments. Specifically, evidence suggests a distinct pro- and anti-inflammatory profile of the MH-leukocyte population and higher cytotoxicity of liver-specific NK cells (namely, pit cells) compared to circulating or splenic immunocytes in both mice and rats. The method presented herein enables selective harvesting of MH leukocytes by forced perfusion of the liver in mice and rats. In contrast to other methods used to extract liver-leukocytes, including tissue grinding and biological degradation, this method exclusively yields leukocytes from the liver sinusoids, uncontaminated by cells from other liver compartments. In addition, the perfusion technique better preserves the integrity and the physiological milieu of MH leukocytes, sparing known physiological responses to tissue processing. As many circulating malignant cells and infected cells are detained while passing through the liver sinusoids, physically interacting with endothelial cells and resident leukocytes, the unique MH leukocyte population is strategically located to interact, identify, and react towards aberrant circulating cells. Thus, selective harvesting of MH-leukocytes and their study under various conditions may advance our understanding of the biological and clinical significance of MH leukocytes, specifically with respect to circulating aberrant cells and liver-related diseases and cancer metastases.

Introduction

Los sinusoides hepáticos contienen numerosos subtipos de leucocitos de diversas actividades inmunes críticos para el organismo. Por ejemplo, las células marginando hepática (MH) asesinas naturales (NK), también conocidas como células de pozo, se caracterizan morfológicamente como linfocitos granulares grandes (LGLs) y funcionalmente como leucocitos con capacidad citotóxica espontánea, lo que permite hepática resistencia contra el establecimiento de sangre metástasis tumorales Borne. El objetivo del método presentado en este documento es para permitir la recolección selectiva de leucocitos MH, con el fin de estudiar esta población celular importante y única (y el compartimento inmune), y para dilucidar el impacto de diversas manipulaciones (por ejemplo, la activación inmune) en estas células específicas.

A pesar del fracaso de la inmunidad para eliminar un tumor primario en desarrollo, la evidencia en pacientes con cáncer y en modelos animales indican que el sistema inmune puede controlar las células tumorales, las micrometástasis, y la enfermedad residual throu circulantela inmunidad mediada por células GH (CMI). Sin embargo, existe una inconsistencia aparente entre estos en capacidades in vivo y en estudios in vitro en seres humanos y en animales, que demuestran que la mayoría de las células tumorales autólogas son resistentes a la citotoxicidad mediante la circulación o leucocitos esplénicos 1,2. Esta inconsistencia se puede atribuir, al menos en parte, a la existencia in vivo de una subpoblación de leucocitos distinto, a saber, los (sinusoides) leucocitos marginando-hepática y su subpoblación de células NK activadas, es decir, células de pozo 3. De hecho, datos no publicados de nuestro laboratorio indican que en las ratas F344 células tumorales singénicas (MADB106), que se encontró resistente a circulantes y esplénicas leucocitos, fueron lisadas por células NK MH-4. Así, las células tumorales que son supuestamente "NK-resistente" a los leucocitos circulantes pueden ser controlados por las células MH-NK. Digno de mención, en ratones la actividad mejorada de MH-NK es evidente sólo después in vivo inmuneestimulación (por ejemplo, mediante el uso de Poly I: C o CpG-C) 5.

Las células NK específicos del hígado (MH-NK) están situados dentro de la luz sinusoidales, la adhesión a las células endoteliales y células de Kupffer. Células MH-NK se caracterizan exclusivamente por gránulos densos esféricas y vesículas de varilla de núcleo 6, que contienen fosfatasa ácida como enzimas lisosomales y perforina y granzimas como sustancias bioactivas 7,8. En comparación con las células NK circulantes, las células MH-NK exhiben un mayor número y tamaño de los gránulos y vesículas 9-11. Bajo condiciones inflamatorias, se demostró que las células MH-NK a exhibir una mayor expresión de LFA-1 12, en comparación con las células NK circulantes. Esta expresión potenciada puede constituir un mecanismo por el cual las células MH-NK son más citotóxicos contra ciertas células tumorales que las células NK 13,14 circulante. nterestingly, después de la incubación in vitro con interleuquina (IL) -2, las células MH-NK se agrandan, ysu número y tamaño de los gránulos aumentan, todos los cuales son consistentes con una células pro fi l de killer activadas por linfoquinas (LAK) 15.

leucocitos MH activos no se pueden obtener exclusivamente a través de los métodos de cosecha de leucocitos hígado estándar, que se basan en la molienda y la degradación biológica de los tejidos. Nuestro enfoque de perfusión descrito en este documento tiene dos ventajas importantes en comparación con los enfoques estándar. En primer lugar, el enfoque de perfusión cosecha selectivamente leucocitos MH, la prevención de la contaminación por otros leucocitos de otros compartimentos del hígado. En segundo lugar, la técnica de perfusión mejor preserva la integridad, la actividad, y el medio fisiológico de los leucocitos MH, a diferencia del procesamiento de tejido se aproxima que dañan las células o alterar su morfología, y debido a daños en los tejidos, inducir la liberación de diversos factores que marcadamente modular inmune actividad.

El hígado es el principal órgano diana para la metástasis del cáncer dend para diversas infecciones 16. A medida que las células MH poseen características singulares que es importante estudiar esta población específica en diversas condiciones con respecto a estas patologías. Por ejemplo, es digno de destacar que la activación inmune sistémica por varios BRM (por ejemplo, poli I: C o C-CpG) se han demostrado para activar MH-leucocitos más de 5 leucocitos circulantes.

Protocol

Declaración de Ética: Los procedimientos que implican sujetos animales han sido aprobados por el Comité de Cuidado y Uso de Animales Institucional (IACUC) de la Universidad de Tel-Aviv. Protocolo 1. Las ratas Preparativos Preparar la solución heparinizada PBS (30 unidades / ml) para ser usado a temperatura ambiente (RT) mediante la adición de 30 unidades de heparina libre de conservantes por ml de solución salina tamponada con fosfato 1x solución (PBS). Calcula 35 …

Representative Results

En las ratas F344 se comparó la citotoxicidad de células NK-MH (recogido de los sinusoides hepáticos por perfusión del hígado forzado) a la citotoxicidad de la totalidad de la población de células de hígado después de trituración mecánica del tejido del hígado, y a la citotoxicidad de los leucocitos circulantes. Todas las preparaciones celulares se lavaron al menos 3 veces, como rutina en ensayos inmunológicos, y como líneas de células diana que utilizan las líneas de la …

Discussion

El método de perfusión hepática que aquí se presenta permite una recolección selectiva y el estudio de la población única de marginando leucocitos hepáticas. Células hepáticas NK, también llamadas células de pozo 3, constituyen una población de células NK distintivo que residen en los sinusoides hepáticos. Se encuentran en ratas, ratones y 17 en los seres humanos 18,19. En comparación con las células NK periféricas aisladas, células de pozo demostrado mayor citotoxicid…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors and this work were supported by NIH/NCI grant # R01CA172138 (to SBE).

Materials

Autoclud Peristaltic pump
Butterfly needle OMG 26G
Butterfly needle OMG 21G*3/4"
Syringe Pic solution 1 ml
Syringe Pic solution 2.5 ml
Syringe Pic solution 5 ml
Syringe Pic solution 10 ml
Syringe Pic solution 25 ml
Blunted-edged forceps
Scissors
hemostat
Tissue forceps
22W Fluorescent Daylight Magnifier Lamp

References

  1. Melamed, R., et al. The marginating-pulmonary immune compartment in rats: characteristics of continuous inflammation and activated NK cells. J Immunother. 33, 16-29 (2010).
  2. Benish, M., Melamed, R., Rosenne, E., Neeman, E., Sorski, L., Levi, B., Shaashua, L., Matzner, M., Ben-Eliyahu, S. The marginating-pulmonary immune compartment in mice exhibits increased NK cytotoxicity and unique cellular characteristics. Immunologic Research. 58, 28-39 (2014).
  3. Wisse, E., van’t Noordende, J. M., van der Meulen, J., Daems, W. T. The pit cell: description of a new type of cell occurring in rat liver sinusoids and peripheral blood. Cell Tissue Res. 173, 423-435 (1976).
  4. Vermijlen, D., et al. Hepatic natural killer cells exclusively kill splenic/blood natural killer-resistant tumor cells by the perforin/granzyme pathway. J Leukoc Biol. 72, 668-676 (2002).
  5. Gao, B., Radaeva, S., Park, O. Liver natural killer and natural killer T cells: immunobiology and emerging roles in liver diseases. J Leukoc Biol. 86, 513-528 (2009).
  6. Kaneda, K. Liver-associated large granular lymphocytes: morphological and functional aspects. Arch Histol Cytol. 52, 447-459 (1989).
  7. Podack, E. R., Hengartner, H., Lichtenheld, M. G. A central role of perforin in cytolysis?. Annu Rev Immunol. 9, 129-157 (1991).
  8. Kamada, M. M., et al. Identification of carboxypeptidase and tryptic esterase activities that are complexed to proteoglycans in the secretory granules of human cloned natural killer cells. J Immunol. 142, 609-615 (1989).
  9. Wisse, E., et al. On the function of pit cells, the liver-specific natural killer cells. Semin Liver Dis. 17, 265-286 (1997).
  10. Bouwens, L., Remels, L., Baekeland, M., Van Bossuyt, H., Wisse, E. Large granular lymphocytes or "pit cells" from rat liver: isolation, ultrastructural characterization and natural killer activity. Eur J Immunol. 17, 37-42 (1987).
  11. Vanderkerken, K., et al. Origin and differentiation of hepatic natural killer cells (pit cells). Hepatology. 18, 919-925 (1993).
  12. Luo, D., et al. The role of adhesion molecules in the recruitment of hepatic natural killer cells (pit cells) in rat liver. Hepatology. 24, 1475-1480 (1996).
  13. Shresta, S., MacIvor, D. M., Heusel, J. W., Russell, J. H., Ley, T. J. Natural killer and lymphokine-activated killer cells require granzyme B for the rapid induction of apoptosis in susceptible target cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 92, 5679-5683 (1995).
  14. Luo, D., et al. Involvement of LFA-1 in hepatic NK cell (pit cell)-mediated cytolysis and apoptosis of colon carcinoma cells. J Hepatol. 31, 110-116 (1999).
  15. Wiltrout, R. H., et al. Augmentation of mouse liver-associated natural killer activity by biologic response modifiers occurs largely via rapid recruitment of large granular lymphocytes from the bone marrow. J Immunol. 143, 372-378 (1989).
  16. Schluter, K., et al. Organ-specific metastatic tumor cell adhesion and extravasation of colon carcinoma cells with different metastatic potential. Am J Pathol. 169, 1064-1073 (2006).
  17. Wiltrout, R. H., et al. Augmentation of organ-associated natural killer activity by biological response modifiers. Isolation and characterization of large granular lymphocytes from the liver. J Exp Med. 160, 1431-1449 (1984).
  18. Winnock, M., et al. Functional characterization of liver-associated lymphocytes in patients with liver metastasis. Gastroenterology. 105, 1152-1158 (1993).
  19. Hata, K., et al. Isolation, phenotyping, and functional analysis of lymphocytes from human liver. Clin Immunol Immunopathol. 56, 401-419 (1990).
  20. Vanderkerken, K., Bouwens, L., Wisse, E. Characterization of a phenotypically and functionally distinct subset of large granular lymphocytes (pit cells) in rat liver sinusoids. Hepatology. 12, 70-75 (1990).
  21. Sorski, L., Melamed, R., Lavon, H., Matzner, P., Rosenne, E., Ben-Eliyahu, S. . , (2015).
check_url/kr/53918?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sorski, L., Shaashua, L., Melamed, R., Matzner, P., Ben-Eliyahu, S. Selective Harvesting of Marginating-hepatic Leukocytes. J. Vis. Exp. (113), e53918, doi:10.3791/53918 (2016).

View Video