Summary

הערכת Myofilament Ca<sup> 2 +</sup> עירור-התכווצות לב ביסוד רגישה זיווגים

Published: August 01, 2016
doi:

Summary

This paper describes a protocol that assesses the changes of myofilament Ca2+ sensitivity during contraction in isolated cardiac myocytes from rat heart. Together with cardiac electrophysiology, systolic/diastolic cytosol Ca2+ levels and contraction/relaxation, this measurement is imperative in underpinning the mechanisms mediating cardiac excitation-contraction coupling in healthy and diseased hearts.

Abstract

אי ספיקת לב והפרעות קצב הלב הם הגורמים המובילים לתמותה ותחלואה בעולם. עם זאת, המנגנון של מחלה ו תקלת שריר לב בלב החולה נשאר להתברר במלואה. ראיות משכנעות אחרונות מוכיחות כי שינויים ברגישות 2+ myofilament Ca להשפיע Ca התאי 2+ פעילויות הומאוסטזיס יון ערוץ myocytes הלב, המנגנונים החיוניים אחראים פוטנציאל הפעולה של הלב והתכווצות בלבבות בריאים וחולים. ואכן, פעילויות של תעלות יונים מובילי שבבסיס פוטנציאל פעולת לב (למשל, Na +, Ca 2 + ו K + ערוצים מחליפים Na + -Ca 2+) ו- CA תאי 2+ טיפול חלבונים (למשל., קולטנים ryanodine ו- CA 2+ -ATPase ב הרטיקולום sarcoplasmic (SERCA2a) או phospholamban ו זירחון שלה) נמדדים כמקובל כדי evaluאכול את המנגנונים הבסיסיים של התכווצות עירור לב (EC) צימוד. שני פעילויות חשמל בקרום והשינויים 2+ Ca התאיים הן אותות ההדק של צימוד EC, ואילו myofilament היא היחידה התפקודית של התכווצות והרפיה, ו myofilament Ca רגיש 2+ הכרחית ביישום ביצועי myofibril. אף על פי כן, כמה מחקרים לשלב myofilament רגישות Ca 2 + לתוך האנליזה הפונקציונלית של שריר הלב, אלא אם כן הוא המוקד של המחקר. כאן אנו מתארים פרוטוקול המודד קיצור sarcomere / מחדש התארכות ורמת תאיים Ca 2 + באמצעות פורעה -2 AM (זיהוי ratiometric) ולהעריך את השינויים של רגישות 2+ myofilament Ca ב myocytes לב מלבבות חולדה. המטרה העיקרית היא להדגיש myofilament שרגישות 2+ Ca צריכה להילקח בחשבון צימוד EC לניתוח מכניסטית. חקירה מקיפה של iבערוצים, מובילי יון, טיפול Ca 2 + תאיים, ורגישות 2+ myofilament Ca העומדים בבסיס התכווצות myocyte בלבבות בריאים וחולים יספק מידע רב ערך לתכנון אסטרטגיות יעילות יותר של translational ואת הערך טיפולי.

Introduction

צימוד עירור-התכווצות הלב (EC) הוא ערכת היסוד לניתוח תכונות מכניות של שריר הלב, כלומר, הפונקציה התכווצות של הלב 1,2. צימוד EC הוא שיזם שלילת קוטביות הממברנה משנית לפעילות של תעלות יונים sarcolemmal (למשל, ערוץ Na + מתח מגודרת, אשר ניתן למדוד באמצעות טכניקות תיקון- clamp). ההפעלה הבאה של זרם מתח מגודר L- סוג Ca 2 + ערוצים (LTCCs) ו Ca 2 + דרך LTCCs לעורר את חלק הארי של Ca 2 + שחרור דרך קולטני ryanodine (RyRs), גברת ריכוז cytosolic Ca 2 + מ nanomolar (ננומטר ) כדי מיקרו ברמה (מיקרומטר). כגון עלייה Ca cytosolic 2+ מקדמת Ca 2 + מחייבת טרופונין C (TNC) ב חוטים דקים מעוררת שינויים מרחביים של מתחם הנימה כדי להקל על האינטראקציה תקטין שרירן ומשיגה myocardi אל התכווצות 3. מנגד, cytosolic Ca 2 + מחדש uptaken בחזרה הרטיקולום sarcoplasmic (SR) דרך Ca 2 + -ATPase ב SR (SERCA2a) או הנמתח מן myocyte באמצעות מחליפי Na + / Ca 2 + ואת plasmalemmal Ca 2 + ATPase 1,2. כתוצאה מכך, הירידה Ca cytosolic 2+ instigates שינויים מרחביים של חוטים דקים חזרה למצב המקורי, וכתוצאה מכך ניתוק של אקטין שרירן myocyte הרפיה 1-3. לפי שיטה זו, את הפעילות של SERCA2a נחשבת בדרך כלל כדי לקבוע את המהירות של הרפיה שריר הלב כי זה חשבונות עבור 70 – 90% של הסרת cytosolic Ca 2 + ברוב תאי לב יונקים 1. ככזה, טיפול Ca 2+ נורמלי ידי LTCC, RyR ו SERCA2a, וכו 'כבר נחשב המנגנונים העיקריים עבור התכווצות לקויה ורוגע בלב החולה 1-4.

<p class="jove_content"> במציאות, חינם cytosolic Ca 2 + שמתפקד השליח בחשבונות צימוד EC כ 1% בסך הכל Ca תאיים 2+ ואת רוב Ca 2 + מאוגד מאגרים תאיים Ca 2 + 5,6. זאת בשל העובדה כי מאגרים שונים Ca 2+ נמצאים בשפע myocytes לב, למשל, פוספוליפידים בממברנה, ATP, phosphocreatine, calmodulin, parvalbumin, myofibril TNC, שרירן, SERCA2a, ו calsequestrin ב SR. 5,6,7. ביניהם, SERCA2a ו TNC הם מאגרי Ca 2+ השולט 5,6,7. יתר על כן, Ca 2 + מחייב המאגרים שלה הוא תהליך דינמי במהלך עווית (למשל, 30-50% של Ca 2 + נקשרו TNC ו לנתק ממנו במהלך Ca 2 + ארעיים 7) ושינוי Ca 2 + מחייב גורם נוסף "לשחרר" של חינם Ca 2 + אל cytosol, תוצאות בהתאמות של Ca התאי 2+ קונצרט כלשהוentration. כתוצאה מכך, הפרעות של רמת תאיים Ca 2 + גורמות תנועות myofilament חריגות, אשר הן המבשרים של חוסר תפקוד התכווצות והפרעות קצב 8,9. גורמים רבים (הן פיזיולוגיים ופתולוגיים) יכול להיות מקורות שינויים שלאחר תעתיק של חלבונים myofilament, המשפיעים חציצה myofilament Ca 2+ myofilament רגישות Ca 2 + 8-10. לאחרונה, דווח כי מוטציות בחלבוני myofilament להגדיל את Ca 2 + זיקה מחייבת וטיפול תאיים Ca 2 +, מפעיל הגברה תלוית הפסקה של Ca 2 + ארעי, חריגת Ca 2 + שחרור, הפרעות קצב 8. עולים בקנה אחד עם המושג הזה, אנחנו גם הראינו כי הפחתת רגישות myofilament Ca 2+ בלבבות חולדה עם יתר לחץ דם משתי לרגולציה-אפ של synthase תחמוצת חנקן העצבית קשורות הדיאסטולי מוגבה סיסטולי Ca 2 + רמות11, אשר בתורו, מגביר את הפגיעות של LTCC כדי האיון התלוי 2+ Ca 12. לפיכך, רגישות 2+ myofilament Ca הוא רגולטור "פעיל" של פונקצית התכווצות הומאוסטזיס תאית Ca 2 + ו myocyte. זה הפך להיות צורך לנתח אינטראקציות בין myofilament ו Ca 2 + טיפול חלבונים לחקירה יסודית של צימוד myocyte EC ותפקוד הלב.

כאן אנו מתארים פרוטוקול מעריך את השינויים של רגישות 2+ myofilament Ca ב myocytes לב מבודד. ניתוח מקיף של פרופיל תאיים Ca 2 +, Ca 2 + myofilament רגישות וההתכווצות לחפור מנגנוני רומן מכניקת שריר לב בסיסית.

Protocol

הפרוטוקול הוא בהתאם מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה שפורסם על ידי המכונים הלאומיים האו"ם הבריאות (פרסום NIH מס 85-23, מתוקנת 1996). זה אושר על ידי ועדת טיפול בבעלי חיים מוסדיים השתמש (IACUC) של האוניברסיטה הלאומית בסיאול (אישור IACUC לא .: SNU-101,213-1). <p class="jove_title" style=";text-align:right;direc…

Representative Results

מיוציטים LV מבודדים לבבות עכברוש נורמלי יתר לחץ דם. רוד בצורה מיוציטים עם פסים ברורים (מייצג סרקומר) ואת צירים יציבים בתגובה לגירוי שדה נחשבים להיות מיוציטים האופטימלי ונבחרים להקלטות (איור 2 א). בדוגמה המוצגת F igure 2A, פורעה 2 לפני הצה?…

Discussion

כאן אנו מתארים את הפרוטוקולים כדי להעריך את השינויים של רגישות 2+ myofilament Ca ב myocyte הלב יחיד מבודד ולהדגיש את החשיבות של מדידת פרמטר זה לצד תכונות אלקטרו, הארעיים Ca 2 + תאיים, ודינמיקה myofilament. הסיבה לכך היא כי ההקלטות של אחד או שניים מהפרמטרים לא יכולות להסביר את…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקר זה מומן על ידי תוכנית המחקר למדע בסיסי באמצעות קרן המחקר הלאומית של קוריאה (NRF) במימון משרד החינוך, המדע והטכנולוגיה (2013068067); על ידי התכנית הבוגרת 21 מוח קוריאה של משרד קוריאני חינוך, מדע והטכנולוגיה, אונ' הלאומית בסיאול החולה, האגודה הקוריאנית של יתר לחץ דם (2013), קרן מחקר SK טלקום (לא. 3420130290) ומן הקרן הלאומית למדע הטבעי של סין (NSFC 31,460,265; NSFC 81,260,035).

Materials

Sprague Dawley rat Koatech 8-12 weeks
Pentobarbital Sodium Hanlim Pharmaceutical (Korea) AHN901 Insurance code:645301220
NaCl Sigma S9625
KCl Sigma P4504
NaH2PO4 Sigma S8282
HEPES Sigma H3375
Glucose Sigma G8270
CaCl2 Biosesang C2002
MgCl2 Biosesang M2001
Mannitol Sigma M4125
MgSO4 Sigma M5921
Sodium Pyruvate Sigma P2256
Taurine Merck 8.08616.1000
Na2HPO Sigma 71649
Bovine Fetal Albumin Sigma A7906
Collagenase Type 2 Worthington LS004177
Protease Sigma P6911
Fura-2 (AM) Molecular Probes F1221
Pluronic F127 20% solution in DMSO Invitrogen P3000MP
Shaking Water Bath Chang Shin Scientific Model: C-108
IonWizard Softwae Suite IonOptix Ltd Experimental Builder Acquisition and Analysis of EC Coupling Data in Myocytes
Myocyte Calcium & Contractility Recording System IonOptix Ltd
Circulating Water Bath BS-Tech BW2-8
Myocyte Fluorescence Microscope Nikon DIATPHOTO 200
MyoCam-S Power IonOptix
Fluorescence & Video Detection IonOptix MyoCam-S
CFA300
PMT400
Fluorescence & System Interface IonOptix FSI700
Excitation Light Source IonOptix mSTEP
High intensity ARC Lamp Power supply Cairn Reseach
Filter wheel controller IonOptix GB/MUS200
Digital Stimulator Medical Systems Corportion S-98 Mutimode
Compositions of Experimental Solutions
Name Company Catalog Number Comments
Isolation Solution (pH: 7.4, NaOH)
NaCl Sigma S9625 Concentration (mmol) 135
KCl Sigma P4504 Concentration (mmol) 5.4
HEPES Sigma H3375 Concentration (mmol) 5
Glucose Sigma G8270 Concentration (mmol) 5
MgCl2 Biosesang M2001 Concentration (mmol) 3.5
Taurine Sigma CB2742654 Concentration (mmol) 20
Na2HPO Sigma 71649 Concentration (mmol) 0.4
Storage Solution (pH: 7.4, NaOH)
NaCl Sigma S9625 Concentration (mmol) 120
KCl Sigma P4504 Concentration (mmol) 5.4
HEPES Sigma H3375 Concentration (mmol) 10
Glucose Sigma G8270 Concentration (mmol) 5.5
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 0.2
Mannitol Sigma M4125 Concentration (mmol) 29
MgSO4 Sigma M5921 Concentration (mmol) 5
Sodium Pyruvate Sigma P2256 Concentration (mmol) 5
Taurine Sigma CB2742654 Concentration (mmol) 20
Perfusion Solution (Tyrode solution, pH: 7.4, NaOH)
NaCl Sigma S9625 Concentration (mmol) 141.4
KCl Sigma P4504 Concentration (mmol) 4
NaH2PO4 Sigma S8282 Concentration (mmol) 0.33
HEPES Sigma H3375 Concentration (mmol) 10
Glucose Sigma G8270 Concentration (mmol) 5.5
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 1.8      For Fura 2AM loading, CaCl2 concentrations are 0.25 mM and 0.5 mM
MgCl2 Biosesang M2001 Concentration (mmol) 1
Mannitol Sigma M4125 Concentration (mmol) 14.5
Collangenase Solution 1
Isolation Solution (30mL)
Bovine Fetal Albumin (BSA solution 5 ml) Concentration (mmol) 1.67 mg/mL
Collagenase Type 2 Worthington LS004177 Concentration (mmol) 1 mg/mL
Protease Sigma P6911 Concentration (mmol) 0.1 mg/mL
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 0.05 mM
Collangenase Solution 2
Isolation Solution (20mL)
Bovine Fetal Albumin (BSA solution 3.3 mL) Concentration (mmol) 1.67 mg/mL
Collagenase Type 2 Worthington LS004177 Concentration (mmol) 1 mg/mL
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 0.05 mM
BSA solution
Isolation Solution (40mL)
Bovine Fetal Albumin Sigma A7906 Concentration (mmol) 400 mg
CaCl2 Biosesang C2002 Concentration (mmol) 1mM

References

  1. Bers, D. M., et al. Cardiac excitation-contraction coupling. Nature. 415 (6868), 198-205 (2002).
  2. Eisner, D. A., et al. Integrative analysis of calcium cycling in cardiac muscle. Circ Res. 87 (12), 1087-1094 (2000).
  3. Palmiter, K. A., et al. Molecular mechanisms regulating the myofilament response to Ca2+: implications of mutations causal for familial hypertrophic cardiomyopathy. Basic Res Cardiol. 92 (S1), 63-74 (1997).
  4. Missiaen, L., et al. Abnormal intracellular Ca2+ homeostasis and disease. Cell Calcium. 28 (1), 1-21 (2000).
  5. Trafford, A. W., et al. A novel, rapid and reversible method to measure Ca buffering and time-course of total sarcoplasmic reticulum Ca content in cardiac ventricular myocytes. Pflugers Arch. 437 (3), 501-503 (1999).
  6. Berlin, J. R., et al. Intrinsic cytosolic calcium buffering properties of single rat cardiac myocytes. Biophys J. 67 (4), 1775-1787 (1994).
  7. Robertson, S. P., et al. The time-course of Ca2+ exchange with calmodulin, troponin, parvalbumin, and myosin in response to transient increases in Ca2+. Biophys J. 34 (3), 559-569 (1981).
  8. Schober, T., et al. Myofilament Ca2+ sensitization increases cytosolic Ca2+ binding affinity, alters intracellular Ca2+ homeostasis, and causes pause-dependent Ca2+-triggered arrhythmia. Circ Res. 112 (2), 170-179 (2012).
  9. Briston, S. J., et al. Balanced changes in Ca buffering by SERCA and troponin contribute to Ca handling during β-adrenergic stimulation in cardiac myocytes. Cardiovasc Res. 104 (2), 347-354 (2014).
  10. Patel, B. G., Wilder, T., John Solaro, R. J., et al. Novel control of cardiac myofilament response to calcium by S-glutathionylation at specific sites of myosin binding protein C. Front Physiol. 4, 336 (2013).
  11. Jin, C. Z., et al. Myofilament Ca2+ desensitization mediates positive lusitropic effect of neuronal nitric oxide synthase in left ventricular myocytes from murine hypertensive heart. J Mol Cell Cardiol. 60, 107-115 (2013).
  12. Wang, Y., et al. Modulation of L-type Ca2+ channel activity by neuronal nitric oxide synthase and myofilament Ca2+ sensitivity in cardiac myocytes from hypertensive rat. Cell Calcium. 58 (3), 264-274 (2015).
  13. Louch, W. E., Sheehan, K. A., Wolska, B. M., et al. Methods in cardiomyocyte isolation, culture, and gene transfer. J Mol Cell Cardiol. 51 (3), 288-298 (2011).
  14. Spurgeon, H. A., et al. Cytosolic calcium and myofilaments in single rat cardiac myocytes achieve a dynamic equilibrium during twitch relaxation. J Physiol. 447, 83-102 (1992).
  15. Preston, L. C., et al. Functional effects of the DCM mutant Gly159Asp troponin C in skinned muscle fibres. Pflugers Arch. 453 (6), 771-776 (2007).
  16. Willott, R. H., et al. Mutations in Troponin that cause HCM, DCM AND RCM: what can we learn about thin filament function?. J Mol Cell Cardiol. 48 (5), 882-892 (2010).
  17. Yasuda, S. I., et al. A novel method to study contraction characteristics of a single cardiac myocyte using carbon fibers. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 281 (3), H1442-H1446 (2001).
  18. Sears, C. E., et al. Cardiac neuronal nitric oxide synthase isoform regulates myocardial contraction and calcium handling. Circ Res. 92 (5), e52-e59 (2003).
  19. Ashley, E. A., et al. Cardiac nitric oxide synthase 1 regulates basal and beta-adrenergic contractility in murine ventricular myocytes. Circulation. 105 (25), 3011-3016 (2002).
  20. Zhang, Y. H., et al. Reduced phospholamban phosphorylation is associated with impaired relaxation in left ventricular myocytes from neuronal NO synthase-deficient mice. Circ Res. 102 (2), 242-249 (2008).
  21. Roe, M. W., Lemasters, J. J., Herman, B., et al. Assessment of Fura-2 for measurements of cytosolic free calcium. Cell Calcium. 11 (2-3), 63-73 (1990).
  22. Grynkiewicz, G., et al. A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties. J Biol Chem. 260 (6), 3440-3450 (1985).
check_url/kr/54057?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhao, Z. H., Jin, C. L., Jang, J. H., Wu, Y. N., Kim, S. J., Jin, H. H., Cui, L., Zhang, Y. H. Assessment of Myofilament Ca2+ Sensitivity Underlying Cardiac Excitation-contraction Coupling. J. Vis. Exp. (114), e54057, doi:10.3791/54057 (2016).

View Video