Summary

Bestemmelse av Biofilm Initiation på virusinfiserte celler av bakterier og sopp

Published: July 06, 2016
doi:

Summary

A method is described herein for the determination of inter-Kingdom association and competition (bacterial and fungal) for adherence to virus-infected HeLa cell monolayers. This protocol can be extended to multiple combinations of prokaryotes, eukaryotes, and viruses.

Abstract

Studiet av interaksjonene polymikrobielle på tvers av de taksonomiske riker som omfatter sopp, bakterier og virus er ikke tidligere blitt undersøkt med hensyn til hvordan virale medlemmer av mikrobiomer påvirke etterfølgende mikrobe interaksjoner med disse virus-infiserte vertsceller. Den ko-bolig virus med bakterier og sopp er hovedsakelig til stede på de mucosale overflater i munnhulen og kjønnsorgan. Slimhinneceller, spesielt de med vedvarende kronisk eller vedvarende latente virusinfeksjoner, kan ha en betydelig innvirkning på medlemmer av mikrobiomer gjennom virus endring i antall og type reseptorer uttrykt. Modifikasjon i vertscellemembran arkitektur ville resultere i endrede egenskaper av etterfølgende medlemmer av den normale flora og opportunistiske patogener for å initiere den første trinnet i biofilmdannelse, dvs. tilslutning. Denne studien beskriver en fremgangsmåte for kvantifisering og visuell undersøkelse av HSV virkning på initiering av biofilm dannelse (etterlevelse) av S. aureus og C. albicans.

Introduction

Den menneskelige mikrobiomer omfatter ulike organismer fra flere taksonomiske riker som deler geografiske regioner i kroppen. Overholdelse av celleoverflater er et viktig første skritt i biofilmdannelse, som er en del av mikrobiomer kolonisering prosessen. Inkludert i mikrobiomer kan være virus som forårsaker kroniske og vedvarende infeksjoner. Den kroniske celle infeksjon av disse virusene kan føre til en endring i antatte reseptor tilgjengelighet. 1,2 I tillegg er celleinntrengning via intracellulære patogener kan også påvirke vert membranfluiditet / hydrofobisitet som igjen kan forandre feste av andre mikrobiomer medlemmer, inklusive bakterier og sopp . For å forstå samspillet som kan oppstå mellom disse flere patogener som co-lokalisere i de samme geografiske områder av den menneskelige vert, må vi være i stand til å studere samspillet mellom patogener som representerer hele spekteret av taksonomiske riker tilstede på slimhinneoverflaten.

t "> The herpesvirus er en familie av mikrober som er tilstede i 100% av menneskene som faste medlemmer av mikrobiomer 3,4. I tillegg kan de også bli vedvarende felle både i nærvær og fravær av symptomer. Nærmere bestemt, herpes simplex virus-1 og herpes simplex virus-2 (HSV-1 og HSV-2, henholdsvis) er faste medlemmer av mikrobiomer i oronasopharynx og kjønnsorgan. i immun-kompetente individer, både HSV-1 og HSV-2 årsak gingivostomatitis, samt genital herpes 5-8. på disse områdene, fører til HSV en latent infeksjon preget av kronisk vedvarende asymptomatisk viral Shedding 9. oppføring av HSV i cellene resulterer i endringer i overflaten uttrykk for nectins, heparansulfat, lipid flåter og herpesvirus oppføring megler / tumor nekrose faktor reseptor (HVEM / TNFR) 10-25. Disse potensielt representerer felles reseptorer for noen bakterier og sopp, for eksempel S. aureus og C. albicans, som samtidig opportunistiske patogenerkan også ligge som medlemmer av slimhinne mikrobiomer av oronasopharynx 26,27. Innenfor oronasopharynx S. aureus og C. albicans okkupere to forskjellige områder av kolonisering. I verter med naturlige tenner, er den orale mucosa deles av HSV-1 og C. albicans, mens de fremre nese svelget er okkupert av S. aureus 28. Men til tross for in vitro funn som S. aureus holder munnen epitelceller, 29,30 S. aureus er sjelden isolert fra muntlige prøver da normalt vev er til stede 29,30. Lite er kjent om kjønnsorgan co-kolonisering nisjer utover de kliniske funn som S. aureus er forbundet med aerob vaginitt, karakterisert ved genital inflammasjon, utslipp og dyspareuni, mens C. albicans produserer slimhinnere lignende den som ble observert i munnhulen 31-35. Derfor, selv om disse medlemmene av den muntlige og genital microbiome kryss taksonomiske riker lite er kjent om deres interaksjon som det påvirker deres evne til å initiere biofilmdannelse gjennom tilslutning til vertscelleoverflaten 5. Denne protokollen har blitt effektivt brukt til å bestemme de funksjonelle konsekvensene av co-kolonisering / infeksjon.

Protocol

1. HSV Stammer og håndtering Merk: Rekombinant ikke-spredning HSV-1 (KOS) gL86 og HSV-2 (KOS) 333gJ – med beta-galaktosidase reporter aktivitet brukt ble gitt av V. Twiari 36,37. Bruk virus fra en enkelt masse og oppbevar ved -80 ° C ved et 1: 1 forhold av Dulbeccos modifiserte Eagles medium (DMEM) med 20% føtalt bovint serum (FBS) og skummet melk inntil bruk. Før viral masse lagring, bestemme viruskonsentrasjon av o-nitrofenyl-β-D-galaktopyranosid (ONPG) og 5-brom-…

Representative Results

Nivået av robustheten av data som kan oppnås fra systemet som er beskrevet i denne publikasjonen er vist i figur 2 af 38. Ved hjelp av dette systemet modulering av stafylokokk og sopp interaksjon med virusinfiserte celler og deres innvirkning på hverandre tilslutning kan være avgrenset. Disse typer studier krever mikroskopisk undersøkelse av interaksjonen som vist i figurene 3 og 4 38 for å bestemme hvorvidt e…

Discussion

Foreløpig ingen informasjon er tilgjengelig på komplekse interaksjoner mellom permanent til semi-faste medlemmer av verts mikrobiomer som krysser flere taksonomiske domener, dvs. prokaryote, eukaryote og virale. Derfor utviklet vi en roman in vitro modellsystem for å studere biofilm initiering av S. aureus og C. albicans på HSV-1 eller HSV-2-infiserte HeLa-229 (HeLa celler) 38. Den HeLa cellemodellsystem presenterer en unik fordel. Dette er på grunn av deres mangel på…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This project was supported by Midwestern University, IL Office of Research and Sponsored Programs (ORSP) and Midwestern University College of Dental Medicine-Illinois (CDMI).

Materials

C.albicans
BBL Sabouraud Dextrose BD 211584
Fungisel Agar Dot Scientific 7205A
S.aureus
Mannitol Salt Agar Troy Biologicals 7143B
Sheep blood agar Troy Biologicals 221239
Hela cells
1xDMEM (Dubelcco's Modified Eagle Medium, with 4.5 g/L glucose and L-glutamine, without sodium pyruvate Corning 10-017-CM
Gentamicin 50mg/ml Sigma 1397 50µg/ml final concentration in the complete DMEM
Trypsin EDTA (0.05% Trypsin, 0.53M EDTA)Solution 1X Corning 25-052-CI
Fetal Bovine Serum Atlanta Biologicals S11150 10% final concentration in the complete DMEM
Other medium and reagents
ONPG Thermo Scientific 34055
Ultra-Pure X gal Invitrogen 15520-018
1x HBSS (Hanks' Balanced Salt Solution) Corning 20-021-CV
1XPBS Dot Scientific 30042-500
RIPA Lysis Life Technologies 89901
Staining
Methanol Fisher Scientific A433P-4
HSV 1&2, specific for gD ViroStat 196
DAPI SIGMA D8417-5MG
Gram Crystal Violet Troy Biologicals 212527
Supplies
Petri dish 100X15 Dot Scientific 229693 
Petri dish 150X15 Kord Valmark 2902
96-Well plates Evergreen Scientific 222-8030-01F
24-well plates Evergreen Scientific 222-8044-01F
Culture tubes 100×13 Thomas Scientific 9187L61
Cover slip circles, 12mm Deckglaser CB00120RA1

References

  1. Palu, G., et al. Effects of herpes-simplex virus type-1 infection on the plasma-membrane and related functions of HeLa S3 cells. J Gen Virol. 75, 3337-3344 (1994).
  2. Vitiello, G., et al. Lipid composition modulates the interaction of peptides deriving from herpes simplex virus type I glycoproteins B and H with biomembranes. Biochim. Biophys. Acta-Biomembr. 1808, 2517-2526 (2011).
  3. Bradley, H., Markowitz, L. E., Gibson, T., McQuillan, G. M. Seroprevalence of Herpes Simplex Virus Types 1 and 2-United States, 1999-2010. J. Infect. Dis. 209, 325-333 (2014).
  4. Szpara, M. L., et al. Evolution and diversity in Human Herpes Simplex Virus genomes. J Virol. 88, 1209-1227 (2014).
  5. Arduino, P. G., Porter, S. R. Herpes Simplex Virus Type I infection: overview on relevant clinico-pathological features. J Oral Pathol Med. 37, 107-121 (2008).
  6. Looker, K. J., Garnett, G. P. A systematic review of the epidemiology and interaction of herpes simplex virus types 1 and 2. Sex. Transm. Infect. 81, 103-107 (2005).
  7. Taylor, T. J., Brockman, M. A., McNamee, E. E., Knipe, D. M. Herpes simplex virus. Front Biosci. 7, 752-764 (2002).
  8. Bernstein, D. I., et al. Epidemiology, clinical presentation, and antibody response to primary infection with Herpes Simplex Virus Type 1 and Type 2 in young women. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 56, 344-351 (2013).
  9. Sacks, S. L., et al. HSV shedding. Antiviral Res. 63, 19-26 (2004).
  10. Brandhorst, T. T., et al. Structure and Function of a Fungal Adhesin that Binds Heparin and Mimics Thrombospondin-1 by Blocking T Cell Activation and Effector Function. PLoS Pathog. 9, (2013).
  11. Green, J. V., et al. Heparin-Binding Motifs and Biofilm Formation by Candida albicans. Journal of Infectious Diseases. 208, 1695-1704 (2013).
  12. Khalil, M. A., Sonbol, F. I. Investigation of biofilm formation on contact eye lenses caused by methicillin resistant Staphylococcus aureus. Niger. J. Clin. Pract. 17, 776-784 (2014).
  13. Shanks, R. M. Q., et al. Heparin stimulates Staphylococcus aureus biofilm formation. Infection and Immunity. 73, 4596-4606 (2005).
  14. Tiwari, V., et al. Role for 3-O-sulfated heparan sulfate as the receptor for herpes simplex virus type 1 entry into primary human corneal fibroblasts. J Virol. 80, 8970-8980 (2006).
  15. Delboy, M. G., Patterson, J. L., Hollander, A. M., Nicola, A. V. Nectin-2-mediated entry of a syncytial strain of herpes simplex virus via pH-independent fusion with the plasma membrane of Chinese hamster ovary cells. Virol J. 3, (2006).
  16. Di Giovine, P., et al. Structure of Herpes Simplex Virus Glycoprotein D Bound to the Human Receptor Nectin-1. PLoS Pathog. 7, (2011).
  17. Hauck, C. R. Cell adhesion receptors – signaling capacity and exploitation by bacterial pathogens. Medical Microbiology and Immunology. 191, 55-62 (2002).
  18. Kramko, N., et al. Early Staphylococcus aureus-induced changes in endothelial barrier function are strain-specific and unrelated to bacterial translocation. Int. J. Med. Microbiol. 303, 635-644 (2013).
  19. Roy, S., Nasser, S., Yee, M., Graves, D. T., Roy, S. A long-term siRNA strategy regulates fibronectin overexpression and improves vascular lesions in retinas of diabetic rats. Molecular vision. 17, 3166-3174 (2011).
  20. Sato, R., et al. Impaired cell adhesion, apoptosis, and signaling in WASP gene-disrupted Nalm-6 pre-B cells and recovery of cell adhesion using a transducible form of WASp. Int. J. Hematol. 95, 299-310 (2012).
  21. Shukla, S. Y., Singh, Y. K., Shukla, D. Role of Nectin-1, HVEM, and PILR-alpha in HSV-2 entry into human retinal pigment epithelial cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 50, 2878-2887 (2009).
  22. Stump, J. D., Sticht, H. Mutations in herpes simplex virus gD protein affect receptor binding by different molecular mechanisms. J Molecu Model. 20, (2014).
  23. Zelano, J., Wallquist, W., Hailer, N. P., Cullheim, S. Expression of nectin-1, nectin-3, N-cadherin, and NCAM in spinal motoneurons after sciatic nerve transection. Experimental Neurology. 201, 461-469 (2006).
  24. Akhtar, J., et al. HVEM and nectin-1 are the major mediators of herpes simplex virus 1 (HSV-1) entry into human conjunctival epithelium. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49, 4026-4035 (2008).
  25. Heo, S. K., et al. LIGHT enhances the bactericidal activity of human monocytes and neutrophils via HVEM. J. Leukoc. Biol. 79, 330-338 (2006).
  26. . National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report. Am J Infect Control. 32, 470-485 (2004).
  27. Wisplinghoff, H., et al. Nosocomial bloodstream infections in US hospitals: analysis of 24,179 cases from a prospective nationwide surveillance study. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 39, 1093-1093 (2004).
  28. Colacite, J., et al. Pathogenic potential of Staphylococcus aureus strains isolated from various origins. Ann. Microbiol. 61, 639-647 (2011).
  29. Colombo, A. V., et al. Quantitative detection of Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis and Pseudomonas aeruginosa in human oral epithelial cells from subjects with periodontitis and periodontal health. J. Med. Microbiol. 62, 1592-1600 (2013).
  30. Merghni, A., Ben Nejma, M., Hentati, H., Mahjoub, A., Mastouri, M. Adhesive properties and extracellular enzymatic activity of Staphylococcus aureus strains isolated from oral cavity. Microb Pathogen. 73, 7-12 (2014).
  31. Donders, G. G. G., et al. Definition of a type of abnormal vaginal flora that is distinct from bacterial vaginosis: aerobic vaginitis. Bjog. 109, 34-43 (2002).
  32. Li, J. R., McCormick, J., Bocking, A., Reid, G. Importance of vaginal microbes in reproductive health. Repro Sci. 19, 235-242 (2012).
  33. Jarvis, W. R. The epidemiology of colonization. Infect Cont Hosp Epidemiol. 17, 47-52 (1996).
  34. Okonofua, F. E., Akonai, K. A., Dighitoghi, M. D. Lower genital-tract infections in infertile nigerian women compared with controls. Genitourin Med. 71, 163-168 (1995).
  35. Nenoff, P., et al. Mycology – an update Part 2: Dermatomycoses: Clinical picture and diagnostics. J Der Deutschen Dermatol Gesellschaft. 12, 749-779 (2014).
  36. Hubbard, S., et al. Contortrostatin, a homodimeric disintegrin isolated from snake venom inhibits herpes simplex virus entry and cell fusion. Antivir. Ther. 17, 1319-1326 (2012).
  37. Shukla, S. Y., Singh, Y. K., Shukla, D. Role of Nectin-1, HVEM, and PILR-α in HSV-2 entry into human retinal pigment epithelial cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50, 2878-2887 (2009).
  38. Plotkin, B. J., Sigar, I. M., Tiwari, V., Halkyard, S. Herpes simplex virus (HSV) modulation of Staphylococcus aureus. and Candida albicans.initiation of HeLa 299 cell-associated biofilm. Curr Microbiol. , (2016).
  39. Alva-Murillo, N., Lopez-Meza, J. E., Ochoa-Zarzosa, A. Nonprofessional phagocytic cell receptors involved in Staphylococcus aureus internalization. Biomed Res Internat. , (2014).
  40. Calderone, R. A., Scheld, W. M. Role of fibronectin in the pathogenesis of candidal infections. Reviews of infectious diseases. 9, 400-403 (1987).
  41. Fowler, T., et al. Cellular invasion by Staphylococcus aureus involves a fibronectin bridge between the bacterial fibronectin-binding MSCRAMMs and host cell beta1 integrins. European journal of cell biology. 79, 672-679 (2000).
  42. Mao, L., Franke, J. Symbiosis, dysbiosis, and rebiosis-The value of metaproteomics in human microbiome monitoring. Proteomics. 15, 1142-1151 (2015).
  43. Christopher, R. A., Kowalczyk, A. P., McKeown-Longo, P. J. Localization of fibronectin matrix assembly sites on fibroblasts and endothelial cells. J Cell Sci. 110, 569-581 (1997).
  44. Heino, J., Kapyla, J. Cellular receptors of extracellular matrix molecules. Current Pharm Des. 15, 1309-1317 (2009).
  45. Hynes, R. O., et al. A large glycoprotein lost from the surfaces of transformed cells. Annals of the New York Academy of Sciences. 312, 317-342 (1978).
  46. Mao, Y., Schwarzbauer, J. E. Fibronectin fibrillogenesis, a cell-mediated matrix assembly process. Matrix biology : journal of the International Society for Matrix Biology. 24, 389-399 (2005).
  47. Schwarzbauer, J. E., DeSimone, D. W. Fibronectins, their fibrillogenesis, and in vivo functions. Cold Spring Harbor perspectives in biology. 3, (2011).
  48. Abdelmegeed, E., Shaaban, M. I. Cydooxygenase inhibitors reduce biofilm formation and yeast-hypha conversion of fluconazole resistant Candida albicans. J. Microbiol. 51, 598-604 (2013).
  49. Gow, N. A. Germ tube growth of Candida albicans. Current topics in medical mycology. 8, 43-55 (1997).
  50. Liu, Y. P., Filler, S. G. Candida albicans Als3, a multifunctional adhesin and invasin. Eukaryot. Cell. 10, 168-173 (2011).
  51. Lu, Y., Su, C., Liu, H. Candida albicans hyphal initiation and elongation. Trends Microbiol. 22, 707-714 (2014).
  52. Kabir, M. A., Hussain, M. A., Ahmad, Z. Candida albicans: A model organism for studying fungal pathogens. ISRN microbiology. 2012, 538694 (2012).
  53. Ovchinnikova, E. S., Krom, B. P., Busscher, H. J., van der Mei, H. C. Evaluation of adhesion forces of Staphylococcus aureus along the length of Candida albicans hyphae. BMC Microbiol. 12, (2012).
  54. Peters, B. M., et al. Staphylococcus aureus adherence to Candida albicans hyphae is mediated by the hyphal adhesin Als3p. Microbiology-Sgm. 158, 2975-2986 (2012).
check_url/kr/54162?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Plotkin, B. J., Sigar, I. M., Tiwari, V., Halkyard, S. Determination of Biofilm Initiation on Virus-infected Cells by Bacteria and Fungi. J. Vis. Exp. (113), e54162, doi:10.3791/54162 (2016).

View Video