Summary

준비 및<em> 생체</em> 액티비티 기반 프로브의 사용을위한<em> N</em> -acylethanolamine 산 아미 다제

Published: November 23, 2016
doi:

Summary

여기서는 활동 기반 프로브의 제조 및 사용을 설명 (ARN14686, 운데 10 ynyl- N – [(3- S) -2- oxoazetidin -3- 일] 카르 바 메이트)의 검출 및 정량화를 허용 염증성 효소 N -acylethanolamine 산 아미 다 아제의 활성 형태 (NAAA), 모두 생체 외생체있다.

Abstract

활동 기반 단백질 프로파일 (ABPP)는 효소의 활성 부위를 타겟팅하는 화학 프로브의 사용을 통해 복잡한 프로테옴 관심 효소의 동정하는 방법이다. 프로브에 도입 된 리포터 태그의 겔 형광 검사, 단백질 오, 형광 현미경, 액체 크로마토 그래피 질량 분석에 의해 효소 표지의 검출을 허용한다. 여기, 우리는 준비 및 복합 ARN14686의 사용, 선택적으로 효소 N -acylethanolamine 산 아미 다제 (NAAA)를 인식하는 클릭 화학의 활동 기반 프로브 (CC-ABP)을 설명합니다. NAAA는 팔미 토일 (PEA)과 oleoylethanolamide (OEA)과 같은 내인성 페 록시 솜 증식 제 – 활성화 수용체 (PPAR) – 알파 작용제를 비활성화하여 염증을 촉진 시스테인 가수 분해 효소이다. NAAA은 리소좀의 산성 pH에서 autoproteolysis에 의해 활성화되는 비활성 전체 길이 proenzyme으로 합성된다. 현지화 연구 시간NAAA은 주로 B 림프구뿐만 아니라, 대 식세포 및 다른 단핵구 유래 된 세포에서 발현되는 것으로 나타 집결지. 우리는 ARN14686 감지하고 단백질 얼룩과 형광 현미경으로 설치류 조직에서 활동 NAAA 생체을 정량화 할 수있는 방법의 예를 제공합니다.

Introduction

일반적 산탄 분석 1,2- 효모 용 액체 크로마토 그래피 질량 분석 플랫폼을 포함하는 발현 패턴의 상호 작용 및 기능 단백질을 조사하는 방법을 사용하는 두 개의 하이브리드 방법 3,4시험 관내 분석에서 그들이 것을 한정 그 나라의 상태에서 단백질의 활성을 평가할 수 없습니다. 활동 기반 단백질 프로파일 (ABPP)이 갭을 채우기 위해 사용될 수있다. 이 방식에서, 작은 분자에 공유 표적 탐지 가능 리포터 그룹에 결합되는 관심있는 효소의 활성 부위에 결합 할 수있는 프로브. 클릭 화학 (CC)를 사용하여 리포터 프로브에 통합 될 수 있거나 또는 표적 결합이 5,6 발생한 후에 도입 될 수있다. 후자의 방법은 SUC 바이오 직교 반응을 통해 리포터 시약 다수 개질 될 수있는 단자 알킨 또는 아 지드와 같은 적합한 화학 그룹을 포함하는 프로브를 사용해야구리 (I)와 같은 시간 [3 + 2] 사이클로 7-9 또는 슈타 우 딩거 결찰 10, 11 Huisgen을 촉매 반응.

최근에는 체외위한 제 ABP와 같은 시스테인 가수 분해 효소, NAAA (12)의 생체 검출의 화합물 ARN14686 개시된. NAAA는 항 염증 핵 수용체 PPAR 알파 13 ~ 15의 내인성 작용제이다 oleoylethanolamide (OEA) 및 팔미 토일 (PEA)을 포함하여 포화 및 불포화 FAES,의 가수 분해 비활성화를 촉매한다. NAAA 주로 선천성 면역 반응의 조절에 중요한 역할을 시사뿐만 B 림프구 (14,16)와 같이, 대 식세포 및 다른 단핵구 유래 된 세포에서 발현된다. 효소는 비활성 형태로 거친 소포체에서 합성 및 autoproteolytic기구 (17)에 의해 세포의 산성 구획에 활성화됩니다. autoproteolytic 분열은 (C13를 새 N 말단 시스테인을 생성마우스 및 쥐에서 1, 인간의 C126), 즉 FAE의 친핵체 책임은 (18, 19)을 가수 분해한다. NAAA 활동의 약리 억제는 FAES 16,20,21 증가 세포 수준에 찬성 FAE 합성 / 분해의 균형을 변경합니다. 여러 β-락톤 및 β – 락탐 유도체는 높은 효능 및 선택성 16,22-26와 NAAA 활성을 억제하는 것으로 나타났다. 이러한 억제제는 촉매 시스테인 16,27,28의 S의 -acylation을 통해 작용한다.

(- [(S) -2- oxoazetidin -3- 일] 카르 바 메이트 4- cyclohexylbutyl- N) 16 화합물 ARN14686은 전신적 활성 세린 유래 β 락탐 NAAA 억제제의 화학 구조, ARN726에 기초하여 설계되었다. ARN726의 4 부틸 사이클로 헥실 그룹은 아 지드 베어링 기자 태그 이후 CC의 접합을위한 터미널 알킨 태그를 베어링 C9 포화 지방족 체인으로 대체되었다. 우리 minimall하는 두 단계 ABP 디자인을 선택따라서 Y NAAA 용 프로브의 친화력을 유지하면서 원래의 지지체의 구조를 변화. 또한, 부피가 태그의 도입을 피하는 등의 프로브가 직접 ABP보다 생체 내 치료에 적합 할 수있다. ARN14686 높은 효능으로 NAAA 억제 효소 촉매 (12)의 시스테인과 공유 부가 물을 형성함으로써 (hNAAA IC 50 = 6 nM의, rNAAA IC 50 = 13 ㎚). 살아있는 쥐의 실험 프로브가 NAAA가 폐에 표현 캡처 선택적 있음을 보여 주었다. 높은 프로브 농도 (시험 관내에서 10 μM, 10 밀리그램 / 정맥 주사, 정맥 ㎖) (12)를 사용할 때 산성 세라 미다, NAAA와 33~34% ID를 공유하는 다른 시스테인 아미 다제는 또한 낮은 친 화성 대상으로 확인되었다. 우리는 또한 완전한 프로 인트 보조제 (CFA) (29)의 투여 후 염증이 쥐의 조직에서 활동 NAAA의 존재를 연구하는 ARN14686을 사용했다.

여기에서는 preparati위한 프로토콜 개요ARN14686 (그림 1)과 NAAA 활성화 생체의 조사에의 응용의에. 예를 들어, 우리는 CFA 투여 후 쥐의 발에 NAAA을 시각화하는 실험 절차를 설명합니다. 이 실험에서, 단백질은 프로브의 IV 주입 후 발 조직으로부터 추출되고, ABP 표지 프로테옴 비오틴 지드와 CC 받는다. 비오틴 샘플을 스트렙 타비 딘 비드를 사용하여 농축하고, 단백질 블롯 행한다. 다른 응용 프로그램에서, 우리는 프로브 처리 된 마우스에서 마우스의 폐에서 형광 현미경으로 활성화 NAAA의 현지화를 설명합니다. 이 경우, 조직을 절단하고, 절편을 로다 민 첨가 CC 실시된다. 워크 플로 방식은도 2에 도시되어있다.

Protocol

주의 : 모든 화학 반응이 환기 흄 후드 및 실험실 코트, 장갑 및 보호 고글의 사용으로 수행되어야한다. 반응은 질소 환경에서 수행되어야한다. 윤리 문 : 동물을 포함하는 우리의 절차는 실험과 기타 과학적 목적 (DM 116192), 유럽 경제 공동체 규정에 사용되는 동물의 보호에 이탈리아의 규정에 따라 수행된다 (OJ EC의 L 1분의 358 1986년 12월 18일 ). 참고 합성 [(3- S) -2- oxoazetidin -3- 일] 아세트산 암모?…

Representative Results

ARN14686는 NAAA 억제제 ARN726의 발판을 기반으로 설계되었다. ARN726의 4-tert- 부틸 시클로 헥 실기가 C9 포화 지방족 쇄 말단 알킨 태그 (도 1) 방위로 치환 하였다. 알킨 태그는 형광 또는 CC 통해 비오틴 분자를 추가하는 두 단계의 표시 절차의 이용을 허용하기 위해 도입되었다. 이 특징은 생체 외 및 생체 내 NAAA을 프로빙 매우 다용도 공구 ARN14686 렌더?…

Discussion

효소 활성은 미세 RNA 전사, 단백질 합성, 단백질 전좌, 번역 후 변형 및 단백질 – 단백질 상호 작용을 포함하여 다양한 수준에서 조절된다. 종종, 효소의 발현 혼자의 활동을 설명하지 않습니다. ABPP는 천연 상태의 단백질의 활성을 연구하기 위해 개발되었다. 두 가지 기능이 요구된다 : 공유 관심 효소 리포터 태그의 활성 부위에 결합하는 화학 프로브는 프로브 – 표지 효소를 검출.

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Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank the Nikon Imaging Center at Istituto Italiano di Tecnologia, Genova, Italy (NIC@IIT).

Materials

1,1’-sulfonyldiimidazole  Sigma Aldrich 367818 Harmful
2-dipyridylcarbonate Fluorochem 11331 Harmful
2-Methylbutan Sigma Aldrich M32631 Flamable, toxic,hazardous to the aquatic environment
4-(Dimethylamino)pyridine Sigma Aldrich 107700 Toxic
Acetic acid Sigma Aldrich 695092 Flammable, Corrosive
Acetonitrile  Sigma Aldrich 34998 Flammable, Toxic
Activated charcoal Sigma Aldrich 161551
Ammonium chloride Sigma Aldrich A9434 Harmful
Azide-PEG3-Biotin Jena Biosciences CLK-AZ104P4
Azide-PEG3-Fluor 545 Jena Biosciences CLK-AZ109
BCA protein assay kit Thermo Fisher Scientific 23227
Bio-spin columns Biorad 732-6204
Biotin Sigma Aldrich B4501
Blocking buffer Li-Cor Biosciences 927-40000
b-mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250 Higly toxic
Bovin serum albumine (BSA) Sigma Aldrich A7030
Bromophenol blue Sigma Aldrich B0126
Bruker Avance III 400 Bruker
Celite Sigma Aldrich 419931 Health hazard
Ceric ammonium nitrate  Sigma Aldrich 22249 Oxidizing, Harmful
Chloral hydrate Sigma Aldrich C8383 Higly toxic
CuSO4.5H2O  Sigma Aldrich 209198 Toxic
Cyclohexadiene Sigma Aldrich 125415 Flammable, Health hazard
Cyclohexane Sigma Aldrich 34855 Flammable, Harmful, Health hazard, Environmental hazard
Dichloromethane Sigma Aldrich 34856 Harmful, Health hazard
Diethyl ether Sigma Aldrich 296082 Flammable, Harmful
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Acros Organics 348441000
Dimethyl sulfoxide d6 (DMSO-d6) Sigma Aldrich 175943
Ethanol Sigma Aldrich 2860 Flammable, Harmful
Ethyl acetate Sigma Aldrich 34858 Flammable, Harmful
Glycerol Sigma Aldrich G5516
Irdye 680-LT Streptavidin Li-Cor Biosciences 925-68031
IRDye680-LT Streptavidin  Licor 925-68031 Briefly centrifuge before use to precipitate protein complexes
Methanol Sigma Aldrich 34966 Highly toxic
Methanol Sigma Aldrich 34860 Flammable, Toxic, Health hazard
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride Sigma Aldrich E7750 Harmful, Corrosive
N,N-diisopropylethylamine Sigma Aldrich D125806 Flammable, Corrosive, Toxic
N,N-dimethylformamide Sigma Aldrich 227056 Flammable, Harmful, Health hazard
N-Cbz-L-Serine Fluorochem  M03053 Harmful
Nikon A1 confocal microscopy Nikon Read  the user manual
NuPAGE 4-12% Bis-Tris gel Thermo Fisher Scientific NP0335BOX
Palladium on carbon Sigma Aldrich 330108
p-anisidine Sigma Aldrich A88255 Toxic, Health hazard, Environmental hazard
Paraformaldehyde sigma Aldrich 441244 Toxic, respiratory harmful, corrosive, falmable
Poly(ethylene glycol)  Sigma Aldrich P3265
ProLong Gold antifade mountant with DAPI  Thermo Fisher Scientific P36931 Avoid bubbles formation
Protease inhibitor cocktail Sigma Aldrich P8340
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S6014
Sodium dodecyl sulfate (SDS)  Sigma Aldrich L3771 Toxic, corrosive, falmmable
Sodium hydride  Sigma Aldrich 452912 Flammable
Sodium sulfate Sigma Aldrich 239313
Starion FLA-9000 immage scanner FUJIFILM Read  the user manual
Streptavidin agarose Thermo Fisher Scientific 20349
Sucrose Sigma Aldrich S7903
Tert-butanol Sigma Aldrich 360538 Toxic, flammable
Tetrahydrofuran Sigma Aldrich 186562 Flammable, Harmful, Health hazard
Thiourea Acros Organics 424542500 Toxic, warm at 50 °C to dissolve
Tris Sigma Aldrich RDD008
Tris(2-carboxyethyl)phosphine (TCEP) Sigma Aldrich C4706
Tris[(1-benzyl-1H-1,2,3-triazol-4-yl)methyl]amine (TBTA) Sigma Aldrich 678937
Triton-x100 Sigma Aldrich X100 Toxic
Tween-20 Sigma Aldrich P9416
Tween-80 Sigma Aldrich P1754
Ultra turrax IKA T18 basic tissue homogenizer IKA
Undec-10-yn-1-ol Fluorochem 13739 Harmful
Urea Sigma Aldrich U5378 Toxic, warm at 50 °C to dissolve

References

  1. Gygi, S. P., Han, D. K., Gingras, A. C., Sonenberg, N., Aebersold, R. Protein analysis by mass spectrometry and sequence database searching: tools for cancer research in the post-genomic era. Electrophoresis. 20, 310-319 (1999).
  2. Washburn, M. P., Wolters, D., Yates, J. R. Large-scale analysis of the yeast proteome by multidimensional protein identification technology. Nat Biotechnol. 19, 242-247 (2001).
  3. Zhu, H., Bilgin, M., Snyder, M. Proteomics. Annu Rev Biochem. 72, 783-812 (2003).
  4. Ito, T., et al. Roles for the two-hybrid system in exploration of the yeast protein interactome. Mol Cell Proteomics. 1, 561-566 (2002).
  5. Evans, M. J., Cravatt, B. F. Mechanism-based profiling of enzyme families. Chem Rev. 106, 3279-3301 (2006).
  6. Cravatt, B. F., Wright, A. T., Kozarich, J. W. Activity-based protein profiling: from enzyme chemistry to proteomic chemistry. Annu Rev Biochem. 77, 383-414 (2008).
  7. Rostovtsev, V. V., Green, L. G., Fokin, V. V., Sharpless, K. B. A stepwise huisgen cycloaddition process: copper(I)-catalyzed regioselective “ligation” of azides and terminal alkynes. Angew Chem Int Ed Engl. 41, 2596-2599 (2002).
  8. Meldal, M., Tornoe, C. W. Cu-catalyzed azide-alkyne cycloaddition. Chem Rev. 108, 2952-3015 (2008).
  9. Speers, A. E., Adam, G. C., Cravatt, B. F. Activity-based protein profiling in vivo using a copper(i)-catalyzed azide-alkyne [3 + 2] cycloaddition. J Am Chem Soc. 125, 4686-4687 (2003).
  10. Saxon, E., Bertozzi, C. R. Cell surface engineering by a modified Staudinger reaction. Science. 287, 2007-2010 (2000).
  11. Kohn, M., Breinbauer, R. The Staudinger ligation-a gift to chemical biology. Angew Chem Int Ed Engl. 43, 3106-3116 (2004).
  12. Romeo, E., et al. Activity-Based Probe for N-Acylethanolamine Acid Amidase. ACS Chem Biol. 10, 2057-2064 (2015).
  13. Ueda, N., Yamanaka, K., Yamamoto, S. Purification and characterization of an acid amidase selective for N-palmitoylethanolamine, a putative endogenous anti-inflammatory substance. J Biol Chem. 276, 35552-35557 (2001).
  14. Tsuboi, K., et al. Molecular characterization of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a novel member of the choloylglycine hydrolase family with structural and functional similarity to acid ceramidase. J Biol Chem. 280, 11082-11092 (2005).
  15. Tsuboi, K., Takezaki, N., Ueda, N. The N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase (NAAA). Chem Biodivers. 4, 1914-1925 (2007).
  16. Ribeiro, A., et al. A Potent Systemically Active N-Acylethanolamine Acid Amidase Inhibitor that Suppresses Inflammation and Human Macrophage Activation. ACS Chem Biol. 10, 1838-1846 (2015).
  17. Zhao, L. Y., Tsuboi, K., Okamoto, Y., Nagahata, S., Ueda, N. Proteolytic activation and glycosylation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase, a lysosomal enzyme involved in the endocannabinoid metabolism. Biochim Biophys Acta. 1771, 1397-1405 (2007).
  18. Wang, J., et al. Amino acid residues crucial in pH regulation and proteolytic activation of N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. Biochim Biophys Acta. 1781, 710-717 (2008).
  19. West, J. M., Zvonok, N., Whitten, K. M., Wood, J. T., Makriyannis, A. Mass spectrometric characterization of human N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase. J Proteome Res. 11, 972-981 (2012).
  20. Bandiera, T., Ponzano, S., Piomelli, D. Advances in the discovery of N-acylethanolamine acid amidase inhibitors. Pharmacol Res. 86, 11-17 (2014).
  21. Sasso, O., et al. Antinociceptive effects of the N-acylethanolamine acid amidase inhibitor ARN077 in rodent pain models. Pain. 154, 350-360 (2013).
  22. Duranti, A., et al. N-(2-oxo-3-oxetanyl)carbamic acid esters as N-acylethanolamine acid amidase inhibitors: synthesis and structure-activity and structure-property relationships. J Med Chem. 55, 4824-4836 (2012).
  23. Ponzano, S., et al. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) of 2-methyl-4-oxo-3-oxetanylcarbamic acid esters, a class of potent N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. J Med Chem. 56, 6917-6934 (2013).
  24. Solorzano, C., et al. Synthesis and structure-activity relationships of N-(2-oxo-3-oxetanyl)amides as N-acylethanolamine-hydrolyzing acid amidase inhibitors. J Med Chem. 53, 5770-5781 (2010).
  25. Vitale, R., et al. Synthesis, structure-activity, and structure-stability relationships of 2-substituted-N-(4-oxo-3-oxetanyl) N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors. ChemMedChem 9. 9, 323-336 (2014).
  26. Fiasella, A., et al. 3-Aminoazetidin-2-one derivatives as N-acylethanolamine acid amidase (NAAA) inhibitors suitable for systemic administration. ChemMedChem 9. 9, 1602-1614 (2014).
  27. Armirotti, A., et al. beta-Lactones Inhibit N-acylethanolamine Acid Amidase by S-Acylation of the Catalytic N-Terminal Cysteine. ACS Med Chem Lett. 3, 422-426 (2012).
  28. Nuzzi, A., et al. Potent alpha-amino-beta-lactam carbamic acid ester as NAAA inhibitors. Synthesis and structure-activity relationship (SAR) studies. Eur J Med Chem. 111, 138-159 (2016).
  29. Bonezzi, F. T., et al. An Important Role for N-Acylethanolamine Acid Amidase in the Complete Freund’s Adjuvant Rat Model of Arthritis. J Pharmacol Exp Ther. 356, 656-663 (2016).
  30. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Anal Biochem. 150, 76-85 (1985).
  31. Speers, A. E., Cravatt, B. F. Activity-Based Protein Profiling (ABPP) and Click Chemistry (CC)-ABPP by MudPIT Mass Spectrometry. Curr Protoc Chem Biol. 1, 29-41 (2009).
  32. Rybak, J. N., Scheurer, S. B., Neri, D., Elia, G. Purification of biotinylated proteins on streptavidin resin: a protocol for quantitative elution. Proteomics. 4, 2296-2299 (2004).
  33. Penna, A., Cahalan, M. Western Blotting using the Invitrogen NuPage Novex Bis Tris minigels. J Vis Exp. (264), (2007).
  34. Giuffrida, A., Piomelli, D. Isotope dilution GC/MS determination of anandamide and other fatty acylethanolamides in rat blood plasma. FEBS Lett. 422, 373-376 (1998).
  35. Buczynski, M. W., Parsons, L. H. Quantification of brain endocannabinoid levels: methods, interpretations and pitfalls. Br J Pharmacol. 160, 423-442 (2010).
check_url/kr/54652?article_type=t

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Romeo, E., Pontis, S., Ponzano, S., Bonezzi, F., Migliore, M., Di Martino, S., Summa, M., Piomelli, D. Preparation and In Vivo Use of an Activity-based Probe for N-acylethanolamine Acid Amidase. J. Vis. Exp. (117), e54652, doi:10.3791/54652 (2016).

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