Summary

Использование синтетической биологии инженеру живых клеток, которые взаимодействуют с программируемыми материалов

Published: March 09, 2017
doi:

Summary

Эта статья представляет собой серию протоколов для разработки сконструированных клеток и функционализированных поверхности , которые дают возможность синтетически сконструированных E.coli , чтобы контролировать и управлять программируемыми поверхности материалов.

Abstract

Мы разработали абиотическую-биотических интерфейс, который позволяет сконструированные клетки контролировать свойства материала функционализированного поверхности. Эта система сделана путем создания двух модулей: синтетически сконструированного штамма клеток E.coli и функционализированный интерфейс материала. В этой статье мы подробно протокол для генной инженерии выбранного поведения в пределах штамма E.coli , при использовании стратегий молекулярного клонирования. После разработки, этот штамм продуцирует повышенные уровни биотина при воздействии химического индуктора. Кроме того, мы подробно протоколы для создания двух различных функционализированных поверхностей, каждая из которых способна реагировать на клетки синтезированный биотина. Взятые вместе, мы представляем методологию для создания связанного, абиотическую-биотических система, которая позволяет сконструированные клетки для контроля состава материала и сборки на неживых субстратах.

Introduction

Мы сообщаем процедуры разработки программируемую субстрат, способный реагировать на химический сигнал от сконструированного клеточной линии. 1 Мы делаем это путем создания биотин-стрептавидин интерфейс , который реагирует с биотином получают синтетически сконструированного Escherichia coli (E.coli) клетках. Ранее программируемые поверхности были разработаны для широкого спектра применений от обнаружения токсина 2 и пункт-ухода диагностики 3 обороны и безопасности. 4 В то время как программируемые поверхности могут быть использованы в качестве датчиков и исполнительных устройств, они могут быть сделаны "умнее" , наделяя их способностью приспосабливаться к различным экологическим проблемам. В отличие от этого , даже простые микроорганизмы, такие как E.coli, имеют присущую адаптивность и способны реагировать на вызовы со сложными и зачастую неожиданные решения. Эта адаптивность позволила Е.популяции Coli, под контролем их сложных генных сетей, экономически эффективно изыскивать ресурсы, 5 создавать продукты с добавленной стоимостью, 6 и даже мощности микро-масштаба робототехники. 7 сочетанием адаптивных преимуществ живых клеток с использованием программируемых поверхностей, мы можем создать смарт – субстрат , способный реагировать на различных условиях окружающей среды.

Синтетическая биология дала исследователям новые способности программировать поведение живых организмов. Машиностроительным клетки содержат новый ген регуляторных сетей, исследователи могут конструировать клетки, которые демонстрируют целый ряд запрограммированных форм поведения. 8, 9 Помимо фундаментальных исследований, эти модели поведения могут быть использованы для приложений , таких как управление Сборочный материал и биологически производства продукции с высокой добавленной стоимостью. 10 Здесь мы подробно , как мы использовали инструменты синтетической биологии для ваннойgineer штамм E.coli , который синтезирует биотин при индукции. Этот штамм был разработан с использованием методов фермента рестрикции клонирования для сборки плазмиды, pKE1-Лачи-bioB. Эта плазмида, когда трансформировали в E.coli штамм К-12 MG1655, жертвует клетки со способностью выражать повышенные уровни bioB, жизненно важного фермента для синтеза биотина. Когда трансформированные клетки индуцировали изопропиловым бета-D-1-тиогалактопиранозида (IPTG) и при условии, с предшественником биотин, desthiobiotin (DTB), были получены повышенные уровни биотина.

связывающее взаимодействие биотин с стрептавидином является одним из самых сильных нековалентных связей, существующих в природе. Таким образом, взаимодействие биотин-стрептавидин и хорошо охарактеризованных и высоко занятых в области биотехнологии. 11 В рамках этой рукописи мы представляем две стратегии , использующие взаимодействие биотин-стрептавидин чувствовать и обнаруживать клеток производства биотина с функционализированного поверхностью. Мыотносятся к этим контрастных поверхностей, как «косвенные» и «прямых» схем управления. В косвенном схеме управления, клетка производства биотин конкурирует с биотином, который был конъюгированным и иммобилизованного на поверхности полистирола для стрептавидина-сайтов. Кроме того, стрептавидин конъюгирован с пероксидазой хрена (HRP). ПХ изменяет 3, 3 ', 5, 5'-тетраметилбензидином (ТМВ), для получения оптического сигнала, 12 , которые могут быть проверены количественной оценки спектральной поглощательной (т.е. оптической плотности) при 450 нм (OD 450). Таким образом, косвенная схема управления позволяет исследователям измерять клеток производства биотин путем мониторинга затуханием сигнала OD 450.

Схема прямого управления использует стрептавидин-биотин событие иммобилизацией стрептавидин непосредственно к поверхности материала и позволяя клеток производства биотина и биотинилированного HRP, чтобы конкурировать за сайты связывания стрептавидина. Опять же,Относительные уровни клеточного производства биотина контролируются путем измерения сигнала OD 450.

Взятые вместе, сконструированные клетки и функционализованные поверхности позволяют нам контролировать свойства программируемой поверхности путем индуцирования сетей в живых клетках. Другими словами, мы создали систему, которая использует преимущества приспособляемости живых организмов и надежности и спецификации сконструированной интерфейса материала, связывая эти системы вместе.

Protocol

1. Средства массовой информации и культуры Подготовка Подготовка лизогении бульона (LB) носителя путем смешивания 25 г порошка LB запаса 1 л деионизированной (ДИ) воды и автоклавированием раствора при температуре 121 ° С в течение 20 мин , чтобы стерилизов…

Representative Results

Типичные результаты представлены в прилагаемой пяти фигур. Во- первых, мы представляем процесс клонирования графически (рис 1) , так что читатель может визуально следить за критические шаги для создания синтетически сконструированного штамма E.coli. Для то?…

Discussion

Мы представили новую стратегию для взаимодействия сконструированных живых клеток с функциональными группами поверхности материала. Это было достигнуто путем разработки клеточной линии, способной синтезировать повышенные уровни биотина при индуцированных IPTG. Повышенные уровни био?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы выражают благодарность поддержку от премии FA9550-13-1-0108 от Управления ВВС научных исследований США. Авторы дополнительно признают поддержку от премии N00014-15-1-2502 из Управления военно-морских исследований США, финансирование из Института важнейших технологий и прикладных наук в Вирджинии политехнического института и государственного университета, а также от Национального научного фонда Graduate исследований Программа стипендий, награда номер 1607310.

Materials

LB Broth, Miller  Fisher Scientific 12-795-027
Agar Fisher Scientific BP9744500
Carbenicillin  Fisher Scientific BP26481
M9, Minimimal Salts, 5X Sigma-Aldrich M6030
Casamino Acids  Fisher Scientific BP1424-100
Magnesium Sulfate, Anhydrous Fisher Scientific M65-500
Calcium Chloride, Dihydrate Fisher Scientific C79-500
Dextrose (D-Glucose), Anhydrous Fisher Scientific D16-1
NEB Turbo Cell Line New England Biolabs C2984l
Oligonucleotide Primers Thermo Fisher Scientific N/A 25N synthesis, DSL purification
Q5 High-Fidelity Polymerase New England Biolabs M0491S
Q5 Reaction Buffer New England Biolabs B9027S
dNTP Solution Mix New England Biolabs N0447S
Agarose Bioexpress E-3120-125
Ethidium Bromide, 1% Fisher Scientific BP1302-10
Gel Extraction Kits Epoch Biolabs 2260250
GenCatch Plasmid DNA Miniprep Kit Epoch Biolabs 2160250
AatII New England Biolabs R0117S
SacII New England Biolabs R0157S
HindIII-HF New England Biolabs R3104S
EcoRI-HF New England Biolabs R3101S
Cutsmart Buffer New England Biolabs B7204S
T4 DNA Ligase New England Biolabs M0202S
T4 DNA Ligase Reaction Buffer New England Biolabs B0202S
ColiRolle Glass Plating Beads  EMD Millipore 7101-3
Glycerol Fisher Scientific BP229-1
Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) Fisher Scientific BP1755-10
NHS-Desthiobiotin (DTB) Thermo Fisher Scientific 16129
Succinimidyl Trans-4-(maleimidylmethyl) Cyclohexane-1-Carboxylate (SMCC)  Thermo Fisher Scientific S1534
Dimethyl Sulfoxide (DMSO)  Fisher Scientific BP231-100
Succinimidyl 3-(2-pyridyldithio) Propionate (SPDP)  Thermo Fisher Scientific S1531
NHS-LC-LC-biotin Thermo Fisher Scientific 21343
Horseradish Peroxidase (HRP)  Thermo Fisher Scientific 31490
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10X Solution Fisher Scientific BP399500
Streptavidin (SA)  Thermo Fisher Scientific 21145
Bovine Serum Albumin (BSA) Fisher Scientific BP1600-100
Dithiothreitol (DTT) Fisher Scientific BP172-5
Ethylenediaminetetaacetic acid (EDTA)  Fisher Scientific S311-500
Tween 80  Fisher Scientific T164-500
Hydrogen Peroxide Fisher Scientific H325-4
3, 3', 5, 5'-tetramethylbenzidine (TMB) Fisher Scientific AC229280050
Vivaspin 500 Centrifugal Concentrators  Viva Products VS0192
Sodium Acetate, Anhydrous Fisher Scientific BP333-500
96-Well Polystyrene Plates Thermo Fisher Scientific 266120

References

  1. Zhang, R., Heyde, K. C., Scott, F. Y., Paek, S. -. H., Ruder, W. C. Programming Surface Chemistry with Engineered Cells. ACS Synth. Biol. , (2016).
  2. Zhou, X., et al. Reduced graphene oxide films used as matrix of MALDI-TOF-MS for detection of octachlorodibenzo-p-dioxin. Chem. Commun. 46, 6974-6976 (2010).
  3. Pardee, K., et al. Low-Cost Detection of Zika Virus Using Programmable Biomolecular Components. Cell. 165, 1255-1266 (2016).
  4. Bähring, S., et al. Design and Sensing Properties of a Self-Assembled Supramolecular Oligomer. Chem. Eur. J. 22, 1958-1967 (2016).
  5. Nicolau Jr, D. V., Armitage, J. P., Maini, P. K. Directional persistence and the optimality of run-and-tumble chemotaxis. Comp. Biol. Chem. 33, 269-274 (2009).
  6. Du, J., Shao, Z., Zhao, H. Engineering microbial factories for synthesis of value-added products. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 38, 873-890 (2011).
  7. Kim, H., Kim, M. J. Electric Field Control of Bacteria-Powered Microrobots Using a Static Obstacle Avoidance Algorithm. IEEE Trans. Rob. 32, 125-137 (2016).
  8. Gardner, T. S., Cantor, C. R., Collins, J. J. Construction of a genetic toggle switch in Escherichia coli. Nature. 403, 339-342 (2000).
  9. Heyde, K. C., Ruder, W. C. Exploring Host-Microbiome Interactions using an in Silico Model of Biomimetic Robots and Engineered Living Cells. Sci. Rep. 5, 11988 (2015).
  10. Rice, M. K., Ruder, W. C. Creating biological nanomaterials using synthetic biology. Sci. Tech. Adv. Mater. 15, 014401 (2014).
  11. Green, N. M. Avidin. 3. The nature of the biotin-binding site. Biochem. J. 89, 599-609 (1963).
  12. Mesulam, M. M. Tetramethyl benzidine for horseradish peroxidase neurohistochemistry: a non-carcinogenic blue reaction product with superior sensitivity for visualizing neural afferents and efferents. J Histochem. Cytochem. 26, 106-117 (1978).
  13. Litcofsky, K. D., Afeyan, R. B., Krom, R. J., Khalil, A. S., Collins, J. J. Iterative plug-and-play methodology for constructing and modifying synthetic gene networks. Nat. Meth. 9, 1077-1080 (2012).
  14. Gibson, D. G., et al. Complete Chemical Synthesis, Assembly, and Cloning of a Mycoplasma genitalium Genome. Science. 319, 1215-1220 (2008).
  15. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clin. Chem. 37, 625-636 (1991).
  16. Nerurkar, L. S., Namba, M., Brashears, G., Jacob, A. J., Lee, Y. J., Sever, J., L, Rapid detection of herpes simplex virus in clinical specimens by use of capture biotin-streptavidin enzyme-linked immunosorbent assay. J. Clin. Micro. 20, 109-114 (1984).
  17. Cui, Y., Wei, Q., Park, H., Lieber, C. M. Nanowire Nanosensors for Highly Sensitive and Selective Detection of Biological and Chemical Species. Science. 293, 1289-1292 (2001).
check_url/55300?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Heyde, K. C., Scott, F. Y., Paek, S., Zhang, R., Ruder, W. C. Using Synthetic Biology to Engineer Living Cells That Interface with Programmable Materials. J. Vis. Exp. (121), e55300, doi:10.3791/55300 (2017).

View Video