Summary

Биолюминесценция Визуализация нейровоспаления у трансгенных мышей после инокуляции периферической альфа-синуклеина фибрилл

Published: April 13, 2017
doi:

Summary

Периферийные инъекции альфа-синуклеина фибрилл в брюшину или языком Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей, которые экспрессируют человеческий альфа-синуклеина с наследственной мутации A53T и люциферазы светлячка, может вызвать невропатологии, в том числе нейровоспаления , в их центральной нервной системе.

Abstract

Для изучения прионов, как поведение неправильно свернутых альфа-синуклеина, мышиные модели необходимы, что позволяет быстро и просто передавать альфа-синуклеина prionoids, которые вызывают невропатологии в пределах центральной нервной системы (ЦНС). Здесь мы описываем , что intraglossal или внутрибрюшинную инъекцию альфа-синуклеина фибрилл в bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей, которым гиперэкспрессией человеческий альфа-синуклеина с мутацией A53T от промотора прионного белка и люциферазы светлячка из промотор для глиальных фибриллярного кислого белка (GFAP), является достаточным , чтобы вызвать заболевание нейропатологического. По сравнению с гомозиготной Tg (M83 + / +) мышей , которые развиваются тяжелые неврологические симптомы , начиная в возрасте 8 месяцев, гетерозиготных Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) животные остаются свободными от спонтанного заболевания , пока они не достигнут возраст 22 месяцев. Интересно, что инъекция альфа-синуклеина фибрилл через intraperitoneаль маршрут индуцированное неврологическое заболевание с параличами в четырех из пяти Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей со средним временем инкубации 229 ± 17 дней. Пораженные животные показали серьезные отложения фосфорилированного альфа-синуклеина в мозге и спинном мозге. Скопление альфа-синуклеин было саркозили-нерастворимым и локализуется с убиквитиным и p62, и сопровождался воспалительной реакция, в результате чего астроцитов глиоза и microgliosis. Удивительно, но инокуляция альфа-синуклеина фибрилл в язык был менее эффективен в возникновении болезни только с одним из пяти инъецированных животных с альфа-синуклеина патологии после 285 дней. Наши результаты показывают , что прививка через intraglossal маршрута и тем более через внутрибрюшинно подходит для индукции неврологического заболевания с соответствующим клеймом синуклеинопатий в Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей. Это дает новую модель для изучения прионов-как патогенез индуцируютd с помощью альфа-синуклеина prionoids более подробно.

Introduction

Существует все больше доказательств того, что альфа-синуклеин имеет характеристики, которые аналогичны прионный белок, в частности, в его способности к самостоятельным семенам и распространяющихся неправильному фолдинг между клетками и вдоль нервными путями. Это свойство альфа-синуклеина также упоминается как «прионов типа» или «prionoid», и подтверждается наблюдениями в трансплантации экспериментов, которые предполагают трансмиссивности неправильно свернутых альфа-синуклеина из пораженных нейронов вновь пересаженные здоровые нейроны 1, 2 , 3, 4. Кроме того, прямая инъекция альфа-неправильно свернутых синуклеина в мозг или на периферии, например, мышцы задних конечностей или кишечной стенки, приводит к распространению альфа-синуклеина патологии в дистальных отделах ЦНС 5, 6, 7, <SUP класс = "Xref"> 8, 9, 10. Мы проанализировали передачу альфа-синуклеина prionoids через периферийных маршрутов более подробно рассмотрены на вопрос, может ли неправильно уложенный альфа-синуклеина neuroinvade ЦНС после однократного intraglossal или внутрибрюшинного введения, функцию, которая ранее была показана для прионов, но не для неправильно свернутых альфа- синуклеин. После инъекции прионов в язык, neuroinvasion ЦНС достигается с помощью распространения вдоль подъязычного нерва языка , что приводит к ядру подъязычного нерва, который расположен в стволе головного мозга 11. В мышиной модели мы выбрали Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей , которые сверхэкспрессируют A53T мутант человеческого альфа-синуклеина от промотора приона и люциферазы светлячка под контролем промотора GFAP астроцитов , чтобы контролировать активацию биолюминесценции, как ранее показано, в головном мозгеприон-инфицированных мышей 12. В наших руках bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей не развивается болезнь до 23 месяцев , как было показано , другие 13. Однократное введение альфа-синуклеина фибрилл человека через intraglossal или внутрибрюшинно индуцированных заболеваний неврологического с патологией в головном мозге и спинном мозге Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей , поддерживающих гипотезу о том, что альфа-синуклеина prionoids делиться важными характеристиками с прионов 14.

Protocol

Все процедуры, включая животных, были проведены с одобрения комитета защиты животных Северного Рейна-Вестфалии Государственного агентства по окружающей среде (LANUV). Животных содержали и уход в соответствии со стандартными условиями с 12 ч цикл свет / темнота и свободный доступ к пище и в…

Representative Results

Периферийные инъекции альфа-синуклеина prionoids с помощью языка или брюшины индуцированной невропатологии в ЦНС bigenic Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей (таблица 1 и рисунок 1). После однократного внутрибрюшинного введения с альфа-синуклеина фибрилл, …

Discussion

Периферийные инъекции альфа-синуклеина фибрилл в брюшину Tg (M83 +/-: GFAP -luc +/-) мышей представляет собой метод , легкое , чтобы вызвать неврологическое заболевание , сопровождающееся нейровоспаления резюмировать важные характеристики синуклеинопатий. Аналогичным образом, …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарят Ольгу Шарма, Тереса Хандт, и персонал микроскопии и животных объектов DZNE для технической поддержки.

Materials

anti-actin antibody Merck Millipore MAB1501
anti-alpha-synuclein, phospho S129 antibody [pSyn#64] Wako 015-25191
anti-alpha-synuclein, phospho S129 antibody [EP1536Y] Abcam ab51253
anti-GFAP antibody Dako Z0334 01
anti-IBA-1 antibody Wako 019-19741
anti-Sequestosome-1 (p62) antibody Proteintech 18420-1-AP
anti-ubiquitin antibody [Ubi-1] Merck Millipore MAB1510
Phosphate-buffered saline (PBS) Invitrogen 14190169
Ketamine  Ratiopharm 100 mg/kg
Xylazine Ratiopharm 10 mg/kg
27-gauge syringe VWR 613-4900
Isoflurane  Piramal Healthcare PZN  4831850
Depilatory cream Veet
Secureline lab marker  Neolab 25040
D-luciferin potassium salt Acris LK10000 30 mg/mL stock solution
Thermomixer Eppendorf 5776671
Sonopuls Mini20 sonicator Bandelin 3648
IVIS Lumina II imaging system PerkinElmer
Living Image 3.0 Software PerkinElmer
Tg(M83+/-) mice or B6;C3-Tg(Prnp-SNCA*A53T)83Vle/J mice The Jackson Laboratory 004479
Standard pattern forceps Fine Science Tools 11000-16
Narrow pattern forceps Fine Science Tools 11002-12
N-laurylasarcosyl Sigma L5125-100G
Optima Max-XP ultracentrifuge  Beckman Coulter TLA-110 rotor 
Thickwall polycarbonate tubes Beckman Coulter 362305
NuPAG Novex 4-12% Bis-Tris Midi Protein Gels Thermo Fisher Scientific WG1401BOX
HRP conjugated antibody Cayman Cay10004301-1
IR Dye 680 conjugated antibody  LI-COR Biosciences 926-68070
SuperSignal West Dura Extended Duration Substrate Thermo Fisher Scientific 34075
Stella 3200 imaging system Raytest
Odyssey infrared imaging system  LI-COR Biosciences
Tween 20  MP Biomedicals TWEEN201
Triton X-100 Sigma SA/T8787
Immobilon-FL PVDF membrane Merck Millipore IPFL00010
Xylol Sigma Roth
Hydrogen peroxide Sigma SA/00216763/000500 working solution 3%
Bovine serum albumine (BSA)  Thermo Fisher Scientific A3294-100G
Goat serum Thermo Fisher Scientific PCN5000
4,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Thermo Fisher Scientific D1306 working dilution 1:50,000
Fluoromount media  Omnilab SA/F4680/000025
LSM700 confocal laser scanning microscope Carl Zeiss
HALT protease and phosphatase inhibitors Thermo Fisher Scientific  10516495
Precellys 24-Dual homogenizer  Peqlab 91-PCS24D
Alexa Fluor 488 conjugated antibody Thermo Fisher Scientific A31619
Alexa Fluor 594 conjugated antibody Thermo Fisher Scientific A11005
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific 10741395
Microtome RM2255 Leica
LSM700 confocal laser scanning microscope Carl Zeiss

References

  1. Aguzzi, A. Cell biology: Beyond the prion principle. Nature. 459 (7249), 924-925 (2009).
  2. Kordower, J. H., Chu, Y., Hauser, R. A., Freeman, T. B., Olanow, C. W. Lewy body-like pathology in long-term embryonic nigral transplants in Parkinson’s disease. Nat Med. 14 (5), 504-506 (2008).
  3. Li, J. Y., et al. Lewy bodies in grafted neurons in subjects with Parkinson’s disease suggest host-to-graft disease propagation. Nat Med. 14 (5), 501-503 (2008).
  4. Hansen, C., et al. alpha-Synuclein propagates from mouse brain to grafted dopaminergic neurons and seeds aggregation in cultured human cells. J Clin Invest. 121 (2), 715-725 (2011).
  5. Masuda-Suzukake, M., et al. Prion-like spreading of pathological alpha-synuclein in brain. Brain. 136 (4), 1128-1138 (2013).
  6. Holmqvist, S., et al. Direct evidence of Parkinson pathology spread from the gastrointestinal tract to the brain in rats. Acta Neuropathol. 128 (6), 805-820 (2014).
  7. Luk, K. C., et al. Pathological alpha-synuclein transmission initiates Parkinson-like neurodegeneration in nontransgenic mice. Science. 338 (6109), 949-953 (2012).
  8. Sacino, A. N., et al. Induction of CNS alpha-synuclein pathology by fibrillar and non-amyloidogenic recombinant alpha-synuclein. Acta Neuropathol Commun. 1, 38 (2013).
  9. Sacino, A. N., et al. Intramuscular injection of alpha-synuclein induces CNS alpha-synuclein pathology and a rapid-onset motor phenotype in transgenic mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (29), 10732-10737 (2014).
  10. Mougenot, A. L., et al. Prion-like acceleration of a synucleinopathy in a transgenic mouse model. Neurobiol Aging. 33 (9), 2225-2228 (2012).
  11. Bartz, J. C., Kincaid, A. E., Bessen, R. A. Rapid prion neuroinvasion following tongue infection. J Virol. 77 (1), 583-591 (2003).
  12. Tamgüney, G., et al. Measuring prions by bioluminescence imaging. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (35), 15002-15006 (2009).
  13. Watts, J. C., et al. Transmission of multiple system atrophy prions to transgenic mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (48), 19555-19560 (2013).
  14. Breid, S., et al. Neuroinvasion of alpha-Synuclein Prionoids after Intraperitoneal and Intraglossal Inoculation. J Virol. 90 (20), 9182-9193 (2016).
  15. Giasson, B. I., et al. Neuronal alpha-synucleinopathy with severe movement disorder in mice expressing A53T human alpha-synuclein. Neuron. 34 (4), 521-533 (2002).
  16. Zhu, L., et al. Non-invasive imaging of GFAP expression after neuronal damage in mice. Neurosci Lett. 367 (2), 210-212 (2004).
  17. Bernis, M. E., et al. Prion-like propagation of human brain-derived alpha-synuclein in transgenic mice expressing human wild-type alpha-synuclein. Acta Neuropathol Commun. 3 (1), 75 (2015).
  18. Gunther, R., et al. Clinical testing and spinal cord removal in a mouse model for amyotrophic lateral sclerosis (ALS). J Vis Exp. (61), (2012).
  19. Jackson-Lewis, V., Przedborski, S. Protocol for the MPTP mouse model of Parkinson’s disease. Nat Protoc. 2 (1), 141-151 (2007).
  20. Mathews, S. T., Plaisance, E. P., Kim, T. Imaging systems for westerns: chemiluminescence vs. infrared detection. Methods Mol Biol. 536, 499-513 (2009).
  21. Kim, C., et al. Exposure to bacterial endotoxin generates a distinct strain of alpha-synuclein fibril. Sci Rep. 6, 30891 (2016).
  22. Keller, A. F., Gravel, M., Kriz, J. Live imaging of amyotrophic lateral sclerosis pathogenesis: disease onset is characterized by marked induction of GFAP in Schwann cells. Glia. 57 (10), 1130-1142 (2009).
  23. Stöhr, J., et al. Distinct synthetic Abeta prion strains producing different amyloid deposits in bigenic mice. Proc Natl Acad Sci U S A. , (2014).
  24. Luk, K. C., et al. Intracerebral inoculation of pathological alpha-synuclein initiates a rapidly progressive neurodegenerative alpha-synucleinopathy in mice. J Exp Med. 209 (5), 975-986 (2012).
  25. Recasens, A., et al. Lewy body extracts from Parkinson disease brains trigger alpha-synuclein pathology and neurodegeneration in mice and monkeys. Ann Neurol. 75 (3), 351-362 (2014).
  26. Sacino, A. N., et al. Induction of CNS alpha-synuclein pathology by fibrillar and non-amyloidogenic recombinant alpha-synuclein. Acta Neuropathol Commun. 1 (1), 38 (2013).
  27. Peelaerts, W., et al. alpha-Synuclein strains cause distinct synucleinopathies after local and systemic administration. Nature. 522 (7556), 340-344 (2015).

Play Video

Cite This Article
Breid, S., Bernis, M. E., Tachu, J. B., Garza, M. C., Wille, H., Tamgüney, G. Bioluminescence Imaging of Neuroinflammation in Transgenic Mice After Peripheral Inoculation of Alpha-Synuclein Fibrils. J. Vis. Exp. (122), e55503, doi:10.3791/55503 (2017).

View Video