Summary

madSTORMを用いたT細胞の高度に多重化された超解像イメージング

Published: June 24, 2017
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Summary

我々は、蛍光標識された抗体の逐次結合および溶出を用いて、単一分子精度で異種ナノ構造内の複数の分子をイメージングする方法を実証する。

Abstract

単一分子局在化顕微鏡法を用いた画像化異種細胞構造は、不適切な局在精度および多重化能力によって妨げられている。蛍光ナノダイヤモンド基準マーカーを使用して、単一分子局在化顕微鏡法で高精度を得るために必要なドリフト補正およびアライメント手順を説明する。さらに、蛍光抗体の逐次結合および溶出を用いて複数の分子が同じ細胞内で標的化される新しい多重化戦略madSTORMが記載されている。 madSTORMは、T細胞受容体マイクロクラスターと呼ばれる膜結合多タンパク質構造内の異なる成分の位置を視覚化するために、活性化されたT細胞上で実証される。さらに、madSTORMのマルチタンパク質構造の可視化のための一般的なツールとしての応用について議論する。

Introduction

光学顕微鏡の回折限界(約200nm)を克服するために、様々な超解像顕微鏡技術が開発されている。これらの中には、光活性化局在顕微鏡法(PALM)および確率的光学再構成顕微鏡法(STORM)を含む単一分子局在化顕微鏡(SMLM)と呼ばれる技術のカテゴリーがある。 SMLM技術は、オン(蛍光)状態とオフ(ダーク/光スイッチ)状態との間で切り替えることができるフルオロフォアの使用を共有し、単一分子1,2,3からの蛍光の連続的な局在化を可能にする。

市販の染料や顕微鏡との互換性のため、直接STORM(dSTORM)は広く採用されたSMLM技術となっています4 。 dSTORMは、回折線の中心を計算する際の不確かさとして定義される、約10nmの定位精度を日常的に達成することができるイオン制限点広がり関数(PSF)。しかしながら、局在化アルゴリズム5,6,7を用いて推定された高い精度にもかかわらず、単一分子の実際の位置の正確な決定は、多くの問題によって妨げられてきた。第1に、画像取得中の顕微鏡ステージの機械的移動は、位置特定精度に重大な不確実性を加える。 SMLM画像が何千ものタイムラプスフレームにわたって得られるので、顕微鏡ステージのナノスケールの動きは、最終的な超解像画像8の精度を著しく損なう可能性がある。画像取得中のステージの動きを補償するために、ステージドリフトは、画像自体からのビニングされたローカライゼーションの回帰ベースのフィッティング(相互相関)または基準マーカからの連続的なローカライゼーション(基準補正)1,9から一般的に推定される。ハウヴェこれらの方法は、各画像スタックに対して複数のパラメータの最適化を必要とし、機械的振動などの短い時間スケールでステージの動きを説明することができない。金ナノ粒子と多色蛍光ビーズは、SMLMの基準マーカーとして使用されてきましたが、光安定性ではなく、ドリフト補正後に使用された窒素空孔中心蛍光ナノダイヤモンド(FND) madSTORM 10で

回折限界に加えて、光学顕微鏡法はスペクトル限界によってさらに制限される。複数のターゲットを同時に視覚化するには、重複しないスペクトルプロファイルを有する蛍光プローブが必要であり、一般に、蛍光ベースの光学顕微鏡法を6色に、SMLMを2-3色にそれぞれ制限する(4,11,12)。さらに、非線形色収差は、多色画像の不整合を引き起こし、w多色の基準マーカー8,13を用いて広範囲のアライメント手順を必要とする。これらの限界を克服するために、以前の研究では、連続的に結合した蛍光体14,15,16,17,18,19の繰り返しの光退色または化学的消光を用いて複数の標的を画像化した。これらの方法は顕微鏡法のスペクトル限界を克服することができるが、蛍光漂白は有毒なプロセス20であることが知られており、漂白または消光の長期化は架橋の損失などの望ましくない副作用を引き起こす可能性がある。さらに、蛍光プローブの蓄積は、試料中の結合部位の立体的なブロッキングをもたらし、エピトープの大規模な多重化および頑強な標的化を妨げる可能性がある。このような立体的な干渉を避けるために、自由に拡散するタンパク質断片の確率的交換を用いて多重化を達成した21 。この方法は細胞構造の高密度標識化を可能にするが、ペプチド断片を単離するための広範な生化学的調製を必要とし、単一分子位置を特定することができず、市販のプローブを用いた大規模多重化を容易に促進しない。我々は、多重化、抗体サイズ限定dSTORM(madSTORM)イメージング、および正確なドリフト補正およびアライメントを達成するための蛍光ナノダイヤモンドの使用のための蛍光抗体の順次結合および溶出を記載する詳細なビデオプロトコルを提示する。

Protocol

注意:使用前に関連するすべての物質安全性データシート(MSDS)を参照してください。このプロトコルで使用される化学物質のいくつかは有毒で発癌性があります。エンジニアリングコントロール(ヒュームフード、グローブボックス)および個人用保護具(安全眼鏡、手袋、ラボコート、全長ズボン、クローズトゥーシューズ)の使用を含む、プロトコールを実行する際は、適切なすべて…

Representative Results

連続的な溶出および染色法を使用して、活性化されたJurkat T細胞( 図1 、検査図のアライメント)におけるマイクロクラスターおよび他の構造の多重化madSTORM画像を作製した。各疑似カラー画像は、ステップ1.1.1〜1.3.13で取得したmadSTORM画像の1ラウンドを表します。前に説明したように、多重標的間のクロストークを避けるために、視野は前の溶?…

Discussion

madSTORMのシーケンシャルマルチプレックス、ドリフト補正、アラインメントの手順により、細胞内の異種構造の正確かつ高度に多重化された可視化が可能になります。さらに、madSTORMは、非遠赤色色素9,12の色収差や準最適な光スイッチング/発光特性など、多色STORMの制限を回避します。溶出工程が逐次的に結合した抗体からの立体障害を有意に減少させるので、madSTORMを使用して、従来の技?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我々はSTORM顕微鏡へのアクセスのためにXufeng Wuに感謝します。この研究は、国立がん研究所(NCI)がん研究センターと国立心臓肺血液研究所(NHLBI)の教室内研究プログラムによって支援されました。

Materials

8 well coverslip chamber Lab-tek 155409
0.1% Poly-L-Lysine solution Sigma-Aldrich P8920
NV-100nm Fluorescent Nano-diamond Adamas Red FND
anti-CD3ε antibody BD Biosciences 555329
Bovine serum albumin, Fraction V KSE Scientific 98-100P
Triton-X Sigma-Aldrich T9284
10% Paraformaldehyde EMS 15712 Carcinogen
Gelatin from fresh water fish skin Sigma-Aldrich G7041
Alexa 647 antibody labeling kit Thermo Fisher A20186
Magnesium Chloride hexahydrate Sigma-Aldrich 138924
PIPES Sigma-Aldrich P6757
Tween-20 Fisher Scientific BP337-500
2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M7154 Highly toxic, air sensitive
Cysteamine Sigma-Aldrich 30070 Highly toxic 
Cyclooctatetraene 98% Sigma-Aldrich 138924 Highly toxic, air sensitive
10x PBS KD Medical RGF-3210
10x TBS KD Medical RGF-3385

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Yi, J., Manna, A., Barr, V. A., Hong, J., Neuman, K. C., Samelson, L. E. Highly Multiplexed, Super-resolution Imaging of T Cells Using madSTORM. J. Vis. Exp. (124), e55997, doi:10.3791/55997 (2017).

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