Summary

الحمض النووي تلطيخ الأسلوب استناداً إلى هطول الأمطار Formazan الناجمة عن التعرض للضوء الأزرق

Published: January 28, 2018
doi:

Summary

يسمح هذا الأسلوب تلطيخ انتقائية والتقدير الكمي للدنا في المواد الهلامية بامتصاص الجل في “أخضر سيبر” أنا/الحل “نيترو تيترازوليوم الأزرق” وثم يعرضها لأشعة الشمس أو مصدر ضوء أزرق. وهذا ينتج من ترسبات مرئية وتتطلب تقريبا أي معدات، مما يجعله مثاليا للاستخدام الميداني.

Abstract

أساليب المصبوغة الحمض النووي مهمة جداً للبحوث الطبية الحيوية. لقد قمنا بتصميم أسلوب بسيط يسمح التصور الحمض النووي للعين المجردة بتشكيل ترسبات الملونة. أنه يعمل من خلال نقع الاكريلاميد أو الحمض النووي [اغروس] هلام في حل من 1 x (أي ما يعادل 2، 0 ميكرومتر) الأخضر سيبر أنا (SG أنا) و 0.20 ملم نيترو الأزرق تيترازوليوم التي تنتج أرجواني يعجل من فورمازان عند التعرض لأشعة الشمس أو الضوء الأزرق على وجه التحديد. أيضا، أجريت اختبارات الحمض النووي لاسترداد باستخدام بلازميد مقاومة الأمبيسلّين في [اغروس] هلام ملطخة باسلوبنا. تم الحصول على عدد أكبر من المستعمرات باسلوبنا من تقليدية تلطيخ استخدام SG أنا مع إضاءة الأشعة فوق البنفسجية. وصف طريقة سريعة ومحددة، وغير سامة للكشف عن الحمض النووي، مما يسمح التصور الجزيئات الحيوية إلى “العين المجردة” دون ترانسيلوميناتور، وغير مكلفة وملائمة للاستخدام الميداني. ولهذه الأسباب، قد الحمض جديدة تلوين الأسلوب الفوائد المحتملة للبحوث والصناعة.

Introduction

مع التقدم في مجال الكيمياء الحيوية والبيولوجيا الجزيئية، الدراسات المتعلقة بالحمض النووي قد يتطلب تقنيات أفضل لتحليل الحمض النووي. الطريقة الأولى لتلطيخ الحمض النووي الفضة تلطيخ، وهي حساسة للغاية ولكن تفتقر إلى الانتقائية ولا يسمح باسترداد عينة. في وقت لاحق، يسمح تطوير تلطيخ DNA الفلورسنت انتقائية التحديد الكمي للحمض النووي مع إمكانية استرداد عينة. كان أحد الأصباغ الفلورية الأولى المستخدمة لتقدير حجم الحمض النووي اثيديوم بروميد1، وهي مطفرة2. ومع ذلك، والآن هناك صبغات الفلورسنت المحسنة التي أكثر أماناً وأكثر حساسية، مثل جيلريد والأخضر سيبر أنا (SG أنا)3؛ ولكن كل هذه الأصباغ الفلورية تتطلب استخدام الأشعة فوق البنفسجية (الأشعة فوق البنفسجية) ترانسيلوميناتور أو فلوريميتير.

وهناك تقنيات أخرى لتلطيخ واضح الحمض النووي، مثل الميثيلين الأزرق4 والكريستال البنفسجي5،،من67،،من89، ولكن كل هذه تعاني من انخفاض حساسية و الانتقائية. أملاح تيترازوليوم مركبات عضوية قابلة للتخفيض، وعندما يحدث هذا فإنها تشكل غير قابلة للذوبان ويعجل formazan الملونة10،11. في الآونة الأخيرة، أظهرت بعض الأملاح tetrazolium الثنائي التكافؤ لربط الحمض النووي بسبب تلك الحلقات tetrazolium إيجابية12.

في منشور مؤخرا13، اقترح تقنية مرئية جديدة لوصمة عار وتحديدها كمياً الحمض النووي في الهلام بولياكريلاميدي، استخدام الحد من الملح tetrazolium الثنائي التكافؤ يسمى tetrazolium نيترو الأزرق (NBT)، والأصباغ الفلورية مثل اثيديوم بروميد، جيلريد، سيبر الأخضر الأول والذهب سيبر. رد الفعل هذا عملت بحضور الضوء الأزرق أو أشعة الشمس، ويسمح باسترداد عينة مع تحسين نوعية مقارنة باستعمال SG أنا مع ترانسيلوميناتور الأشعة فوق البنفسجية. والهدف من هذه الورقة هو تقديم بروتوكول مفصل لتقنية المصبوغة باستخدام تيترازوليوم الأملاح.

Protocol

1-إعداد وتشغيل هلام إعداد غير يشوه 12% هلام polyacrylamide المواد الهلامية استخدام الوصفة الصوديوم دوديسيل كبريتات-Polyacrylamide “هلام التفريد” (الحزب الديمقراطي الصربي صفحة) وجدت في سامبروك وراسل14 ولكن باستخدام المياه بدلاً من الحزب الديمقراطي الصربي. إعداد 5 مل من حل جل، استخدام…

Representative Results

يظهر ترسبات formazan أرجواني حيث يوجد الحمض النووي (التحقق من الطيف الكتلي13). في هذه التجربة، تم تحميل سلم الحمض النووي لجعل منحنى معايرة (الشكل 3). يعمل البروتوكول للهلام الاكريلاميد و [اغروس]، لكنها كثافة أقل ويأخذ وقتاً أطول في [اغروس]. ومع ذلك، ي…

Discussion

الحساسة، ورواية استناداً الحمض النووي تلطيخ أسلوب الحد NBT واستخدام سان جرمان قد عرضت في هذا المقال. والخطوة الحاسمة في هذا البروتوكول هي المرة الحضانة من الجل في NBT-سان جرمان أنا الحل وتركيز NBT. لقد حان وقت المصبوغة الجل [اغروس] أطول للمواد الهلامية الاكريلاميد بسبب زيادة سمك الهلام [اغروس]. …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

هذا العمل كان يدعمها فوندو ناسيونال de Desarrollo Científico y تكنولوجيا البحار (التمويلية)، شيلي، 11130263 المشروع (للأسلحة الكيميائية)، ومشروع اللجنة + الأدنى + دي Programa Colaboración انترناسيونال PCI-PII20150073 (للأسلحة الكيميائية) ويو-إينيسيا من دي Vicerrectoría بحوث جامعة شيلي (للأسلحة الكيميائية).

شكرا على تاتيانا نارانخو-بالما للمساعدة في المرحلة الأولى من هذا المشروع، الدكتور خورخي بابول وروجيه كيروغا دييغو للمناقشة مفيدة، وروبرت ليش لتنقيح المخطوط والمديرية de extensión de la كلية دي y Químicas العلوم العامة من جامعة شيلي. شكرا جداً لبيريز مارسيلو لتحرير الفيديو ونيل ستيفنز لتصحيح النص وواطسون إيرول لتوفير الإدخال الصوتي.

Materials

Nitro blue tetrazolium Gold Biotechnology 298-83-9 reagent used in the staining
SYBR Green I 10000X Thermo-Fisher S7563 reagent used in the staining
Gel extraction kit QIAGEN 28704 used to extract plasmid from the gel in integrity assay
DNA ladder Thermo-Fisher SM 1331 used to make calibration curves and as reference to cut band in integrity assay
Agar Agar Merck used to make LB-ampicillin culture plates 
sodium chloride Merck 1064045000 used to make LB-ampicillin culture plates 
yeast extract Becton, Dickinson and Company 212750 used to make LB-ampicillin culture plates 
peptone Merck 72161000 used to make LB-ampicillin culture plates 
TEMED AMRESCO 761 used to make polyacrylamide gels
ammonium persulfate Calbiochem 2310 used to make polyacrylamide gels
acrylamide invitrogen 15512-023 used to make polyacrylamide gels
bisacrylamide SIGMA 146072 used to make polyacrylamide gels
Tris-base Merck 1083821000 used to make TAE buffer and non-denaturing polyacrylamide gel tris-HCl buffer
EDTA J.T. Baker 8993-01 used to make TAE buffer
Acetic acid Merck 1,000,632,500 used to make TAE buffer
agarose Merck 16802 used to make TAE buffer
spectrophotometer Tecan infinite 200 pro used to quantify DNA plasmid
water purificatiom unit Merck Elix 100 use to make water type 1 (ASTM) used in spectrophotometry and DNA dilutions
distilled water used in gels, culture medium, stainings and general solutions
HCl J.T. Baker 9535-03 used to make non-denaturing polyacrylamide gel tris-HCl buffer
6X DNA loading dye Thermo-Fisher R0610
5 mm Blue LED Jinyuan electronics SP-021 light source used in integrity assay
protoboard KANDH KH102 light source support and circuit 
9 V battery Duracell used to power the LED's
horizontal electrophoresis chamber Biorad 1704486EDU used to make and run agarose gel in integrity assay
vertical electrophoresis kit Biorad 1658002EDU used to run polyacrylamide gels in calibration curves
power supply Biorad 1645050  used to power the electrophoresis

References

  1. LePecq, J. B., Paoletti, C. A fluorescent complex between ethidium bromide and nucleic acids: physical-chemical characterization. J. Mol. Biol. 27 (1), 87-106 (1967).
  2. Singer, V. L., Lawlor, T. E., Yue, S. Comparison of SYBR Green I nucleic acid gel stain mutagenicity and ethidium bromide mutagenicity in the Salmonella/mammalian microsome reverse mutation assay (Ames test). Mutat Res. 439 (1), 37-47 (1999).
  3. Xin, X., Yue, S., Wells, K. S., Singer, V. L. SYBR Green-I: a new fluorescent dye optimized for detection picogram amounts of DNA in gels. Biophys. J. 66 (A150), (1994).
  4. Flores, N., Valle, F., Bolivar, F., Merino, E. Recovery of DNA from agarose gels stained with methylene blue. Biotechniques. 13 (2), 203-205 (1992).
  5. Yang, Y. I., Jung, D. W., Bai, D. G., Yoo, G. S., Choi, J. K. Counterion-dye staining method for DNA in agarose gels using crystal violet and methyl orange. Electrophoresis. 22 (5), 855-859 (2001).
  6. Yang, Y. I., et al. Detection of DNA using a visible dye, Nile blue, in electrophoresed gels. Anal. Biochem. 280 (2), 322-324 (2000).
  7. Santillán-Torres, J. L. A novel stain for DNA in agarose gels. Trends Genet. 9 (2), 40 (1993).
  8. Adkins, S., Burmeister, M. Visualization of DNA in agarose gels as migrating colored bands: applications for preparative gels and educational demonstrations. Anal. Biochem. 240 (1), 17-23 (1996).
  9. Cong, W. T., et al. A visible dye-based staining method for DNA in polyacrylamide gels by ethyl violet. Anal. Biochem. 402 (1), 99-101 (2010).
  10. Altman, F. P. Tetrazolium salts and formazans. Prog. Histochem. Cytochem. 9 (3), 1-56 (1976).
  11. Nineham, A. W. The chemistry of formazans and tetrazolium salts. Chem. Rev. 55 (2), 355-483 (1955).
  12. Crandall, I. E., Zhao, B., Vlahakis, J. Z., Szarek, W. A. The interaction of imidazole-, imidazolium, and tetrazolium-containing compounds with DNA. Bioorg. Med. Chem. Lett. 23 (5), 1522-1528 (2013).
  13. Paredes, A. J., et al. New visible and selective DNA staining method in gels with tetrazolium salts. Anal. Biochem. 517, 31-35 (2017).
  14. Green, M. R., Sambrook, J. . Molecular Cloning: a Laboratory Manual. , (2012).
  15. Hansen, W., Garcia, P. D., Walter, P. In vitro protein translocation across the yeast endoplasmic reticulum: ATP-dependent post-translational translocation of the prepro-α-factor. Cell. 45 (3), 397-406 (1986).
  16. Inoue, H., Nojima, H., Okayama, H. High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids. Gene. 96 (1), 23-28 (1990).
  17. Madigan, M., Martinko, J., Parker, J. . Brock biology of microorganisms. , (2003).
check_url/kr/56528?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Paredes, A. J., Alfaro-Valdés, H. M., Wilson, C. A. DNA Staining Method Based on Formazan Precipitation Induced by Blue Light Exposure. J. Vis. Exp. (131), e56528, doi:10.3791/56528 (2018).

View Video