Summary

Analyse av kreft cellen invasjon og anti-metastatisk narkotikarelaterte Screening bruker Hydrogel mikro-kammer Array (HMCA)-baserte plater

Published: October 25, 2018
doi:

Summary

En HMCA-basert bildebehandling plate er presentert for invasjonen analysen ytelse. Denne platen forenkler dannelsen av tredimensjonale (3D) svulst spheroids og måling av kreft cellen invasjonen i den ekstracellulære matrisen (EFM). Invasjonen analysen kvantifiseringen oppnås ved halvautomatisk analyse.

Abstract

Kreft metastasering er kjent at 90% av kreft dødelighet. Metastasering er en flertrinns prosess som starter med penetrasjon/invasjonen av svulst cellene i nærliggende vev. Dermed er invasjonen et viktig skritt i metastasering, gjør invasjonen prosess forskning og utvikling av anti-metastatisk narkotika, stor betydning. For å møte denne etterspørselen, det er behov for å utvikle 3D i vitro modeller som imiterer arkitektur solide svulster og deres microenvironment nærmest til i vivo tilstand på den ene siden, men samtidig være reproduserbare, robust og egnet for høy kapasitet og høy innhold målinger. Foreløpig mest invasjonen analyser lene på sofistikerte microfluidic teknologi som er tilstrekkelig for forskning, men ikke for høyt volum narkotikarelaterte screening. Andre analyser plate-baserte enheter med isolerte individuelle spheroids i hver brønn er materiale forbruker og har lav utvalgsstørrelsen per betingelse. Målet med gjeldende protokollen er å gi en enkel og reproduserbar biomimetic 3D cellen-basert system for analyse av invasjonen kapasitet i store populasjoner av svulst spheroids. Vi utviklet en 3D-modell for invasjonen analysen basert på HMCA tenkelig plate til forskning av svulst invasjon og anti-metastatisk medisiner. Denne enheten kan mange uniform spheroids per brønn (høy utvalgsstørrelsen per betingelse) omgitt av ECM komponenter, mens kontinuerlig og samtidig observere og måle spheroids på ett element oppløsning for middels gjennomstrømming screening av anti-metastatisk narkotika. Denne plattformen er presentert her av produksjonen av HeLa og MCF7 spheroids for exemplifying enkelt celle og kollektive invasjonen. Vi sammenligne påvirkning av ECM komponent hyaluronic syre (HA) på invasiv kapasiteten av kollagen rundt HeLa spheroids. Til slutt, vi introdusere Fisetin (invasjonen hemmer) HeLa spheroids og nitrogenoksid (ingen) (invasjonen Aktivator) til MCF7 spheroids. Resultatene analyseres av Husets programvare som gjør halvautomatisk, enkel og rask analyse som gjør flere parameter eksamen.

Introduction

Døden skyldes hovedsakelig til formidling av metastatisk celler til fjerntliggende steder. Mange anstrengelser i kreftbehandling fokusere på målretting eller hindre dannelsen av metastatisk kolonier og progresjon av systemisk metastaser1. Kreft celle migrasjon er et viktig skritt i svulst metastasering prosessen, dermed forskning kreft invasjonen cascade er svært viktig og en forutsetning for å finne anti-metastatisk therapeutics.

Bruk av dyr modeller som verktøy for å studere metastatisk sykdom har blitt funnet for å være svært dyrt og ikke alltid representative for svulst i mennesker. Videre er påvirke den ekstracellulære microenvironment topologi, mekanikk og komposisjon sterkt kreft cellen oppførsel2. Siden i vivo modeller iboende mangel evnen å skille og kontrollere slike spesifikke parametere som bidrar til kreft invasjon og metastasering, er det behov for kontrollerbar biomimetic i vitro modeller.

For å kunne metastase å fjerne organer, må kreftceller utstilling vandrende og invasive fenotypiske trekk som kan målrettes for terapi. Men siden de fleste i vitro kreft modeller ikke etterligne faktiske funksjonene i solide svulster3, er det svært utfordrende å oppdage fysiologisk relevante fenotyper. I tillegg dikterer til fenotypiske heterogene som finnes i svulsten, behovet for å analysere svulst overføring på ett element oppløsning for å oppdage fenotypen rettet behandlinger, for eksempel ved å målrette metastasering-starte cellen befolkningen i heterogene svulster4.

Studiet av cellen motilitet og kollektiv migrasjon gjennomføres hovedsakelig monolayer kulturer av epitelceller på homogen Plane overflater. Disse konvensjonelle mobilnettet modeller for kreft celle migrasjon er basert på befolkningen analyse av enkeltceller invadere gjennom membraner og ECM komponenter5, men i slike systemer, iboende forskjellene mellom individuelle celler ikke studerte. Genererer 3D spheroids via stillaser eller stillaset uten mikro-strukturer er regnet som en overlegen betyr å studere svulst celle vekst og kreft invasjonen6,7,8. Men mest 3D systemer er ikke egnet til høy gjennomstrømning formater, og mellom spheroid interaksjon vanligvis oppnås ikke siden isolerte individuelle spheroids genereres i hver mikro-og9. Studier med kreft overføringen er basert på microfluidic enheter3,10,11,12, men disse sofistikerte microfluidic verktøy er vanskelig å produsere og ikke kan brukes for høy gjennomstrømning screening (HTS) av anti-invasiv narkotika.

To viktigste fenotyper, kollektive og individuelle celle migrasjon, som spiller en rolle i kreftceller overvinne ECM barrieren og invadere nærliggende vev, har blitt demonstrert13,14, hver viser atskilte morfologiske egenskaper, biokjemiske, molekylære og genetiske mekanismer. I tillegg er to former for overføring kreftceller, fibroblast-like og amoeboid, observert i hver fenotypen. Siden både invasjonen fenotyper og migrasjon moduser, defineres hovedsakelig av morfologiske egenskaper, det er behov for mobilnettet modeller som aktiverer imaging-basert oppdagelsen og undersøkelse av alle former for svulst invasjon og migrere celler.

Det overordnede målet med det aktuelle metoden er å gi en enkel og reproduserbar biomimetic 3D i vitro cellen-basert system for analyse av invasjonen kapasitet i store populasjoner av svulst spheroids. Her introduserer vi HMCA-baserte 6-og bildebehandling platen til forskning av svulst invasjon og anti-metastatisk terapi. Teknologien gjør det mulig for dannelsen av et stort antall uniform 3D svulst spheroids (450 per brønn) i en hydrogel mikro-kammer (MC) struktur. Ulike ECM-komponenter er lagt til spheroid matrisen aktivere invasjonen av cellene i omgivelsene. Invasjonen er kontinuerlig overvåket av kort – og langsiktige observasjon av samme personlige spheroids/invadere celler og muliggjør morfologiske karakterisering, fluorescerende flekker og gjenfinning av bestemt spheroids når som helst. Siden mange spheroids deler plassen og medium, er kommunikasjon via løselige molekyler mellom individuelle spheroids og deres innvirkning på hverandre mulig. Halvautomatisk bildeanalyser utføres ved hjelp av interne MATLAB kode som gjør det raskere og mer effektiv samling av store mengder data. Plattformen forenkler nøyaktig, samtidig måling av mange spheroids/invadere celler på en tidkrevende måte, slik at medium gjennomstrømming screening av anti-invasjonen narkotika.

Protocol

1. HMCA Plate relieff Merk: Hele prosessen for design og fabrikasjon av polydimethylsiloxane (PDMS) stempel og HMCA tenkelig platen brukes i denne protokollen er beskrevet i detalj i våre tidligere artikler15,16. PDMS stempelet (negativ shape) brukes til å skrive HMCA (positiv figur) som består av ca 450 MCs per brønn (figur 1A). Som vist i figur 1B, hver av MCs har en form …

Representative Results

Den unike HMCA imaging platen brukes for invasjonen analysen av 3D svulst spheroids. Hele analysen, begynner med spheroid dannelse og slutter med invasjonen prosessen og flere manipulasjoner, utføres innen samme plate. For formet formasjon, HeLa celler er lastet inn i matrisen bassenget og bosette seg i hydrogel MCs av tyngdekraften. Hydrogel MCs, som har ikke-tilhenger/lav vedlegg egenskaper, lette celle-celle samspillet og dannelse av 3D svulst spheroids. Figur 2A<…

Discussion

Det er godt dokumentert at levende organismer, preget av komplekse 3D flercellet organisasjonen er ganske forskjellige fra de vanlige 2D monolayer kultivert cellene, understreker avgjørende måtte bruke mobilnettet modeller som bedre etterligner funksjonene og prosesser av den levende organismen for narkotika screening. Nylig har flercellet spheroids, organotypic kulturer, organoids og organer på-chip vært introdusert8 for bruk i standardiserte medisiner. Men truer 3D flercellet modellens stor …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet er støttet av testamentere Moshe Shimon og Judith Weisbrodt.

Materials

6 Micro-well Glass Bottom Plates with 14 mm micro-well #1.5 cover glass Cellvis P06-14-1.5-N Commercial glass bottom plates which are used for HMCA embossing
UltraPure Low Melting Point Agarose Invitrogen 16520100 A solution of 6% agarose is warmed up to 80°C before use, a solution of 1% agarose is warmed to 37°C
Trypsin EDTA solution B Biological Industries 03-052-1A Warmed to 37°C before use
DMEM medium, high glucose Biological Industries 01-055-1A Warmed to 37°C before use
Special Newborn Calf Serum (NBCS) Biological Industries 04-122-1A Heat Inactivated
DPBS (10X), no calcium, no magnesium Biological Industries 02-023-5A Kept on ice before use
NaOH, anhydrous Sigma-Aldrich S5881-500G Used for the preparation of 1M NaOH solution
Cultrex Type I collagen from rat tail, 5mg/ml Trevigen 3440-100-01 Kept on ice before use
Hyaluronic acid sodium salt Sigma-Aldrich H5542-10MG Kept on ice before use
Fisetin Sigma-Aldrich F505-100MG Added to the culture medium, invasion inhibitor
DETA/NO Enzo Life Sciences alx-430-014-m005 Added to the culture medium, nitric oxide donor
PI Sigma-Aldrich P4170 Used at very low concenrtation without the need for washing
Dymax 5000-EC UV flood lamp complete system with light shield & Dymax 400 Watt EC power supply Dymax Corporation PN 39823 Used for HMCA plate sterilization by UV
Inverted IX81 microscope Olympus Used for automatic image acquisition
Incubator for microscope Life Imaging Services Essential for time lapse experiments with image acquisition, pre adjusted to 37°C, 5% CO2 and keeping a humidified atmosphere
Sub-micron motorized stage type SCAN-IM Marzhauser Wetzlar GmbH Used to predetermine image acquisition areas, for automatic image acquisition
14-bit, ORCA II C4742-98 cooled camera Hamamatsu Photonics Highly sensitive, used for imaging
Fluorescent filter cube for PI detection Chroma Technology Corporation Filter cube specifications: excitation filter 530-550 nm, dichroic mirror 565 nm long pass and emission filter 600-660 nm
The Olympus Cell^P operating software Olympus Software used to control microscope, motorized stage, camera and image acquisition
Matlab R2014B analysis software Mathworks Used to develop in house graphic user interface for image analysis
Excel software Microsoft Used for data management, calculation, plot creation and statistics

References

  1. Guan, X. Cancer metastases: challenges and opportunities. Acta pharmaceutica Sinica. B. 5 (5), 402-418 (2015).
  2. Sapudom, J., et al. The phenotype of cancer cell invasion controlled by fibril diameter and pore size of 3D collagen networks. Biomaterials. 52, 367-375 (2015).
  3. Portillo-Lara, R., Annabi, N. Microengineered cancer-on-a-chip platforms to study the metastatic microenvironment. Lab on a chip. 16 (21), 4063-4081 (2016).
  4. Gkountela, S., Aceto, N. Stem-like features of cancer cells on their way to metastasis. Biology Direct. 11 (1), 33 (2016).
  5. Kramer, N., et al. In vitro cell migration and invasion assays. Mutation Research/Reviews in Mutation Research. 752 (1), 10-24 (2013).
  6. Guzman, A., Sánchez Alemany, V., Nguyen, Y., Zhang, C. R., Kaufman, L. J. A novel 3D in vitro metastasis model elucidates differential invasive strategies during and after breaching basement membrane. Biomaterials. 115, 19-29 (2017).
  7. Lee, E., Song, H. -. H. G., Chen, C. S. Biomimetic on-a-chip platforms for studying cancer metastasis. Current opinion in chemical engineering. 11, 20-27 (2016).
  8. Mittler, F., Obeïd, P., Rulina, A. V., Haguet, V., Gidrol, X., Balakirev, M. Y. High-Content Monitoring of Drug Effects in a 3D Spheroid Model. Frontiers in Oncology. 7, 293 (2017).
  9. Evensen, N. A., et al. Development of a High-Throughput Three-Dimensional Invasion Assay for Anti-Cancer Drug Discovery. PLoS ONE. 8 (12), e82811 (2013).
  10. Aw Yong, K. M., Li, Z., Merajver, S. D., Fu, J. Tracking the tumor invasion front using long-term fluidic tumoroid culture. Scientific Reports. 7 (1), 10784 (2017).
  11. Mi, S., et al. Microfluidic co-culture system for cancer migratory analysis and anti-metastatic drugs screening. Scientific Reports. 6 (1), 35544 (2016).
  12. Chung, S., Sudo, R., Mack, P. J., Wan, C. -. R., Vickerman, V., Kamm, R. D. Cell migration into scaffolds under co-culture conditions in a microfluidic platform. Lab on a chip. 9 (2), 269-275 (2009).
  13. Krakhmal, N. V., Zavyalova, M. V., Denisov, E. V., Vtorushin, S. V., Perelmuter, V. M. Cancer Invasion: Patterns and Mechanisms. Acta naturae. 7 (2), 17-28 (2015).
  14. Lintz, M., Muñoz, A., Reinhart-King, C. A. The Mechanics of Single Cell and Collective Migration of Tumor Cells. Journal of Biomechanical Engineering. 139 (2), 21005 (2017).
  15. Afrimzon, E., et al. Hydrogel microstructure live-cell array for multiplexed analyses of cancer stem cells, tumor heterogeneity and differential drug response at single-element resolution. Lab on a Chip. 16 (6), 1047-1062 (2016).
  16. Shafran, Y., et al. Nitric oxide is cytoprotective to breast cancer spheroids vulnerable to estrogen-induced apoptosis. Oncotarget. 8 (65), 108890-108911 (2017).
  17. Sato, H., Idiris, A., Miwa, T., Kumagai, H. Microfabric Vessels for Embryoid Body Formation and Rapid Differentiation of Pluripotent Stem Cells. Scientific Reports. 6 (1), 31063 (2016).
  18. Lee, K., et al. Gravity-oriented microfluidic device for uniform and massive cell spheroid formation. Biomicrofluidics. 6 (1), 14114 (2012).
  19. Zaretsky, I., et al. Monitoring the dynamics of primary T cell activation and differentiation using long term live cell imaging in microwell arrays. Lab on a Chip. 12 (23), 5007 (2012).
  20. Khan, N., Syed, D. N., Ahmad, N., Mukhtar, H. Fisetin: a dietary antioxidant for health promotion. Antioxidants & redox signaling. 19 (2), 151-162 (2013).
  21. Lee, G. H., et al. Networked concave microwell arrays for constructing 3D cell spheroids. Biofabrication. 10 (1), 15001 (2017).
  22. Vinci, M., Box, C., Eccles, S. A. Three-dimensional (3D) tumor spheroid invasion assay. Journal of visualized experiments: JoVE. (99), e52686 (2015).
  23. Toh, Y. -. C., Raja, A., Yu, H., van Noort, D. A 3D Microfluidic Model to Recapitulate Cancer Cell Migration and Invasion. 생체공학. 5 (2), 29 (2018).
  24. Sugimoto, M., Kitagawa, Y., Yamada, M., Yajima, Y., Utoh, R., Seki, M. Micropassage-embedding composite hydrogel fibers enable quantitative evaluation of cancer cell invasion under 3D coculture conditions. Lab on a Chip. 18 (9), 1378-1387 (2018).
  25. Yamamoto, S., Hotta, M. M., Okochi, M., Honda, H. Effect of Vascular Formed Endothelial Cell Network on the Invasive Capacity of Melanoma Using the In Vitro 3D Co-Culture Patterning Model. PLoS ONE. 9 (7), e103502 (2014).
  26. Lee, S. -. H., Moon, J. J., West, J. L. Three-dimensional micropatterning of bioactive hydrogels via two-photon laser scanning photolithography for guided 3D cell migration. Biomaterials. 29 (20), 2962-2968 (2008).
  27. Gschwind, A., Zwick, E., Prenzel, N., Leserer, M., Ullrich, A. Cell communication networks: epidermal growth factor receptor transactivation as the paradigm for interreceptor signal transmission. Oncogene. 20 (13), 1594-1600 (2001).
  28. Jiang, K., Dong, C., Xu, Y., Wang, L. Microfluidic-based biomimetic models for life science research. RSC Advances. 6 (32), 26863-26873 (2016).
  29. Mason, B. N., Starchenko, A., Williams, R. M., Bonassar, L. J., Reinhart-King, C. A. Tuning three-dimensional collagen matrix stiffness independently of collagen concentration modulates endothelial cell behavior. Acta biomaterialia. 9 (1), 4635-4644 (2013).
  30. Raub, C. B., Putnam, A. J., Tromberg, B. J., George, S. C. Predicting bulk mechanical properties of cellularized collagen gels using multiphoton microscopy. Acta Biomaterialia. 6 (12), 4657-4665 (2010).
  31. Paszek, M. J., et al. Tensional homeostasis and the malignant phenotype. Cancer Cell. 8 (3), 241-254 (2005).
  32. Rao, S. S., DeJesus, J., Short, A. R., Otero, J. J., Sarkar, A., Winter, J. O. Glioblastoma Behaviors in Three-Dimensional Collagen-Hyaluronan Composite Hydrogels. ACS Applied Materials & Interfaces. 5 (19), 9276-9284 (2013).
  33. Kreger, S. T., Voytik-Harbin, S. L. Hyaluronan concentration within a 3D collagen matrix modulates matrix viscoelasticity, but not fibroblast response. Matrix Biology. 28 (6), 336-346 (2009).
  34. Chanmee, T., Ontong, P., Itano, N. Hyaluronan: A modulator of the tumor microenvironment. Cancer Letters. 375 (1), 20-30 (2016).
  35. Zhao, Y., et al. Modulating Three-Dimensional Microenvironment with Hyaluronan of Different Molecular Weights Alters Breast Cancer Cell Invasion Behavior. ACS Applied Materials & Interfaces. 9 (11), 9327-9338 (2017).
  36. Wu, M., et al. A novel role of low molecular weight hyaluronan in breast cancer metastasis. The FASEB Journal. 29 (4), 1290-1298 (2015).
  37. Fisher, G. J. Cancer resistance, high molecular weight hyaluronic acid, and longevity. Journal of cell communication and signaling. 9 (1), 91-92 (2015).
check_url/kr/58359?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ravid-Hermesh, O., Zurgil, N., Shafran, Y., Afrimzon, E., Sobolev, M., Hakuk, Y., Bar-On Eizig, Z., Deutsch, M. Analysis of Cancer Cell Invasion and Anti-metastatic Drug Screening Using Hydrogel Micro-chamber Array (HMCA)-based Plates. J. Vis. Exp. (140), e58359, doi:10.3791/58359 (2018).

View Video