Summary

Mekanisk Micronization af Lipoaspirates for regenerativ terapi

Published: March 15, 2019
doi:

Summary

Vi præsenterer her, en protokol for at opnå stromale vaskulære brøkdel af fedtvæv gennem en serie af mekaniske processer, som omfatter emulgering og flere centrifugations.

Abstract

Stromale vaskulære brøkdel (SVF) er blevet en regenerativ værktøj for forskellige sygdomme; men regulerer lovgivningen strengt den kliniske anvendelse af celle produkter ved hjælp af collagenase. Vi præsenterer her, en protokol for at generere en injicerbar blanding af SVF celler og indfødte ekstracellulære matrix fra fedtvæv af en rent mekanisk proces. Lipoaspirates er sat i en centrifuge og spundet på 1.200 x g i 3 min. Det midterste lag er samlet og opdelt i to lag (high-density fedt nederst) og low-density fedt på toppen. Det øverste lag er direkte emulgeret med intersyringe flytte, med en hastighed på 20 mL/s til 6 x og 8 x. Emulgerede fedt centrifugeres ved 2.000 x g i 3 min, og den klæbende stof under olien lag er indsamlet og defineret som den ekstracellulære matrix (ECM) / SVF-gel. Olie på det øverste lag er indsamlet. Ca. 5 mL olie er føjet til 15 mL af high-density fedt og emulgeret med intersyringe flytte, med en hastighed på 20 mL/s til 6 x og 8 x. Emulgerede fedt centrifugeres ved 2.000 x g i 3 min, og en klæbrig substans er også ECM/SVF-gel. Efter transplantation af ECM/SVF-gel til nøgen mus er podekvisten høstet og vurderet ved histologisk undersøgelse. Resultatet viser, at dette produkt har potentiale til at regenerere i normal fedtvæv. Denne procedure er en enkel, effektiv mekanisk dissociation procedure at kondensere SVF celler integreret i deres naturlige støttende ECM til regenerativ formål.

Introduction

Stamcelleterapier giver et paradigmeskift for væv reparation og regeneration, så de kan tilbyde en alternativ terapeutiske regime for forskellige sygdomme1. Stamceller (fx, inducerede pluripotente stamceller og embryonale stamceller) har store terapeutiske potentiale, men er begrænset på grund af celle regulering og etiske overvejelser. Fedt-afledt mesenchymale stromale/stamceller (ASCs) er let at opnå fra lipoaspirates og ikke underlagt de samme begrænsninger; Det er således blevet en ideel celletype for praktiske regenerativ medicin2. Desuden, de er nonimmunogenic og har rigelige ressourcer fra autologt fedt3.

I øjeblikket er ASCs fremstillet primært ved collagenase-medieret nedbrydning af fedtvæv. De stromale vaskulære brøkdel (SVF) af fedtvæv indeholder ASCs, endotel stamfader celle, pericytes og immunceller. Selv om at opnå en høj tæthed af SVF/ASCs enzymatisk blev vist sig at have gavnlige virkninger, regulerer lovgivningen i flere lande nøje klinisk anvendelse af celle-baserede produkter ved hjælp af collagenase4. Fordøje fedtvæv med collagenase for 30 min til 1 time at få SVF celler øger risikoen for begge eksogene materiale i forberedelse og biologisk forurening. Den vedhængende kultur og rensning af ASCs, som tager dage til uger, kræver specifikke laboratorieudstyr. Desuden, i de fleste undersøgelser, SVF celler og ASCs bruges i suspension. Uden beskyttelse af ekstracellulære matrix (ECM) eller et andet flyselskab, gratis celler er sårbare, forårsage en dårlig celle opbevaring efter injektion og kompromittere terapeutiske resultatet5. Af alle disse grunde begrænser den videre anvendelse af stamcelleterapi.

For at opnå ASCs af fedtvæv uden collagenase-medieret fordøjelse, har flere mekaniske forarbejdningsprocesser, herunder centrifugering, mekanisk hakning, neddeling, purere og hakkes, været udviklet6,7 , 8 , 9. disse metoder er troede at kondensere væv og ASCs af mekanisk forstyrre modne adipocytter og deres olie-holdige vesikler. Desuden, disse præparater, der indeholder høje koncentrationer af ASCs, viste betydelige terapeutiske potentiale som regenerativ medicin i animalske modeller8,9,10.

I 2013 indført Tonnard et al. nanofat podning teknik, der involverer producerer emulgerede lipoaspirates af intersyringe behandling af11. At klipning kraft skabt af intersyringe skiftende kan selektivt bryde modne adipocytter. Baseret på deres resultater, udviklet vi et rent mekanisk forarbejdningsmetode, der fjerner de fleste af lipid og væske i lipoaspirates, forlader kun SVF celler og fraktionerede ECM, som er ECM/SVF-gel12. Heri, beskrive vi detaljerne i den mekaniske proces af menneske-afledte fedtvæv til at producere ECM/SVF-gel.

Protocol

Denne forskning blev godkendt af den etiske Review Board i Nanfang Hospital, Guangzhou, Kina. Fedtvæv er indsamlet fra raske donorer, der gav skriftligt informeret samtykke til at deltage i undersøgelsen. Alle dyreforsøg blev godkendt af det Nanfang Hospital institutionelle Animal Care og brug udvalg og udført efter retningslinjerne for National sundhed og Medical Research Council (Kina). 1. ECM/SVF-gel forberedelse Høst fedt. Udføre Fedtsugning på et menneske med en 3…

Representative Results

Efter forarbejdning Coleman fedt til ECM/SVF-gel, mængden af kasserede olie fylder 80% af det endelige rumfang, og kun 20% af fedtvæv bevaret under olien lag betragtes som ECM/SVF-gel (fig. 1A). ECM/SVF-gel har en glat væske-lignende tekstur, der gør det muligt at gå gennem en 27 G fin nål; men Coleman fedt består af en integreret adipøst struktur med store fibre og kan kun gå gennem en 18 G kanyle (figur 1</stro…

Discussion

Stamcelle-baseret regenerativ terapi har vist en stor potentiel fordel i forskellige sygdomme. ASCs er udestående terapeutiske kandidater, fordi de er nemme at få og have kapacitet til væv reparation og regenerering af roman væv15. Der er dog begrænsninger til at udvide sin kliniske anvendelse, da det kræver komplicerede procedurer at isolere cellerne og collagenase til behandling af6. Det er således vigtigt at udvikle en enkel teknik for at få stamceller uden brug …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National karakter Science Foundation i Kina (81471881, 81601702, 81671931), Natural Science Foundation i Guangdong provinsen i Kina (2014A030310155), og Administrator fundament af Nanfang Hospital (2014B009, 2015Z002, 2016Z010, 2016B001).

Materials

Alexa Fluor 488-conjugated isolectin GS-IB4 Molecular Probes I21411
guinea pig anti-mouse perilipin Progen GP29
DAPI Thermofisher D1306
wide tip pipet Celltreat 229211B
Confocal microscope  Leica  TCS SP2
nude nice  Southern Mdical University /
light microscope  Olympus /
50 mL tube Cornig 430828
sterile bag Laishi /
microtome Leica  CM1900
centrifuge Heraus

References

  1. Bateman, M. E., et al. Using Fat to Fight Disease: A Systematic Review of Non-Homologous Adipose-Derived Stromal/Stem Cell Therapies. Stem Cells. 36 (9), 1311-1328 (2018).
  2. Baer, P. C., Geiger, H. Adipose-derived mesenchymal stromal/stem cells: tissue localization, characterization, and heterogeneity. Stem Cells International. , 812693 (2012).
  3. Gimble, J. M., Katz, A. J., Bunnell, B. A. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine. Circulation Research. 100 (9), 1249-1260 (2017).
  4. Halme, D. G., Kessler, D. A. FDA regulation of stem-cell-based therapies. New England Journal of Medicine. 355 (16), 1730-1735 (2006).
  5. Cheng, N. C., Wang, S., Young, T. H. The influence of spheroid formation of human adipose-derived stem cells on chitosan films on stemness and differentiation capabilities. Biomaterials. 33 (6), 1748-1758 (2012).
  6. van Dongen, J. A., et al. Comparison of intraoperative procedures for isolation of clinical grade stromal vascular fraction for regenerative purposes: a systematic review. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (1), 261-274 (2018).
  7. van Dongen, J. A., et al. The fractionation of adipose tissue procedure to obtain stromal vascular fractions for regenerative purposes. Wound Repair and Regeneration. 24 (6), 994-1003 (2016).
  8. Mashiko, T., et al. Mechanical Micronization of Lipoaspirates: Squeeze and Emulsification Techniques. Plastic and Reconstructive Surgery. 139 (1), 79-90 (2017).
  9. Feng, J., et al. Micronized cellular adipose matrix as a therapeutic injectable for diabetic ulcer. Regenerative Medicine. 10 (6), 699-708 (2015).
  10. Zhang, P., et al. Ischemic flap survival improvement by composition-selective fat grafting with novel adipose tissue derived product – stromal vascular fraction gel. Biochemistry and Biophysics Research Communication. 495 (3), 2249-2256 (2018).
  11. Tonnard, P., et al. Nanofat grafting: basic research and clinical applications. Plastic and Reconstructive Surgery. 132 (4), 1017-1026 (2013).
  12. Yao, Y., et al. Adipose Extracellular Matrix/Stromal Vascular Fraction Gel: A Novel Adipose Tissue-Derived Injectable for Stem Cell Therapy. Plastic and Reconstructive Surgery. 139 (4), 867-879 (2017).
  13. Yao, Y., et al. Adipose Stromal Vascular Fraction Gel Grafting: A New Method for Tissue Volumization and Rejuvenation. Dermatologic Surgery. 44 (10), 1278-1286 (2018).
  14. Zhang, Y., et al. Improved Long-Term Volume Retention of Stromal Vascular Fraction Gel Grafting with Enhanced Angiogenesis and Adipogenesis. Plastic and Reconstructive Surgery. 141 (5), 676-686 (2018).
  15. Sun, B., et al. Applications of stem cell-derived exosomes in tissue engineering and neurological diseases. Reviews in the Neurosciences. 29 (5), 531-546 (2018).
  16. Allen, R. J., et al. Grading lipoaspirate: is there an optimal density for fat grafting. Plastic and Reconstructive Surgery. 131 (1), 38-45 (2013).
  17. Qiu, L., et al. Identification of the Centrifuged Lipoaspirate Fractions Suitable for Postgrafting Survival. Plastic and Reconstructive Surgery. 137 (1), 67-76 (2016).
check_url/kr/58765?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhu, H., Ge, J., Chen, X., Lu, F., Cai, J. Mechanical Micronization of Lipoaspirates for Regenerative Therapy. J. Vis. Exp. (145), e58765, doi:10.3791/58765 (2019).

View Video