Summary

축수 된 중간 대뇌 동맥에서 멤브레인 전위를 기록하는 마이크로 전극 Impalement 방법

Published: July 02, 2019
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Summary

이 문서의 주요 목표는 미세 전극 impalement방법을 사용하여 중간 대뇌 동맥에서 막 전위 (Vm)를 기록하는 방법에 대한 세부 정보를 제공하는 것입니다. 굴절된 중간 대뇌 동맥은 근진한 톤을 얻기 위해 평형화되고, 혈관 벽은 높은 저항 성 미세 전극을 사용하여 찔려있습니다.

Abstract

혈관 평활근 세포의 막 전위 (V m)는 혈관 톤을 결정하고 따라서 장기에 혈류를 결정합니다. 질병 조건에서 V m을 조절하는 이온 채널 및 전기 생성 펌프의 발현 및 기능의 변화는 잠재적으로 Vm,혈관 톤 및 혈류를 변화시킬 수 있습니다. 따라서, 전기생리학에 대한 기본적인 이해와 건강하고 병들린 상태에서 Vm을 정확하게 기록하는 데 필요한 방법이 필수적이다. 이 방법을 사용하면 다른 약리학 적 에이전트를 사용하여 V m을 변조하여 V m을 복원 할 수있습니다. 여러 가지 방법이 있지만, 각각의 장점과 단점을 가지고 있지만, 이 문서는 미세 전극 임팔레이 방법을 사용하여 중간 대뇌 동맥과 같은 혼수 저항 혈관으로부터 Vm을 기록하는 프로토콜을 제공한다. 중간 대뇌 동맥은 myograph 챔버에서 myogenic 톤을 얻기 위하여 허용되고, 혈관 벽은 높은 저항 마이크로 전극을 사용하여 찔려 있습니다. Vm 신호는 전계를 통해 수집되고 디지털화되고 분석됩니다. 이 방법은 세포를 손상시키지 않고 멤브레인 저항을 변경하지 않고 용기 벽의 Vm을 정확하게 판독할 수 있습니다.

Introduction

세포의 멤브레인전위(Vm)는 혈장 막을 가로지르는 이온 전하의 상대적 차이와 이러한 이온에 대한 멤브레인의 상대적 투과성을 지칭한다. Vm은 이온의 차동 분포에 의해 생성되며 이온 채널 과 펌프에 의해 유지됩니다. K+, Na+및 Cl과 같은 이온 채널은 휴식 VM에실질적으로 기여합니다. 혈관 평활근 세포 (VSMC)는 K+ 채널1,전압 게이트 Ca2+ 채널 (VGCC)2의두 가지 유형의 4 가지 유형 이상을 표현하고, 2 가지 유형의 Cl 채널3, 4개 , 5,상점 운영 Ca2+ 채널6,스트레치 활성화 양이온 채널7,8,그리고 전기 발생 나트륨 – 칼륨 ATPase 펌프9 플라즈마 멤브레인, 모두 될 수있다 Vm의규제에 관여 .

VSMC의 Vm은 루멘 압력에 따라 달라집니다. 비가압 용기에서 Vm은 -50에서 -65 mV까지 다양하지만 가압 동맥 세그먼트에서는 Vm 범위가 -37에서 -47 mV10입니다. 혈관 내 압력의 상승은 VSMC가11을탈분극하게 하고, VGCC 개방에 대한 임계값을 감소시키고, 근조톤(12)의 발달에 기여하는 칼슘 유입을 증가시킨다. 반대로, 수동 또는 비가압 혈관에서, 높은 K+ 채널 활동으로 인해 막 과분극은 VGCC가 열리지 못하게하여 제한된 칼슘 진입과 세포 내 칼슘의 감소를 초래하여 세포 내 칼슘의 감소를 감소시킵니다. 혈관 톤13. 따라서, 루멘 압력의 변화로 인하여 Vm은 혈관 톤 발달에 필수적인 역할을 하는 것으로 보이며, VGCC 및 K+ 채널 모두 Vm의 조절에 중요한 역할을 한다.

V m은 혈관 유형과 종에 따라 다릅니다. Vm은 기니피그 우수한 장간막 동맥 스트립에서 -54±1.3 mV로, 60 mmHg 루멘 압력에서 랫트 중대동맥에서-45±1 mV, 및 -35±1 mV에서 40 mmHg 루멘 압력에서 랫트 자작동맥에서15. 뻗지 않은 쥐 림프근육에서 기록된 쉬잉 Vm은 -48±2 mV16이다. 대뇌 VSMC의 Vm은 말초 동맥에서 보다 더 부정적인. 이에 비해, 고양이 중대동맥은 약 -70 mV의Vm을 가지는 것으로 보고되었으며, 장간막 및 관상동맥은 각각 -49 및-58 mV를 가지는 것으로 보고되었다. 혈관 층에서 V m의 차이는 이온 채널 및 전기 발생 나트륨 칼륨 펌프의 발현 및 기능의 차이를 반영할 수 있다.

Vm의 증가 및 감소는 각각 막 탈분극 및 과분극으로 지칭된다. V m에서 이러한 변경 많은 생리 적 프로세스에 중앙 역할을, 이온 채널 게이팅을 포함 하 여, 세포 신호, 근육 수축, 그리고 행동 잠재적인 전파. 고정 된 압력에서, K+ 채널을 활성화하는 많은 내인성 및 합성 혈관 확장제 화합물은 막 과분극을 일으켜 혈관 확장 1,13을초래합니다. 반대로, 지속된 막 탈분극은 작용제 유도 또는 수용체 매개 혈관수축(19)에서필수적이다. V m은 VGCC13을 통해 Ca2+ 유입을 조절할 뿐만 아니라 내부 매장20,21 및 Ca2+-감도에서 Ca2+의 출시에도 영향을 미치는 중요한 변수입니다. 수축 장치22.

상이한 세포 유형에서 Vm을 기록하는 몇 가지 방법이 있지만, 종면 용기의 미세 전극 몰백 방법으로부터 수집된 데이터는 분리된 VSMC로부터 얻은 데이터보다 더 생리적인 것으로 보인다. 현재 클램프 방법을 사용하여 격리 된 VSMC에서 기록 할 때 Vm은 VSMC24에서자발적인 과도 과분극으로 간주됩니다. 격리된 VSMC는 동기화되지 않으며, 시리즈 저항의 변화는 V m의 진동 거동에기여할 수 있다. 다른 한편으로는, 진동 거동은 Vm이 손상되지 않은 혈관에서 기록될 때 관찰되지 않으며, 아마도 동맥내 동기화에 있는 VSMC 사이의 세포 세포 접촉으로 인해 혈관 전체에 걸쳐 합산되어 안정적인 Vm으로 이어집니다. 24.따라서, 표준 미세 전극 임팔레이 기술을 사용하여 가압 용기로부터 V m의 측정은 생리적 조건에 상대적으로 가깝다.

동기화된 VSMC의 Vm은 혈관 톤과 혈류의 주요 결정요인 중 하나이며 Vm의 변조는 팽창 또는 혈관을 수축. 따라서, Vm을 기록하는 데 관련된 방법론을 이해하는 것이 필수적이다. 이 기사에서는 미세 전극 impalement 방법을 사용하여 조개형 중간 대뇌 동맥 (MCA)에서 V m의 세포 내 기록을 설명합니다. 이 프로토콜은 MCA, 마이크로 전극을 준비하고, 전기계를 설정하고 V m을기록하는 impalement 방법을 수행하는 방법을 설명합니다. 또한 이 방법을 사용할 때 발생한 대표적인 데이터, 일반적인 문제 및 잠재적인 문제에 대해서도 논의합니다.

Protocol

수컷 쥐는 UMMC의 동물 관리 시설에 보관되었으며, 이는 실험실 동물 관리 협회 (AAALAC)의 평가 및 인증협회의 승인을 받았습니다. 동물들은 연구 기간 내내 음식과 물을 자유롭게 이용할 수 있었습니다. 동물은 온도가 24±2°C, 습도 수준이 60-80% 및 12h 의 빛/어두운 사이클로 통제된 환경에서 유지되었다. 모든 프로토콜은 UMMC의 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인되었습니다. 1. …

Representative Results

제시된 방법은 굴절된 용기에서 Vm을 기록하는 데 안정적으로 사용될 수 있다. 뇌에서 MCA를 격리하는 방법을 설명하는 간단한 절차가 그림 1A에제시되어 있습니다. 두개골에서 뇌를 분리 한 후, MCA는 해부하고 낮은 칼슘 PSS를 포함하는 페트리 접시에 배치되었다. 부착 된 결합 조직의 일부는 또한 격리 하는 동안 MCA에 손상을 방지 하기 위해 ?…

Discussion

이 문서에서는 날카로운 미세 전극 임팔레이 방법을 사용하여 굴절된 용기 준비로부터 Vm을 기록하는 방법에 대한 필요한 단계를 제공합니다. 이 방법은 널리 사용되며 광범위한 실험 적 질문에 대답하는 고품질의 일관된 Vm 기록을 제공합니다.

메서드의 성공을 보장하기 위해 몇 가지 중요한 고려 사항 및 문제 해결 단계가 여기에 설명되어 있습니다. 마이크?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 UMMC, AHA 과학자 개발 보조금 (13SDG14000006)에서 교내 지원 연구 프로그램 (IRSP)에서 보조금에 의해 부분적으로 지원되었다 말리카르주나 R. Pabbidi에 수여.

Materials

Dissection instruments
Aneshetic Vaporiser Parkland scientific V3000PK
Dissection microscope Nikon Instruments Inc., NY Eclipse Ti-S
Kleine Guillotine Type 7575 Harvard Apparatus, MA 73-198
Littauer Bone Cutter Fine science tools 16152-15
Moria MC40 Ultra Fine Forceps Fine science tools 11370-40
Surgical scissors Sharp-Blunt Fine science tools 14008-14
Suture Harvard Apparatus 72-3287
Vannas Spring Scissors Fine science tools 15018-10
Electrophysiology Instruments
Charge-coupled device camera Qimaging, , BC Retiga 2000R
Differential electrometer amplifier WPI FD223A
In-line pressure transducer Harvard Apparatus, MA MA1 72-4496
Micromanipulator Thor labs PCS-5400
Microelectrodes Warner Instruments LLC, CT G200-6,
Micro Fil (Microfiber syringe) WPI MF28G67-5
Microelectrode holder WPI MEH1SF
Myograph Living Systems Instrumentation, VT CH-1-SH
Puller Sutter Instrument, San Rafael, CA P-97
Vibration-free table TMC 3435-14
Softwares
Clampex 10 Molecular devices
p Clamp 10 Molecular devices
Imaging software Nikon, NY NIS-elements
Chemicals
NaCl Sigma S7653
KCl Sigma P4504
MgSO4 Sigma M7506
CaCl2 Sigma C3881
HEPES Sigma H7006
Glucose Sigma G7021
NaH2PO4 Sigma S0751
NaHCO3 Sigma S5761

References

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Reed, J. T., Sontakke, S. P., Pabbidi, M. R. Microelectrode Impalement Method to Record Membrane Potential from a Cannulated Middle Cerebral Artery. J. Vis. Exp. (149), e59072, doi:10.3791/59072 (2019).

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