Nós descrevemos um protocolo cirúrgico para induzir consistentemente aneurismas aórticos torácicos de descida robustos nos ratos. O procedimento envolve a toracotomia esquerda, a exposição da aorta torácica e a colocação de uma esponja embebida em elastase pancreática suína na parede aórtica.
De acordo com o centro de controle de doenças, os aneurismas aórticos (AAs) foram considerados uma das principais causas de morte em todas as raças e ambos os sexos de 1999-2016. Um aneurisma se forma como resultado de enfraquecimento progressivo e eventual dilatação da aorta, que pode romper ou rasgar uma vez que atinge um diâmetro crítico. Os aneurismas da aorta descendente no tórax, denominados aneurismas aórticos torácicos descendentes (dTAA), compõem uma grande proporção de casos de aneurisma nos Estados Unidos. A ruptura de dTAA não contida é quase universalmente letal, e a reparação eletiva tem uma alta taxa de morbidade e mortalidade. O objetivo do nosso modelo é estudar especificamente a dTAA, para elucidar a fisiopatologia da dTAA e procurar alvos moleculares para deter o crescimento ou reduzir o tamanho da dTAA. Por ter um modelo murino para estudar a patologia torácica precisamente, terapias direcionadas podem ser desenvolvidas para testar especificamente a dTAA. O método é baseado na colocação do elastase pancreatic suínos (PPE) diretamente na parede aórtica murino exterior após a exposição cirúrgica. Isso cria uma reação destrutiva e inflamatória, que enfraquece a parede aórtica e permite a formação de aneurisma ao longo de semanas a meses. Embora os modelos murinos possuam limitações, nosso modelo dTAA produz aneurismas robustos de tamanho previsível. Além disso, este modelo pode ser usado para testar alvos genéticos e farmacêuticos que podem prender o crescimento de dTAA ou impedir a ruptura. Em pacientes humanos, intervenções como essas poderiam ajudar a evitar a ruptura do aneurisma e a difícil intervenção cirúrgica.
A finalidade deste método é estudar o desenvolvimento, a patofisiologia, e as mudanças estruturais na aorta torácica descendente murino durante a formação do aneurysm aórtico. Nosso modelo oferece um método reprodutível e consistente para induzir aneurismas aórticos torácicos (dtaa) nos ratos que permitem desse modo para o teste de vários inibidores genéticos e farmacológicos. Este trabalho pode ajudar a identificar drogas e terapias genéticas que podem ser traduzidas para uma estratégia de tratamento viável para humanos com doença de dTAA.
dTAAs forma quando a parede da aorta torácica torna-se enfraquecida e dilata ao longo do tempo até atingir um diâmetro crítico quando rasgar ou ruptura pode ocorrer. Clinicamente, a dTAA pode progredir em silêncio, aumentando em tamanho até que a estrutura da parede aórtica seja tão distorcida que eventualmente falhe, com conseqüências catastróficas. Concerningly, os sintomas desenvolvem-se geralmente somente quando o aneurysm alcangou um tamanho perigoso (dilatação de 100-150%) e está no risco elevado para a dissecção ou a ruptura1,2. a ruptura de dtaa é quase universalmente letal3, e o reparo cirúrgico eletivo carreg a morbosidade significativa4,5. Além disso, a maioria de pacientes carreg o diagnóstico de um aneurysm aórtico por aproximadamente 5 anos antes do reparo cirúrgico6,7. Esta janela representa um momento oportuno para intervir não cirurgicamente. Assim, terapias médicas para tratar ou retardar a progressão da dTAA são necessárias e representariam um avanço significativo para o campo da pesquisa de aneurisma. Não há atualmente nenhum tratamento médico para o dTAA disponível, na maior parte por causa de uma compreensão incompleta da patogénese de dTAA.
Nos últimos 20 anos, vários modelos animais da dTAA foram desenvolvidos, mas cada um desses modelos era distinto do nosso e não produziam aneurismas robustos. Um modelo de dTAA murino mais semelhante ao nosso foi desenvolvido por Ikonomidis et al.8, que inclui aplicação direta de CAcl2 à adventícia da aorta. Embora nosso modelo foi adaptado de muitas das técnicas estabelecidas por Ikonomidis, nosso modelo é único em três maneiras separadas. Em primeiro lugar, em nosso modelo a aorta é exposta a elastase tópica por 3-5 minutos, em comparação com 15 minutos de exposição ao CaCl2 . Em segundo lugar, a dilatação aórtica ocorre em 2 semanas, em comparação com 16 semanas no modelo CaCl2 . Por último, nosso modelo produz consistentemente aneurismas de aproximadamente 100% de dilatação, em comparação com as dilatações aórticas de 20-30% produzidas pela aplicação de CaCl2 (que não podem ser verdadeiramente consideradas aneurismas, pois são definidas como um aumento na aorta diâmetro > 50%). Existem outros modelos murinos não cirúrgicos de formação de aneurisma, como o rato de nocaute Apo E, que formam aneurismas robustos com infusão de angiotensina II. Entretanto, esses camundongos desenvolvem aneurismas da aorta torácica suprrenal ou ascendente em vez de aneurismas especificamente na aorta torácica descendente9,10.
O racional para este protocolo é ter uma maneira simples, barata, e tempo apropriada de estudar dtaa em um modelo murino. O modelo do mouse fornece uma oportunidade única para utilizar muitos nocautes genéticos e específicos de células que foram encontrados para ser impactantes em outras doenças vasculares. O uso de nosso modelo específico de Taa tem sido bem recebido e experimentos utilizando-o foram publicados em revistas de alto impacto11,12. A este ponto, o modelo tem sido utilizado para investigar possíveis tratamentos genéticos e farmacológicos que tiveram efeito significativo nos modelos murinos de aneurisma da aorta abdominal (AAA); no entanto, como nosso laboratório expandiu o uso do modelo da dTAA, estamos encontrando alvos exclusivos da formação da dTAA que poderiam ser usados como terapias direcionadas em humanos.
Este modelo é o mais apropriado para os laboratórios que têm capacidades micro-cirúrgicas murino. Embora seja tecnicamente desafiador, ele pode ser executado consistentemente até mesmo por pesquisadores sem experiência cirúrgica prévia. Para um pesquisador sem experiência cirúrgica murina, o modelo pode ser dominado em aproximadamente 20 sessões operatórias (ou aproximadamente 50 camundongos). Para o pesquisador com experiência cirúrgica prévia, o modelo pode ser dominado em 5 sessões operatórias (aproximadamente 20 camundongos). Acreditamos que com um vídeo de alta qualidade, o tempo de maestria pode ser ainda mais reduzido. Depois que a proficiência é conseguida, o procedimento pode ser terminado em 35 minutos para a cirurgia, e 20 minutos para a colheita terminal. Os cirurgiões em nosso laboratório podem completar 10-12 cirurgias completas por dia, com uma taxa de mortalidade operatória de 5-10%. A causa mais comum de mortalidade é a lesão pulmonar após a entrada no tórax, toxicidade anestésica ou rasgo da aorta durante a dissecção. Além da pesquisa da dTAA, este modelo também serve como um guia para o acesso seguro e fácil à aorta torácica e ao hilo pulmonar para pesquisadores que estudam outras intervenções no tórax.
A aorta torácica e abdominal é cellularmente e Embriologicamente distinta, que é relevante à doença Aneurysmal14,15,16. Portanto, é necessário um modelo animal específico para o estudo da TAA. Embora outros modelos de dTAA murino tenham sido publicados8, o nosso é o único modelo para criar dilatação aórtica torácica descendente que pode ser considerada verdadeiramente aneurismática (mais de…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pelas doações de desenvolvimento de cientistas AHA 14SDG18730000 (M.S.), NIH K08 HL098560 (GA) e RO1 HL081629 (GRU). Este projeto foi apoiado pela Fundação de cirurgia torácica para pesquisa e educação (TSFRE) Research Grant (PI: G. Ailawadi). O conteúdo é unicamente da responsabilidade dos autores e não representa necessariamente os pontos de vista do NHLBI ou do TSFRE. Agradecemos Anthony Herring e Cindy Dodson por seu conhecimento e perícia técnica.
Angiocatheter (22G) | Used for ET Tube | ||
Dumont Tweezers; Pattern #7 x2 | Roboz | RS-4982 | |
Graefe Tissue Forceps | Roboz | RS-5158 | |
Harms Forceps x2 | Roboz | RS-5097 | |
Intracardiac Needle Holder; Extra Delicate; Carbide Jaws; 7" Length | Roboz | RS-7800 | |
KL 1500 LED Light Source | Leica | 150-400 | |
M205A Dissction Microscope | Leica | CH 94-35 | |
Iris Scissors, 11cm, Tungsten Carbide | World Precision Instruments | 500216-G | |
Metal Clip board | Use with the Mouse Retractor Set | ||
Mouse Retractor Set | Kent | SURGI-5001 | Need 2 short and 1 tall fixators |
Mouse Ventilator MiniVent Type 845, 115 V, Power Supply with US Connector | Harvard Apparatus | 73-0043 | MiniVent Ventilator for Mice (Model 845), Single Animal, Volume Controlled |
Sigma Aldrich | Elastase from porcine pancreas | E0258-50MG | Can be purchased in various size bottles |
Small Vessel Cauterizer Kit | Fine Science Tools | 18000-00 | Recommend using rechargable AA batteries |
Spring Scissors, 10.5cm | World Precision Instruments | 14127 | |
Steril Swabs (Sponges) | Sugi | 31603 | Can be cut to size |
Surgi Suite Surgical Platform | Kent | Attach to clip board | |
Tech IV Isoflurane Vap | Jorgensen Laboratories | J0561A | Anesthesia vaporizer |