Summary

胚性幹細胞からの顆粒球マクロファージコロニー刺激因子を運ぶ外生エンリッチ細胞小胞の分離

Published: November 11, 2021
doi:

Summary

この研究では、胚性幹細胞から免疫刺激性顆粒球マクロファージマクロファージを担う外生富化細胞外小胞を単離する方法について説明する。

Abstract

胚性幹細胞(ESC)は、自己再生および分化が可能な多能性幹細胞であり、すべてのタイプの胚細胞に分化することができる。他の多くの細胞タイプと同様に、ESCはエキソソームなどの小さな膜小胞を細胞外環境に放出する。エキソソームは細胞間コミュニケーションの不可欠なメディエーターとして機能し、多くの(パソ)生理学的プロセスにおいて基本的な役割を果たす。顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)は、免疫応答を調節するサイトカインとして機能する。エキソソームにおけるGM-CSFの存在は、免疫調節機能を高める可能性を秘めています。ここで、GM-CSFは、マウスESC細胞株ES-D3において安定的に過剰発現していた。GM-CSFを過剰発現するES-D3細胞から高品質のエキソソームエンリッチ細胞小胞(EV)を分離するプロトコルが開発されました。分離エキソソームエンリッチEVは、様々な実験的アプローチによって特徴付けられていた。重要なことに、大量のGM-CSFがエキソソームエンリッチEVに存在することが判明した。全体として、ESCからのGM-CSFを持つエキソソームエンリッチEVは、免疫調節活動を行うために無細胞小胞として機能する可能性があります。

Introduction

ESCは、着床前胚1の胚盤胞期に由来する。多能性幹細胞として、ESCは自己更新し、あらゆるタイプの胚細胞に分化する能力を有する。その著しい発達力と長期的な増殖能力のために、ESCは生物医学研究のために非常に価値がある1.現在の研究努力は、糖尿病、心臓病、および神経変性疾患2、3、4を含む様々な主要な病的障害に対するESCの治療可能性に主に焦点を当てている。

ESCを含む哺乳類細胞は、細胞外環境に可変サイズの小胞を放出することが知られており、これらのEVは細胞間コミュニケーションにおけるそれらの役割のために多くの生理学的および病理学的機能を有する5。EVの異なるサブタイプの中で、エキソソームは、中間内視鏡コンパートメント、多胞体(MVB)の融合時に細胞外空間に様々な細胞タイプから放出される小さな膜小胞である、血漿膜6を有する。エキソソームは細胞間通信を媒介することが報告されており、多くの(パソ)生理学的プロセス7,8に批判的に関与している。エキソソームは、タンパク質や核酸を含むサイトゾルから得られた生物学的物質を含んでいるため、自分の親細胞からいくつかの生物学的機能を継承します。従って、特定の疾患に特異的な免疫応答を刺激する関連抗原または因子は、特定のタイプの細胞9からエキソソームに封入される。これは、抗癌ワクチン10として腫瘍由来エキソソームを探索する臨床試験への道を開いた。

GM-CSFは、異なるタイプの免疫細胞11によって分泌されるサイトカインである。新たな証拠は、GM-CSFが免疫系を活性化し、調節し、抗原提示プロセス12において不可欠な役割を果たしていることを示す。例えば、臨床報告は、GM-CSFがワクチンアジュバント13として腫瘍に対する免疫応答を刺激することを示唆している。GM-CSFの強力な免疫刺激活性を利用するいくつかのGM-CSFベースの癌免疫療法戦略は、臨床試験14で調査されている。これらの中で、照射されたGM-CSF分泌腫瘍細胞からなるがんワクチンは、転移性腫瘍15において細胞および体液性抗腫瘍応答とその後の壊死を誘導することによって進行した黒色腫患者に何らかの約束を示している。

ESCに由来するエキソソームは元のESCと同様の生物学的活性を有するため、ESCからのGM-CSFを運ぶエキソソームは、免疫応答を調節するための無細胞小胞として機能する可能性があります。本論文では、GM-CSFを発現するESCから高品質エキソソームエンリッチEVを製造する詳細な方法を説明する。これらのエキソソームエンリッチEVは、免疫応答を調節する免疫調節小胞として機能する可能性を秘めています。

Protocol

1. ES-D3細胞の培養 エキソソームフリーウシ血清(FBS)を生成するには、FBSを超遠心分離機に、遠心分離機を100,000 x g で4°Cで16時間ロードします。 遠心分離後、マウスESC細胞株ES-D3を培養し、エキソソームエンリッチEVを取得するためのエキソソームフリーFBSとして血清上清を収集します。 ES-D3細胞をめっきする前に、ゼラチン(0.1%)を室温で30分間使用して15cmの組織培養皿を?…

Representative Results

GM-CSFはマウスESCで過剰発現している。ES-D3細胞中でGM-CSFを安定的に過剰発現させるために、マウスGM-CSF cDNAをトランスフェクションベクターにクローニングし、発現ベクターpEF1α-mGM-CSF-IRES-hrGFPを生成した(図1A)。GM-CSFはトランスフェクションによりES-D3細胞で過剰発現し、一過性トランスフェクションES-D3細胞の約20%がG…

Discussion

本研究は、免疫刺激タンパク質GM-CSFを有するエキソソームエンリッチEVを産生する非常に効率的な方法を示し、エキソソームエンリッチEVの免疫調節効果を研究するために使用することができる。いくつかの研究は、エキソソームが免疫調節および抗腫瘍機能22を示すことを示唆している。したがって、GM-CSFを発現するESCのエキソソームは、免疫応答を調節する生物学的活性?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

透過型電子顕微鏡画像を取得してくれたアルカディウシュ・スルサルチク氏とケンタッキー州生物医学研究基盤ネットワーク(KBRIN、P20GM103436)に感謝しています。この研究の一環として、NIH AA018016-01(J.W.E.)、ケンタッキー州連邦リサーチチャレンジトラストファンド(J.W.E.)、NIH CA106599、CA175003(C.L.)、NIH CA198249(K.Y.)、フリー・オブ・ブレス・リサーチ・グラント(K.Y.)からの助成金が支えられました。

Materials

Alkaline phosphate, Calf Intestinal New England Biolabs M0290S Dephosphorylating DNA plasmid
anti-Annexin V mAb Santa Cruz Biotechnology clone H-3, sc-74438 Western blot, RRID:AB_1118989
anti-CD81 mAb Santa Cruz Biotechnology clone B-11, sc-166029 Western blot, RRID:AB_2275892
anti-cytochrome c mAb Santa Cruz Biotechnology clone A-8, sc-13156 Western blot, RRID:AB_627385
anti-Flotillin-1 mAb Santa Cruz Biotechnology clone C-2; sc-74566 Western blot, RRID:AB_2106563
anti-GAPDH pAb Rockland 600-401-A33S Western blot, RRID:AB_11182910
anti-mouse IgG, goat, peroxidase-conjugated Thermo Fisher 31430 Western blot, RRID:AB_228307
anti-Oxphos COX IV-subunit IV mAb Thermo Fisher clone 20E8C12 A21348 Western blot, RRID:AB_221509
anti-protein disulfide isomerase (PDI) pAb Enzo ADI-SPA-890 Western blot, RRID:AB_10616242
anti-rabbit IgG, goat, peroxidase-conjugated Thermo Fisher 31460 Western blot, RRID:AB_228341
BCA (bicinchoninic acid) assay Thermo Fisher 23223 Determining protein concentrations
Bis-Tris PAGE Gel, ExpressPlus, 4-20% Genscript M42015 Western blot
Carbenicillin, Disodium Salt Thermo Fisher 10177012 Selecting E. coli colonies
Centrifuge, Avanti J-26 XPI Beckman Coulter Low speed centrifugation
Centrifuge rotor, JA-10 Beckman Coulter 09U1597 Low speed centrifugation
Centrifuge bottle, Nalgene PPCO Thermo Fisher 3120-0500PK Low speed centrifugation
Cu grids with carbon support film Electron Microscopy Sciences FF200-Cu Acquiring electron microscopy images
EcoRI New England Biolabs R0101 Digesting DNA plasmid
Enhanced chemiluminescence detection system Thermo Fisher 32106 Western blot
FACScalibur flow cytometer Becton Dickinson Examining GFP levels of ES-D3 cells
Fetal bovine serum ATCC SCRR-30-2020 Medium for ES-D3 cells
Fisherbrand Sterile Cell Strainers; Mesh Size: 40μm Thermo Fisher 22-363-547 Filtering ES-D3 cells for FACS sorting
Gelatin (0.1%) Thermo Fisher ES006B Culturing ES-D3 cells
GM-CSF ELISA kit Thermo Fisher 88733422 Determining GM-CSF concentrations
KnockOut Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium Thermo Fisher 10-829-018 Medium for ES-D3 cells
Leukemia Inhibitory Factor Thermo Fisher ESG1106 Medium for ES-D3 cells
L-glutamine VWR VWRL0131-0100 Medium for ES-D3 cells
Lipofectamine 2000 transfection reagent Thermo Fisher 11668019 Transfecting ES-D3 cells
Microplate reader, PowerWave XS BioTek Determining GM-CSF concentrations
MoFlo XDP high-speed cell sorter Beckman Coulter Isolating single ES-D3 cell clones
NEB 5-alpha Competent E. coli New England Biolabs C2988J Generating GM-CSF expression plasmid
Neomycin Thermo Fisher 10-131-035 Selecting ES-D3 clones
Non-essential amino acids Thermo Fisher SH3023801 Medium for ES-D3 cells
Non-fat dry milk Thermo Fisher NC9022655 Western blot
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher 31985062 Transfecting ES-D3 cells
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Acquiring electron microscopy images
Penicillin/streptomycin VWR sc45000-652 Medium for ES-D3 cells
Plasmid pEF1a-FD3ER-IRES-hrGFP Addgene 37270 Generating GM-CSF expression plasmid
PVDF membranes Millipore EMD IPVH00010 Western blot
QIAprep Spin Miniprep Kit (250) QIAGEN 27106 Generating GM-CSF expression plasmid
QIAquick Gel Extraction Kit (50) QIAGEN 28704 Generating GM-CSF expression plasmid
Quick Ligation Kit New England Biolabs M2200S Generating GM-CSF expression plasmid
Transmission electron microscope Hitachi HT7700 Acquiring electron microscopy images
Trypsin VWR 45000-660 Culturing ES-D3 cells
Ultracentrifuge, OptimaTM L-100 XP Beckman Coulter High speed centrifugation
Ultracentrifuge rotor, 45Ti Beckman Coulter 09U4454 High speed centrifugation
Ultracentrifuge polycarbonate bottle Beckman Coulter 355622 High speed centrifugation
UranyLess staining solution Electron Microscopy Sciences 22409 Acquiring electron microscopy images

References

  1. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  2. Sakthiswary, R., Raymond, A. A. Stem cell therapy in neurodegenerative diseases: From principles to practice. Neural Regeneration Research. 7 (23), 1822-1831 (2012).
  3. Liu, Y. W., et al. Human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes restore function in infarcted hearts of non-human primates. Nature Biotechnology. 36 (7), 597-605 (2018).
  4. Aguayo-Mazzucato, C., Bonner-Weir, S. Stem cell therapy for type 1 diabetes mellitus. Nature Reviews: Endocrinology. 6 (3), 139-148 (2010).
  5. Thery, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. Journal of Extracell Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  6. Raposo, G., Stoorvogel, W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. Journal of Cell Biology. 200 (4), 373-383 (2013).
  7. Meldolesi, J. Exosomes and Ectosomes in Intercellular Communication. Current Biology. 28 (8), R435-R444 (2018).
  8. Stremersch, S., De Smedt, S. C., Raemdonck, K. Therapeutic and diagnostic applications of extracellular vesicles. Journal of Control Release. 244 (Pt B), 167-183 (2016).
  9. Lindenbergh, M. F. S., Stoorvogel, W. Antigen Presentation by Extracellular Vesicles from Professional Antigen-Presenting Cells. Annual Review of Immunology. 36, 435-459 (2018).
  10. Kunigelis, K. E., Graner, M. W. The Dichotomy of Tumor Exosomes (TEX) in Cancer Immunity: Is It All in the ConTEXt?. Vaccines (Basel). 3 (4), 1019-1051 (2015).
  11. Becher, B., Tugues, S., Greter, M. GM-CSF: From Growth Factor to Central Mediator of Tissue Inflammation. Immunity. 45 (5), 963-973 (2016).
  12. Conti, L., Gessani, S. GM-CSF in the generation of dendritic cells from human blood monocyte precursors: recent advances. Immunobiology. 213 (9-10), 859-870 (2008).
  13. Higano, C. S., et al. Integrated data from 2 randomized, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trials of active cellular immunotherapy with sipuleucel-T in advanced prostate cancer. Cancer. 115 (16), 3670-3679 (2009).
  14. Yan, W. L., Shen, K. Y., Tien, C. Y., Chen, Y. A., Liu, S. J. Recent progress in GM-CSF-based cancer immunotherapy. Immunotherapy. 9 (4), 347-360 (2017).
  15. Dranoff, G., et al. Vaccination with irradiated tumor cells engineered to secrete murine granulocyte-macrophage colony-stimulating factor stimulates potent, specific, and long-lasting anti-tumor immunity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (8), 3539-3543 (1993).
  16. Tremml, G., Singer, M., Malavarca, R. Chapter 1, Unit 1C 4, Culture of mouse embryonic stem cells. Current Protocols in Stem Cell Biology. , (2008).
  17. Kirsch, P., Hafner, M., Zentgraf, H., Schilling, L. Time course of fluorescence intensity and protein expression in HeLa cells stably transfected with hrGFP. Molecules and Cells. 15 (3), 341-348 (2003).
  18. Zeng, X., et al. Stable expression of hrGFP by mouse embryonic stem cells: promoter activity in the undifferentiated state and during dopaminergic neural differentiation. Stem Cells. 21 (6), 647-653 (2003).
  19. Yaddanapudi, K., et al. Vaccination with embryonic stem cells protects against lung cancer: is a broad-spectrum prophylactic vaccine against cancer possible?. PLoS One. 7 (7), e42289 (2012).
  20. Dalby, B., et al. Advanced transfection with Lipofectamine 2000 reagent: primary neurons, siRNA, and high-throughput applications. Methods. 33 (2), 95-103 (2004).
  21. Thery, C., Amigorena, S., Raposo, G., Clayton, A. Chapter 3, Unit 3 22, Isolation and characterization of exosomes from cell culture supernatants and biological fluids. Current Protocols in Cell Biology. , (2006).
  22. Zhang, X., et al. Exosomes for Immunoregulation and Therapeutic Intervention in Cancer. Journal of Cancer. 7 (9), 1081-1087 (2016).
  23. Bunggulawa, E. J., et al. Recent advancements in the use of exosomes as drug delivery systems. Journal of Nanobiotechnology. 16 (1), 81 (2018).
  24. Schlesinger, S., Lee, A. H., Wang, G. Z., Green, L., Goff, S. P. Proviral silencing in embryonic cells is regulated by Yin Yang 1. Cell Reports. 4 (1), 50-58 (2013).
  25. Dranoff, G. GM-CSF-based cancer vaccines. Immunological Reviews. 188, 147-154 (2002).
  26. Park, Y. G., et al. Effects of Feeder Cell Types on Culture of Mouse Embryonic Stem Cell In Vitro. Development and Reproduction. 19 (3), 119-126 (2015).
  27. Lin, S., Talbot, P. Methods for culturing mouse and human embryonic stem cells. Methods in Molecular Biology. 690, 31-56 (2011).
  28. Yaddanapudi, K., et al. Exosomes from GM-CSF expressing embryonic stem cells are an effective prophylactic vaccine for cancer prevention. OncoImmunology. 8 (3), 1561119 (2019).
check_url/kr/60170?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Meng, S., Whitt, A. G., Tu, A., Eaton, J. W., Li, C., Yaddanapudi, K. Isolation of Exosome-Enriched Extracellular Vesicles Carrying Granulocyte-Macrophage Colony-Stimulating Factor from Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (177), e60170, doi:10.3791/60170 (2021).

View Video