Summary

En murinmodell av fostereksponering for maternal betennelse for å studere effekten av akutt chorioamnionitt på nyfødt tarmutvikling

Published: June 24, 2020
doi:

Summary

Vi utviklet en modell av chorioamnionitis for å simulere fostereksponering for mors betennelse (FEMI) uten komplikasjoner av levende organismer for å undersøke effekten av FEMI på utviklingen av avkommets tarmkanal. Dette gjør det mulig å studere mekanistiske årsaker til utvikling av tarmskade etter chorioamnionitis.

Abstract

Chorioamnionitis er en vanlig utfelling av preterm fødsel og er forbundet med mange av morbiditeter av prematuritet, inkludert nekrotiserende enterokolitt (NEC). Imidlertid er det ennå ikke oppdaget en mekanistisk kobling mellom disse to forholdene. Vi har tatt i bruk en murinmodell av chorioamnionitt som involverer lipopolysakkarid (LPS)-indusert fostereksponering for mors betennelse (FEMI). Denne modellen av FEMI induserer en steril mors, placental og fosterinflammatorisk kaskade, som også er tilstede i mange tilfeller av klinisk chorioamnionitis. Selv om modeller eksisterer som bruker levende bakterier og mer nøyaktig etterligner patofysiologien til en stigende infeksjon som resulterer i chorioamnionitis, kan disse metodene forårsake indirekte effekter på utviklingen av den umodne tarmkanalen og tilhørende utviklende mikrobiom. Ved hjelp av denne protokollen har vi vist at LPS-indusert FEMI resulterer i en doseavhengig økning i graviditetstap og preterm fødsel, samt forstyrrelse av normal tarmutvikling hos avkom. Videre har vi vist at FEMI øker tarmskaden og serumcytokiner i avkom betydelig, samtidig som de reduserer beger og Paneth-celler, som begge gir en første linje med medfødt immunitet mot tarmbetennelse. Selv om en lignende modell av LPS-indusert FEMI har blitt brukt til å modellere sammenhengen mellom chorioamnionitis og påfølgende abnormiteter i sentralnervesystemet, til vår kunnskap, er denne protokollen den første til å forsøke å belyse en mekanistisk kobling mellom chorioamnionitis og senere perturbasjoner i tarmutvikling som en potensiell kobling mellom chorioamnionitis og NEC.

Introduction

De chorioniske membranene spiller en integrert rolle i pattedyr graviditet. De inkluderer kor og amnion, som tjener flere funksjoner. De omgir og beskytter fosteret, letter parakrinesignalering mellom mors og fosterrom1, og skaper lokale tilbakemeldingsløkker i de chorioniske membranene, som kan være involvert i å initiere parturition1. Nåværende forståelse av membranene indikerer at fosteret gir strukturell barrierefunksjon, og koreksjonen gir en immunologisk buffer primært for å beskytte det utviklende fosteret fra mors immunsystem2. Betennelse i disse membranene er kjent som chorioamnionitis. Historisk ble diagnosen klinisk chorioamnionitis gjort etter tilstedeværelsen av mors feber pluss ett eller flere foster- eller mors kliniske funn3,4. Men selv om denne definisjonen er klinisk nyttig, har mangelen på presisjon gjort chorioamnionitis forskning utfordrende. I 2015, i et forsøk på å avklare diagnosen, definerte et ekspertpanelverksted av Eunice Kennedy Shriver National Institute for Child Health and Human Development chorioamnionitis som intrauterin betennelse, eller infeksjon, eller begge (trippel I)3. Denne avklaringen er viktig fordi selv om mikrobiell indusert infeksjon er en viktig årsak til livmor/fosterbetennelse, forekommer den sjeldnere enn steril livmor/fosterbetennelse5,6,7. Totalt sett er chorioamnionitis fortsatt et betydelig folkehelseproblem, som det ses i 2 \ u20124% av terminleveranser og 25 \ u201230% av premature leveranser8,9.

Chorioamnionitis kan ha betydelige effekter på fosteret og neonatet. Det har blitt godt dokumentert i litteraturen at chorioamnionitis er forbundet med økt risiko for mange av sykelighetene i prematuritet, inkludert bronkopulmonal dysplasi10, cerebral hvit materieskade11, intraventricular blødning12, retinopati av prematuritet13, og både mistenkt og bekreftet tidlig start neonatal sepsis14,15. Som vi er interessert i skade- og reparasjonsmekanismer i den umodne tarmkanalen, er det viktig å merke seg at chorioamnionitis også er forbundet med senere utvikling av nekrotiserende enterokolitt (NEC)15,16. NEC er en ødeleggende gastrointestinal sykdom hos premature spedbarn som resulterer i en dysregulert vertsrespons på betennelse og påfølgende intestinal nekrose17. Hvert år påvirker NEC over 4000 spedbarn i USA, og opptil en tredjedel av disse spedbarnene dør av sykdommen18. Patogenesen av NEC innebærer sannsynligvis en kombinasjon av intestinal umodenhet, dysregulering av det umodne immunsystemet, tarmbetennelse og bakteriell translokasjon19, som kulminerer i en endelig felles vei for tarmnekrose. Det er viktig at utbruddet av NEC ofte oppstår uker etter fødselen og potensiell eksponering for chorioamnionitis, noe som gjør den mekanistiske koblingen mellom chorioamnionitis og påfølgende utvikling av NEC uklar20. En potensiell mekanisme som chorioamnionitis kan bidra til patofysiologien til NEC er gjennom oppregulering av mors immunsystem, og produserer deretter en sterk fosterinflammatorisk respons som kan forstyrre normale fosterutviklingsmønstre21,22,23.

Flere pattedyrmodeller av chorioamnionitis finnes hos gnagere og sauer24,25,26,27,28,29,30,31,32. Det finnes imidlertid få data om utviklingen av tarmkanalen utover den første nyfødte perioden etter chorioamnionitis-indusert fostereksponering for mors betennelse (FEMI). For å utforske forholdet mellom FEMI og påfølgende utvikling av skade i den umodne tarmkanalen, har vi tilpasset den lipopolysakkarid (LPS)-induserte FEMI-modellen. Lipopolysakkarider er en viktig del av den ekstracellulære overflaten på gram negative bakterier og er et potent stimulerende middel i det medfødte immunsystemet til flere eukaryote arter, inkludert mennesker33. Maternal LPS injeksjon resulterer i en steril inflammatorisk kaskade uten forvirrende effekter av levende bakterier, og det er en veletablert modell for induksjon av preterm fødsel34, samt en modell av akutt chorioamnionitis og fosteret inflammatorisk respons syndrom (FIRS), som er den mest alvorlige formen for chorioamnionitis24,35. Det har også vist seg å indusere både cerebral hvit og grå materie skade i en sauemodell36 og en murine modell37,38,39,40. Men så vidt vi vet, er vi de første til å bruke denne modellen av chorioamnionitis og FEMI for å undersøke dens effekter på utviklingen av mage-tarmkanalen forbi fødselen, samt å undersøke en mulig mekanistisk sammenheng mellom chorioamnionitis og senere utvikling av NEC41,42.

Protocol

Alle dyreprosedyrer ble godkjent av University of Iowa Institutional Animal Care and Use Committee (Protocol #8041401). Alle dyrene ble plassert i en forening for vurdering og akkreditering av laboratorie dyrepleie (AALAC) godkjent vivarium ved Universitetet i Iowa. Alle mus var vill type stamme C57Bl /6J. 1. Etablering av FEMI hos gravide mus LPS-forberedelse Bruk LPS avledet fra Escherichia coli O55:B5 (lagerkonsentrasjon 2 mg/ml). Fortynn LPS-lagerkonse…

Representative Results

Eksponering for FEMI på embryonal dag 15 fører til et doseavhengig tap av graviditet og en doseavhengig grad av preterm labor (Figur 1)42. For forsøkene valgte vi å bruke en LPS-dose på 100 μg/kg for å minimere graviditetstap og prematuritet (50% tap mellom både prematuritet og intrauterin fosterdemping) mens vi utsatte fostrene for en betydelig inflammatorisk fornærmelse. Ved hjelp av denne tilnærmingen undersøkte vi deretter ef…

Discussion

Chorioamnionitis påvirker 2\u20124% av perioden og 25\u201230% av premature leveranser8,9. Imidlertid kan virkningen av chorioamnionitis strekke seg lenge etter fødselen, da det har vist seg å ha betydelige effekter på fosteret og neonat10,11,12,13,14,15,</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble delvis støttet gjennom National Institutes of Health (DK097335 &T32AI007260) og University of Iowa Stead Family Department of Pediatrics.

Materials

10% neutral buffered formalin Sigma HT501128
Alcian blue stain Newcomer supply 1003A
C57Bl6/J mice Jackson Laboratories 664
Ethanol Decon labs 2701
HCl Sigma H1758
Hematoxylin stain Leica 381562
LPS Sigma L2880
NaHCO3 Sigma S6014
Nikon Eclipse Ni-U Microscope Nikon 2CE-MQVJ-1
Periodic Acid ACROS H5106 CAS# 10450-59-9
RNAlater Thermofisher Am7021
Schiff's reagent Sigma S5133
Secor Imager 2400 Meso Scale Discovery (MSD)
V-Plex Assay Meso Scale Discovery (MSD)
Xylene Sigma 534056

References

  1. Myatt, L., Sun, K. Role of fetal membranes in signaling of fetal maturation and parturition. International Journal of Developmental Biology. 54 (2-3), 545-553 (2010).
  2. Verbruggen, S. W., Oyen, M. L., Phillips, A. T., Nowlan, N. C. Function and failure of the fetal membrane: Modelling the mechanics of the chorion and amnion. PLoS One. 12 (3), 0171588 (2017).
  3. Higgins, R. D., et al. Evaluation and Management of Women and Newborns With a Maternal Diagnosis of Chorioamnionitis: Summary of a Workshop. Obstetrics & Gynecology. 127 (3), 426-436 (2016).
  4. Peng, C. C., Chang, J. H., Lin, H. Y., Cheng, P. J., Su, B. H. Intrauterine inflammation, infection, or both (Triple I): A new concept for chorioamnionitis. Pediatrics and Neonatology. 59 (3), 231-237 (2018).
  5. Romero, R., et al. Prevalence and clinical significance of sterile intra-amniotic inflammation in patients with preterm labor and intact membranes. American Journal of Reproductive Immunology. 72 (5), 458-474 (2014).
  6. Romero, R., et al. Sterile intra-amniotic inflammation in asymptomatic patients with a sonographic short cervix: prevalence and clinical significance. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal. , 1-17 (2014).
  7. Romero, R., et al. Sterile and microbial-associated intra-amniotic inflammation in preterm prelabor rupture of membranes. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine. 28 (12), 1394-1409 (2015).
  8. Goldenberg, R. L., Culhane, J. F., Iams, J. D., Romero, R. Epidemiology and causes of preterm birth. Lancet. 371 (9606), 75-84 (2008).
  9. Erdemir, G., et al. Histological chorioamnionitis: effects on premature delivery and neonatal prognosis. Pediatrics and Neonatology. 54 (4), 267-274 (2013).
  10. Metcalfe, A., Lisonkova, S., Sabr, Y., Stritzke, A., Joseph, K. S. Neonatal respiratory morbidity following exposure to chorioamnionitis. BMC Pediatrics. 17 (1), 128 (2017).
  11. Anblagan, D., et al. Association between preterm brain injury and exposure to chorioamnionitis during fetal life. Scientific Reports. 6, 37932 (2016).
  12. Villamor-Martinez, E., et al. Corrigendum: Chorioamnionitis Is a Risk Factor for Intraventricular Hemorrhage in Preterm Infants: A Systematic Review and Meta-Analysis. Frontiers in Physiology. 10, 102 (2019).
  13. Villamor-Martinez, E., et al. Chorioamnionitis as a risk factor for retinopathy of prematurity: An updated systematic review and meta-analysis. PLoS One. 13 (10), 0205838 (2018).
  14. Randis, T. M., et al. Incidence of early-onset sepsis in infants born to women with clinical chorioamnionitis. Journal of Perinatal Medicine. 46 (8), 926-933 (2018).
  15. Rodrigo, F. G. M., Henriquez F, G. G., Aloy, F. J., Perez, G. A. A. Outcomes of very-low-birth-weight infants exposed to maternal clinical chorioamnionitis: a multicentre study. Neonatology. 106 (3), 229-234 (2014).
  16. Been, J. V., Lievense, S., Zimmermann, L. J., Kramer, B. W., Wolfs, T. G. Chorioamnionitis as a risk factor for necrotizing enterocolitis: a systematic review and meta-analysis. Journal of Pediatrics. 162 (2), 236-242 (2013).
  17. Tanner, S. M., et al. Pathogenesis of necrotizing enterocolitis: modeling the innate immune response. American Journal of Pathology. 185 (1), 4-16 (2015).
  18. Fitzgibbons, S. C., et al. Mortality of necrotizing enterocolitis expressed by birth weight categories. Journal of Pediatric Surgery. 44 (6), 1075-1076 (2009).
  19. Vongbhavit, K., Underwood, M. A. Prevention of Necrotizing Enterocolitis Through Manipulation of the Intestinal Microbiota of the Premature Infant. Clinical Therapeutics. 38 (4), 716-732 (2016).
  20. Yee, W. H., et al. Incidence and timing of presentation of necrotizing enterocolitis in preterm infants. Pediatrics. 129 (2), 298-304 (2012).
  21. Gantert, M., et al. Chorioamnionitis: a multiorgan disease of the fetus. Journal of Perinatology. 30, 21-30 (2010).
  22. Hudalla, H., et al. LPS-induced maternal inflammation promotes fetal leukocyte recruitment and prenatal organ infiltration in mice. Pediatric Research. 84 (5), 757-764 (2018).
  23. Yamada, N., et al. Histological severity of fetal inflammation is useful in predicting neonatal outcome. Placenta. 36 (12), 1490-1493 (2015).
  24. Wolfe, K. B., et al. Modulation of lipopolysaccharide-induced chorioamnionitis in fetal sheep by maternal betamethasone. Reproductive Sciences. 20 (12), 1447-1454 (2013).
  25. Normann, E., et al. A novel mouse model of Ureaplasma-induced perinatal inflammation: effects on lung and brain injury. Pediatric Research. 65 (4), 430-436 (2009).
  26. Burd, I., Brown, A., Gonzalez, J. M., Chai, J., Elovitz, M. A. A mouse model of term chorioamnionitis: unraveling causes of adverse neurological outcomes. Reproductive Sciences. 18 (9), 900-907 (2011).
  27. Dell’Ovo, V., et al. An animal model for chorioamnionitis at term. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 213 (3), 387 (2015).
  28. Randis, T. M., et al. Group B Streptococcus beta-hemolysin/cytolysin breaches maternal-fetal barriers to cause preterm birth and intrauterine fetal demise in vivo. Journal of Infectious Diseases. 210 (2), 265-273 (2014).
  29. Breen, K., et al. TLR-4-dependent and -independent mechanisms of fetal brain injury in the setting of preterm birth. Reproductive Sciences. 19 (8), 839-850 (2012).
  30. Burd, I., Balakrishnan, B., Kannan, S. Models of fetal brain injury, intrauterine inflammation, and preterm birth. American Journal of Reproductive Immunology. 67 (4), 287-294 (2012).
  31. Agrawal, V., et al. Role of Notch signaling during lipopolysaccharide-induced preterm labor. Journal of Leukocyte Biology. 100 (2), 261-274 (2016).
  32. Filipovich, Y., Klein, J., Zhou, Y., Hirsch, E. Maternal and fetal roles in bacterially induced preterm labor in the mouse. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (3), 381-389 (2016).
  33. Alexander, C., Rietschel, E. T. Bacterial lipopolysaccharides and innate immunity. Journal of Endotoxin Research. 7 (3), 167-202 (2001).
  34. McCarthy, R., et al. Mouse models of preterm birth: suggested assessment and reporting guidelines. Biology of Reproduction. 99 (5), 922-937 (2018).
  35. Rueda, C. M., et al. Lipopolysaccharide-Induced Chorioamnionitis Promotes IL-1-Dependent Inflammatory FOXP3+ CD4+ T Cells in the Fetal Rhesus Macaque. Journal of Immunology. 196 (9), 3706-3715 (2016).
  36. Gavilanes, A. W., et al. Chorioamnionitis induced by intraamniotic lipopolysaccharide resulted in an interval-dependent increase in central nervous system injury in the fetal sheep. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 200 (4), 431-438 (2009).
  37. Boksa, P. Effects of prenatal infection on brain development and behavior: a review of findings from animal models. Brain, Behavior, and Immunity. 24 (6), 881-897 (2010).
  38. Knuesel, I., et al. Maternal immune activation and abnormal brain development across CNS disorders. Nature Reviews Neurology. 10 (11), 643-660 (2014).
  39. Garay, P. A., Hsiao, E. Y., Patterson, P. H., McAllister, A. K. Maternal immune activation causes age- and region-specific changes in brain cytokines in offspring throughout development. Brain, Behavior, and Immunity. 31, 54-68 (2013).
  40. Smith, S. E., Li, J., Garbett, K., Mirnics, K., Patterson, P. H. Maternal immune activation alters fetal brain development through interleukin-6. Journal of Neuroscience. 27 (40), 10695-10702 (2007).
  41. Elgin, T. G., et al. Fetal exposure to maternal inflammation interrupts murine intestinal development and increases susceptibility to neonatal intestinal injury. Disease Models & Mechanisms. 12 (10), (2019).
  42. Fricke, E. M., et al. Lipopolysaccharide-induced maternal inflammation induces direct placental injury without alteration in placental blood flow and induces a secondary fetal intestinal injury that persists into adulthood. American Journal of Reproductive Immunology. 79 (5), 12816 (2018).
  43. Wynn, J. L., et al. Targeting IL-17A attenuates neonatal sepsis mortality induced by IL-18. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (19), 2627-2635 (2016).
  44. Brown, K. S., et al. Tumor necrosis factor induces developmental stage-dependent structural changes in the immature small intestine. Mediators of Inflammation. 2014, 852378 (2014).
  45. McElroy, S. J., et al. The ErbB4 ligand neuregulin-4 protects against experimental necrotizing enterocolitis. American Journal of Pathology. 184 (10), 2768-2778 (2014).
  46. McElroy, S. J., et al. Tumor necrosis factor receptor 1-dependent depletion of mucus in immature small intestine: a potential role in neonatal necrotizing enterocolitis. American Journal of Physiology – Gastrointestinal and Liver Physiology. 301 (4), 656 (2011).
  47. Stanford, A. H., et al. A direct comparison of mouse and human intestinal development using epithelial gene expression patterns. Pediatric Research. , (2019).
  48. McElroy, S. J., Weitkamp, J. H. Innate Immunity in the Small Intestine of the Preterm Infant. NeoReviews. 12 (9), 517-526 (2011).
  49. McElroy, S. J., Underwood, M. A., Sherman, M. P. Paneth cells and necrotizing enterocolitis: a novel hypothesis for disease pathogenesis. Neonatology. 103 (1), 10-20 (2013).
  50. Park, B. S., Lee, J. O. Recognition of lipopolysaccharide pattern by TLR4 complexes. Experimental & Molecular Medicine. 45, 66 (2013).
  51. Lester, S. N., Li, K. Toll-like receptors in antiviral innate immunity. Journal of Molecular Biology. 426 (6), 1246-1264 (2014).
  52. Pott, J., et al. Age-dependent TLR3 expression of the intestinal epithelium contributes to rotavirus susceptibility. PLOS Pathogens. 8 (5), 1002670 (2012).
check_url/kr/61464?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Juber, B. A., Elgin, T. G., Fricke, E. M., Gong, H., Reese, J., McElroy, S. J. A Murine Model of Fetal Exposure to Maternal Inflammation to Study the Effects of Acute Chorioamnionitis on Newborn Intestinal Development. J. Vis. Exp. (160), e61464, doi:10.3791/61464 (2020).

View Video