Summary

Unraveling rollen som diskrete områder av rottehjernen i regulering av eggløsning gjennom reversibel inaktivering av tetrodtoksin mikroinjeksjoner

Published: September 03, 2020
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver byggingen av et rimelig mikroinjeksjonssystem, dets stereotoksiske implantasjon i dyphjernestrukturer og prosedyren for tidsbestemte mikroinjeksjoner av tetrodotoxin hos våken og uhemmet rotter. Målet er å avsløre deltakelsen av hypothalamus strukturer i regulering av eggløsning ved å hemme deres nevrale aktivitet.

Abstract

Mange eksperimentelle tilnærminger har blitt brukt til å studere hjernens rolle i reguleringen av eggløsning. Eksempler er lesjon og døvhet av nevrongrupper, som begge er invasive metoder som permanent svekker integriteten til målområdet. Disse metodene ledsages av sikkerhetseffekter som kan påvirke analysen av akutte og tidsmessige reguleringsmekanismer. Stereotoksisk implantasjon av guidekanyler rettet mot bestemte hjerneregioner, etterfulgt av en gjenopprettingsperiode, gjør det mulig for forskere å mikroinjektere forskjellige stoffer etter at de uønskede effektene av operasjonen er forsvunnet. Tetrodotoxin har blitt brukt til å bestemme rollene til flere hjerneområder i ulike fysiologiske prosesser fordi det midlertidig hemmer de natriumavhengige virkningspotensialene, og dermed blokkerer all nevral aktivitet i målområdet. Denne protokollen kombinerer denne metoden med strategier for vurdering av østrogen syklus og eggløsning for å avsløre rollen som diskrete hjerneregioner i regulering av eggløsning på bestemte tidspunkter av et gitt stadium av østrogensyklusen. Våken og uhemmet rotter (Rattus norvegicus) ble brukt for å unngå de blokkerende effektene som bedøvelse og stresshormoner utøver på eggløsning. Denne protokollen kan enkelt tilpasses andre arter, hjernemål og farmakologiske midler for å studere ulike fysiologiske prosesser. Fremtidige forbedringer av denne metoden inkluderer utformingen av et mikroinjeksjonssystem ved hjelp av glass kapillærer med liten diameter i stedet for guidekanyler. Dette vil redusere mengden vev som er skadet under implantasjonen og redusere spredningen av de tilsatte stoffene utenfor målområdet.

Introduction

Eggløsning er prosessen der en eller flere modne oocytter frigjøres fra eggstokkene en gang hver estral / menstruasjonssyklus. Siden alle pattedyrarter er avhengige av produksjon av gameter for å avle, har forståelsen av mekanismene som regulerer eggløsning en stor innvirkning på områder som spenner fra biomedisin, husdyrindustrien og vedlikehold av truede arter. Eggløsning er regulert av hypothalamus-hypofyse-ovarieaksen, som involverer flere hypothalamus og ekstra hypothalamus områder, gonadotropene i fremre hypofyse og theca og granulosa celler som sammen med oocytter danner eggstokkene follikler inne i eggstokkene1.

Ovariefoskler vokser, utvikler og til slutt eggløsning som svar på tonic og phasic sekresjon av follikkelstimulerende hormon og luteiniserende hormon, de to gonadotropins utskilt av gonadotropes. Mønsteret av gonadotropin sekresjon er avgjørende for riktig follikulær utvikling og eggløsning, og det er regulert av gonadotropin-frigjørende hormon (GnRH)1,2. Dette nevropeptidet syntetiseres av nevroner spredt over hele basal diencephalon og utskilles deretter til portalvaskulaturen som forbinder hypothalamus og den fremre hypofysen. Sekretorisk aktivitet av GnRH-nevronene er igjen modulert av synaptiske innganger som oppstår fra forskjellige hjernestrukturer. Disse strukturene formidler informasjon om tilstanden til organismens ytre og indre miljø, inkludert tilgjengeligheten av mat, lengden på fotoperioden og konsentrasjonen av hormoner i blodet. I denne forstand former de reproduksjonsmønsteret til hver art, og de spesifikke rollene til slike strukturer må bestemmes for å forstå mekanismene som styrer eggløsningen riktig. Som et eksempel har det vist seg at svingningene i østradiolnivåer under østrogensyklusen regulerer sekresjonen av GnRH; GnRH-nevroner uttrykker imidlertid ikke østradiolreseptorens isoform som trengs for å oppdage slike endringer. To populasjoner av nevroner som uttrykker disse reseptorene ligger i rostral periventrikulær region i den tredje ventrikelen og i henholdsvis arcuate kjernen, og stablish synapser med GnRH-nevroner. Det er bevis som tyder på at disse nevronene tolker konsentrasjonen av østradiol og deretter stimulerer aktiviteten til GnRH-nevroner ved å frigjøre kisspeptin, en potent induktor av GnRH-sekresjon3.

Eksperimenter som involverertermiske eller kjemiske lesjoner, samt mekanisk døvhet, tillot forskere å bestemme involvering av flere hjernestrukturer i regulering av eggløsning4,5,6,7,8,9,10,11,12 . Disse eksperimentene har imidlertid ulempen med å være invasiv og traumatisk, noe som krever flere dager med utvinning før de evaluerer effekten av behandlingen, noe som hindrer analysen av de akutte effektene av behandlingen. I tillegg påvirker de permanent de målrettede områdene og forstyrrer andre fysiologiske prosesser på lang sikt. På grunn av disse problemene er resultatene av disse eksperimentene vanligvis skjult av de homeostatiske kompenserende mekanismene i dyrets kropp og utvinning av nøyaktig informasjon om den tidsmessige regulatoriske dynamikken der området er involvert, er ganske vanskelig.

Mikroinjeksjonen av legemidler som midlertidig forstyrrer aktiviteten til nevroner gjennom guidekanyler, er et passende alternativ som overgår ulempene nevnt ovenfor. Kanylene kan plasseres i hvilken som helst hjerneregion ved en stereotaxisk kirurgi, slik at forskeren kan starte medikamentbehandlingen etter at de forvirrende effektene av operasjonen forsvinner. Den tidsbestemte mikroinjeksjonen av stoffene gjør det mulig for forskere å teste hypoteser om regionens bidrag til et bestemt trinn i prosessen og kan utføres i våken beherskede eller fritt bevegelige dyr. En rekke stoffer, inkludert lokalbedøvelse, agonister, antagonister, inverse agonister og biologiske giftstoffer som tetrodotoxin (TTX) kan mikroinjiseres i interesseområdet på bestemte tidspunkter.

TTX er et biologisk toksin syntetisert av bakterier som lever i pufferfishens kropp, så vel som andre vertebrater og hvirvelløse dyr. TTX stiller nevral aktivitet gjennom selektiv og forbigående blokade av natriumkanaler, noe som resulterer i hemming av natriumavhengige virkningspotensialer. I nærvær av TTX opplever celler en endring i depolariseringsfasen og er dermed ikke spennende, men forblir i live. Blokkeringseffekten av TTX forklares av sin molekylære sammensetning: En guanidiniumgruppe er i stand til å passere gjennom det ekstracellulære aspektet av natriumkanalen, men resten av molekylet kan ikke passere på grunn av størrelsen, så den sitter fast og blokkerer kanalen13,14,15,16,17 . Virkningsmekanismen til TTX tillot bruk som et verktøy for å studere nervesystemet både in vitro og in vivo. Intracerebral injeksjon av dette toksinet har blitt brukt til å studere rollen som diskrete hjerneområder i flere prosesser som minne oppbevaring18, søvn og opphisselse19, sted anerkjennelse20, romlignavigasjon 21, narkotikamisbruk22, termoregulering23, utvikling av schizofreni24, seksuell atferd25 og regulering av eggløsning26 blant andre. I denne protokollen beskriver vi effekten på eggløsning av forbigående inaktivering av hypothalamus nuklei av TTX mikroinjeksjon hos våken og uhemmet rotter.

Protocol

Prosedyrer som involverer dyr ble godkjent av fakultetets etikkkomité de Estudios Superiores Zaragoza, UNAM. Denne institusjonen opererer i henhold til de meksikanske reglene for dyrehåndtering, Offisiell norm: NOM-062-ZOO-1999, som er enig med internasjonale retningslinjer. 1. Bygging av bilaterale kanyler Trekk ut skaftet i rustfritt stål fra navet på to 23 G hypodermiske nåler ved hjelp av trykk pinsett, og fjern deretter eventuelt gjenværende lim ved hjelp av et skalpellbla…

Representative Results

Protokollen beskrevet ovenfor ble testet ved å evaluere effekten av en enkelt TTX eller kjøretøy (kunstig cerebrospinalvæske; ACSF) mikroinjeksjon i en av to forskjellige kjerner kjent for å være involvert i regulering av eggløsning i rotte: suprachiasmatic og arcuate kjernen. Den suprachiasmatiske kjernen ble valgt siden den inneholder den sentrale sirkadiske pacemakeren hos pattedyr. Det er involvert i regulering av sykliske hendelser som sekresjon av gonadotropiner. Den arcuate kjernen ble valgt fordi den inneh…

Discussion

Denne artikkelen beskriver en metode for å midlertidig inaktivere, til enhver tid, en diskret region i hjernen til våken og uhemmet rotter. En enkel metode for å spore deres østrogen syklus og vurdere eggløsning er også gitt. Denne protokollen tillater en enkel analyse av bidraget fra spesifikke hjerneregioner til mekanismene som driver eggløsning ved å sammenligne det ovulatoriske utfallet av TTX-behandlede dyr med de kjøretøybehandlede. Med unntak av det stereotaktiske instrumentet og mikroinjeksjonspumpen, s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige til Raymond Sanchez ved University of Washington for hans verdifulle hjelp i manuskriptredigering og for å M.Sc Georgina Cortés og M.Sc. Cintia Javier for deres tekniske støtte i standardiseringen av denne teknikken. Vi er også takknemlige for medlemmene av veterinærtjenestene ved Facultad de Estudios Superiores Zaragoza: MVZ. Adriana Altamirano, MVZ. Roman Hernández og MVZ. Dolores-Elizabeth Guzmán for utmerket vedlikehold og pleie av eksperimentelle dyr. Eksperimentene beskrevet i denne protokollen ble støttet av DGAPA-PAPIIT tilskuddsnummer: IN216015 og av CONACyT tilskuddsnummer: 236908 til Roberto Domínguez. Carlos-Camilo Silva er doktorgradsstudent fra Programa de Doctorado en Ciencias Biomédicas, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM) og støttes av Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (Tilskuddsnummer: 294555).

Materials

10 μL Hamilton syringes Hamilton 80314
21 G x 1" stainless steel hypdermic needle BD 305165
23 G x 1" stainless steel hypdermic needle BD 305145
30 G x 1/2" stainless steel hypdermic needle BD 305106
Artificial cerebrospinal fluid BASi MD-2400
Bone trimer Fine Science Tools 16152-12
Burr for micro drill Fine Science Tools 19007-05
Clipper Wahl
Cut-off disc Dremel SM5010
Cutting tweezers Truper 17367
Cyanocrylate glue Kola loka K-1
Dental cement Nic Tone
Enrofloxasin Senosiain
Eosin Sigma E4009
Estereoscope Zeiss
Extra fine Bonn scissors Fine Science Tools 14084-08
Face mask Lanceta HG 60036
Graefe Forceps Fine Science Tools 11050-10
Hematoxilin Sigma H3136
Hemostats Fine Science Tools 13008-12
Hot bead sterilizer Fine Science Tools 18000-45
Hydrochloric acid Sigma 320331
Hypromelose artificial tears Sophia Labs 8950015
Isoflurane Pisa Agropecuaria
Meloxicam Aranda 1183
Microinjection pump KD Scientific 788380
Monomer Nic Tone
Mototool Dremel 3000
Nitrile gloves Lanceta HG 69028
Non-Rupture Ear Bars David Kopf Instruments 855
Poly-L lysine Sigma P4707
Povidone-iodine Dermo Dine
Povidone-iodine with soap Germisin espuma
Pressure tweezers Truper 17371
Rat anesthesia mask David Kopf Instruments Model 906
Saline solution PISA
Scalpel Fine Science Tools 10004-13
Scalpel blade Fine Science Tools 10015-00
Sodium pentobarbital Pisa Agropecuaria
Standard electrode holder David Kopf Instruments 1770
Stainless steel wire American Orthodontic 856-612
Stereotaxic apparatus David Kopf Instruments Model 900LS
Surgical Sissors Fine Science Tools 14001-12
Teflon connectors Basi MD-1510
Teflon tubing Basi MF-5164
Tetrodotoxin Alomone labs T-500
Vaporizer Kent scientific VetFlo

References

  1. Herbison, A. E. Control of puberty onset and fertility by gonadotropin-releasing hormone neurons. Nature Reviews Endocrinology. 12 (8), 452-466 (2016).
  2. Fink, G., Conn, M., Freeman, E. Neuroendocrine Regulation of Pituitary Function. Neuroendocrinology in Physiology and Medicine. , 107-133 (2000).
  3. Herbison, A. E. The Gonadotropin-Releasing Hormone Pulse Generator. Endocrinology. 159 (11), 3723-3736 (2018).
  4. Morello, H., Taleisnik, S. Changes of the release of luteinizing hormone (LH) on the day of proestrus after lesions or stimulation of the raphe nuclei in rats. Brain Research. 360 (1-2), 311-317 (1985).
  5. Slusher, M. A., Critchlow, V. Effect of Midbrain Lesions on Ovulation and Adrenal Response to Stress in Female Rats. Experimental Biology and Medicine. 101 (3), 497-499 (1959).
  6. Sawyer, C. H., Haun, C. K., Hilliard, J., Radford, H. M., Kanematsu, S. Further Evidence for the Identity of Hypothalamic Areas Controlling Ovulation and Lactation in the Rabbit. Endocrinology. 73 (3), 338-344 (1963).
  7. Schiavi, R., Jutisz, M., Sakiz, E., Guillemin, R. Stimulation of Ovulation by Purified LH-Releasing Factor (LRF) in Animals Rendered Anovulatory by Hypothalamic Lesion. Experimental Biology and Medicine. 114 (2), 426-429 (1963).
  8. Bagga, N., Chhina, G. S., Mohan Kumar, V., Singh, B. Cholinergic activation of medial preoptic area by amygdala for ovulation in rat. Physiology & Behavior. 32 (1), 45-48 (1984).
  9. Barraclough, C. A., Yrarrazaval, S., Hatton, R. A Possible Hypothalamic Site of Action of Progesterone in the Facilitation of Ovulation in the Rat. Endocrinology. 75 (6), 838-845 (1964).
  10. Critchlow, V. Blockade of ovulation in the rat by mesencephalic lesions 1, 2. Endocrinology. 63 (5), 596-610 (1958).
  11. Terasawa, E., Wiegand, S. J. Effects of Hypothalamic Deafferentation on Ovulation and Estrous Cyclicity in the Female Guinea Pig. Neuroendocrinology. 26 (4), 229-248 (1978).
  12. Halász, B., Köves, K., Molnár, J. Neural control of ovulation. Human Reproduction. 3 (1), 33-37 (1988).
  13. Narahashi, T. Pharmacology of tetrodotoxin. Journal of Toxicology: Toxin Reviews. 20 (1), 67-84 (2001).
  14. Narahashi, T., Moore, J. W., Scott, W. Tetrodotoxin blockage of sodium conductance increase in lobster giant axons. The Journal of General Physiology. 47 (5), 965-974 (1964).
  15. Narahashi, T., Deguchi, T., Urakawa, N., Ohkubo, Y. Stabilization and rectification of muscle fiber membrane by tetrodotoxin. American Journal of Physiology-Legacy Content. 198 (5), 934-938 (1960).
  16. Narahashi, T. Chemicals as tools in the study of excitable membranes. Physiological Reviews. 54 (4), 813-889 (1974).
  17. Ritchie, J. M., Rogart, R. B. The binding of saxitoxin and tetrodotoxin to excitable tissue. Reviews of Physiology, Biochemistry and Pharmacology. 79 (1), 1-50 (1977).
  18. Bermudez-Rattoni, F., Introini-Collison, I. B., McGaugh, J. L. Reversible inactivation of the insular cortex by tetrodotoxin produces retrograde and anterograde amnesia for inhibitory avoidance and spatial learning. Proceedings of the National Academy of Sciences. 88 (12), 5379-5382 (1991).
  19. Tang, X., Yang, L., Liu, X., Sanford, L. D. Influence of Tetrodotoxin Inactivation of the Central Nucleus of the Amygdala on Sleep and Arousal. Sleep. 28 (8), 923-930 (2005).
  20. Klement, D., Pašt’alková, E., Fenton, A. A. Tetrodotoxin infusions into the dorsal hippocampus block non-locomotor place recognition. Hippocampus. 15 (4), 460-471 (2005).
  21. Conejo, N. M., Cimadevilla, J. M., González-Pardo, H., Méndez-Couz, M., Arias, J. L. Hippocampal Inactivation with TTX Impairs Long-Term Spatial Memory Retrieval and Modifies Brain Metabolic Activity. PLoS ONE. 8 (5), 64749 (2013).
  22. Grimm, J., Ronald, E. Dissociation of Primary and Secondary Reward-Relevant Limbic Nuclei in an Animal Model of Relapse. Neuropsychopharmacology. 22 (5), 473-479 (2000).
  23. Hasegawa, H., et al. Inhibition of the preoptic area and anterior hypothalamus by tetrodotoxin alters thermoregulatory functions in exercising rats. Journal of Applied Physiology. 98 (4), 1458-1462 (2005).
  24. Meyer, F., Louilot, A. Early Prefrontal Functional Blockade in Rats Results in Schizophrenia-Related Anomalies in Behavior and Dopamine. Neuropsychopharmacology. 37 (10), 2233-2243 (2012).
  25. Rothfeld, J. M., Harlan, R. E., Shivers, B. D. Reversible disruption of lordosis via midbrain infusions of procaine and tetrodotoxin. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 25 (4), 857-863 (1986).
  26. Silva, C., Cortés, G. D., Javier, C. Y., Flores, A., Domínguez, R. A neural circadian signal essential for ovulation is generated in the suprachiasmatic nucleus during each stage of the estrous cycle. Experimental Physiology. , (2019).
  27. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates (7th Ed). , (2014).
  28. Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal Cytology of the Laboratory Rat and Mouse. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
  29. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS ONE. 7 (4), 35538 (2012).
  30. Wirtshafter, D., Asin, K., Kent, E. W. Simple technique for midline stereotaxic surgery in the rat. Physiology & Behavior. 23 (1), 409-410 (1979).
  31. Kozai, T. D., Jaquins-Gerstl, A. S., Vazquez, A. L., Michael, A. C., Cui, X. T. Brain tissue responses to neural implants impact signal sensitivity and intervention strategies. ACS Chemical Neuroscience. 6 (1), 48-67 (2015).
  32. Kazim, S. F., Enam, S. A., Shamim, M. S. Possible detrimental effects of neurosurgical irrigation fluids on neural tissue: An evidence based analysis of various irrigants used in contemporary neurosurgical practice. International Journal of Surgery. 8 (8), 586-590 (2010).
  33. Miyajima, M., et al. Role of cerebrospinal fluid as perfusate in neuroendoscopic surgery: A basic investigation. Acta Neurochirurgica. 113, 103-107 (2012).
  34. Mori, K., et al. Potential risk of artificial cerebrospinal fluid solution without magnesium ion for cerebral irrigation and perfusion in neurosurgical practice. Neurologia Medico-Chirurgica. 53 (9), 596-600 (2013).
  35. Oka, K., Yamamoto, M., Nonaka, T., Tomonaga, M. The significance of artificial cerebrospinal fluid as perfusate and endoneurosurgery. Neurosurgery. 38 (4), (1996).
  36. James, T. A., Starr, M. S. Effects of the rate and volume of injection on the pharmacological response elicited by intraingral microapplication of drugs in the rat. Journal of Pharmacological Methods. 1 (3), 197-202 (1978).
  37. Freund, N., Manns, M., Rose, J. A method for the evaluation of intracranial tetrodotoxin injections. Journal of Neuroscience Methods. 186 (1), 25-28 (2010).
  38. Zhuravin, I. A., Bures, J. Extent of the tetrodotoxin induced blockade examined by pupillary paralysis elicited by intracerebral injection of the drug. Experimental Brain Research. 83 (3), 687-690 (1991).
  39. Myers, R. Injection of solutions into cerebral tissue: relation between volume and diffusion. Physiology and Behavior. 1 (2), 171-174 (1966).
  40. Gonzalez-Perez, O., Guerrero-Cazares, H., Quiñones-Hinojosa, A. Targeting of deep brain structures with microinjections for delivery of drugs, viral vectors, or cell transplants. Journal of Visualized Experiments. (46), e2082 (2010).
  41. McCluskey, L., Campbell, S., Anthony, D., Allan, S. M. Inflammatory responses in the rat brain in response to different methods of intra-cerebral administration. J Neuroimmunol. 194 (1-2), 27-33 (2008).
  42. Cunningham, M. G., O’Connor, R. P., Wong, S. E. Construction and implantation of a microinfusion system for sustained delivery of neuroactive agents. Journal of VisualizedExperiments. (13), e716 (2008).
  43. Akinori, A., Masamichi, S., Hiroshi, T. A new device for microinjection of drugs into the lower brain stem of conscious rats: Studies on site of action of morphine. Journal of Pharmacological Methods. 2 (4), 371-378 (1979).
  44. Malpeli, J. G. Reversible inactivation of subcortical sites by drug injection. Journal of Neuroscience Methods. 86 (2), 119-128 (1999).
  45. Yizhar, O., Fenno, L. E., Davidson, T. J., Mogri, M., Deisseroth, K. Optogenetics in neural systems. Neuron. 71 (1), 9-34 (2011).
  46. de Sousa, A. F., et al. Optogenetic reactivation of memory ensembles in the retrosplenial cortex induces systems consolidation. Proceedings of the Natural Academy of Sciences. 116 (17), 8576-8581 (2019).
  47. Beppu, K., et al. Optogenetic countering of glial acidosis suppresses glial glutamate release and ischemic brain damage. Neuron. 81 (2), 314-320 (2014).
check_url/kr/61493?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Silva, C., Bolaños-Hurtado, M., Juárez-Tapia, C., Flores, A., Arrieta-Cruz, I., Cruz, M., Domínguez, R. Unraveling the Role of Discrete Areas of the Rat Brain in the Regulation of Ovulation through Reversible Inactivation by Tetrodotoxin Microinjections. J. Vis. Exp. (163), e61493, doi:10.3791/61493 (2020).

View Video