Summary

Unraveling rollen av diskreta områden av råttahjärnan i regleringen av ägglossning genom reversibel inaktivering av tetrodotoxin mikroinjektioner

Published: September 03, 2020
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver byggandet av ett lågkostnadsmikroinjektionssystem, dess stereotaxiska implantation i djuphjärnstrukturer och förfarandet för tidsbetonade mikroinjektioner av tetrodotoxin hos vakna och obegränsade råttor. Målet är att avslöja deltagandet av hypotalamus strukturer i regleringen av ägglossning genom att hämma deras neurala aktivitet.

Abstract

Många experimentella metoder har använts för att studera hjärnans roll i regleringen av ägglossning. Exempel inkluderar lesion och deafferentation av neuronala grupper, som båda är invasiva metoder som permanent försämrar målområdets integritet. Dessa metoder åtföljs av sidoeffekter som kan påverka analysen av akuta och tidsmässiga regleringsmekanismer. Stereotaxisk implantation av guide kanyler riktade till specifika hjärnregioner, följt av en återhämtningsperiod, gör det möjligt för forskare att mikroinjektering olika läkemedel efter försvinnandet av de oönskade effekterna av operationen. Tetrodotoxin har använts för att bestämma rollerna för flera hjärnområden i olika fysiologiska processer eftersom det tillfälligt hämmar de natriumberoende åtgärdspotentialerna och därmed blockerar all neural aktivitet i målregionen. Detta protokoll kombinerar denna metod med strategier för bedömning av estrous cykeln och ägglossning för att avslöja rollen av diskreta hjärnregioner i regleringen av ägglossning vid särskilda tidpunkter av ett givet stadium av estrous cykeln. Vakna och ohämmade råttor (Rattus norvegicus) användes för att undvika de blockerande effekterna som bedövningsmedel och stresshormoner utövar på ägglossning. Detta protokoll kan enkelt anpassas till andra arter, hjärnmål och farmakologiska medel för att studera olika fysiologiska processer. Framtida förbättringar av denna metod inkluderar utformningen av ett mikroinjektionssystem med hjälp av glas kapillärer med liten diameter istället för guidekanyler. Detta kommer att minska mängden vävnad som skadas under implantationen och minska spridningen av de infunderade läkemedlen utanför målområdet.

Introduction

Ägglossning är den process genom vilken en eller flera mogna äggceller frigörs från äggstockarna en gång varje estral / menstruationscykel. Eftersom alla däggdjursarter är beroende av produktion av gameter för att odla, har förståelsen av de mekanismer som reglerar ägglossning en enorm inverkan i områden som sträcker sig från biomedicin, boskapsindustrin och underhåll av utrotningshotade arter. Ägglossning regleras av hypotalamus-hypofysen-äggstocksaxeln, som involverar flera hypotalamus och extra-hypotalamus områden, gonadotropes i främre hypofysen och theca och granulosa celler som, tillsammans med äggcellerna, bildar äggstockssäckarna inuti äggstockarna1.

Äggstockssäckar växer, utvecklas och så småningom ägglossning som svar på tonic och phasic utsöndring av follikelstimulerande hormon och luteinizing hormon, de två gonadotropiner utsöndras av gonadotropes. Mönstret av gonadotropin utsöndring är avgörande för korrekt follikulär utveckling och ägglossning och det regleras av gonadotropin-frigörande hormon (GnRH)1,2. Denna neuropeptid syntetiseras av nervceller spridda över hela den basala diencephalon och utsöndras sedan till portalvaskulaturen som länkar hypotalamus och den främre hypofysen. Den hemlighetsfulla aktiviteten hos GnRH-neuronerna moduleras i sin tur av synaptiska indata som härrör från olika hjärnstrukturer. Dessa strukturer förmedlar information om tillståndet i organismens yttre och inre miljö, inklusive tillgången på mat, fotoperiodens längd och koncentrationen av hormoner i blodet. I den meningen formar de reproduktionsmönstret för varje art och de specifika rollerna för sådana strukturer måste bestämmas för att korrekt förstå mekanismerna som styr ägglossningen. Som ett exempel har det visat sig att fluktuationerna i estradiolnivåerna under eströtcykeln reglerar utsöndring av GnRH; GnRH-neuroner uttrycker dock inte den estradiolreceptorisoid som behövs för att upptäcka sådana förändringar. Två populationer av nervceller som uttrycker dessa receptorer ligger i rostral periventricular regionen i den tredje ventrikeln och i arcuate kärnan, respektive, och stablish synapser med GnRH-nervceller. Det finns bevis som tyder på att dessa nervceller tolkar koncentrationen av estradiol och sedan stimulerar aktiviteten hos GnRH-neuroner genom att släppa kisspeptin, en potent induktor av GnRH utsöndring3.

Experiment som involverar termiska eller kemiska lesioner, liksom mekanisk deafferentation, tillät forskare att bestämma inblandning av flera hjärnstrukturer i regleringen av ägglossning4,5,6,7,8,9,10,11,12 . Dessa experiment har dock nackdelen att vara invasiva och traumatiska, vilket kräver flera dagars återhämtning innan man utvärderar effekterna av behandlingen, vilket påverkar analysen av de akuta effekterna av behandlingen. Dessutom påverkar de permanent de riktade områdena och stör andra fysiologiska processer på lång sikt. På grund av dessa problem skyms resultaten av dessa experiment vanligtvis av de homeostatiska kompensatoriska mekanismerna i djurets kropp och extraherar korrekt information om den tidsmässiga regleringsdynamiken där området är inblandat är ganska svårt.

Mikroinjektion av läkemedel som tillfälligt stör neuroners aktivitet genom guide kanyler är ett lämpligt alternativ som överträffar de nackdelar som nämns ovan. Kanylerna kan placeras i vilken hjärnregion som helst genom en stereotaxisk operation, vilket gör det möjligt för forskaren att starta läkemedelsbehandlingen efter att de förvirrande effekterna av operationen försvinner. Den tidsbestämda mikroinjektionen av läkemedlen gör det möjligt för forskare att testa hypoteser om regionens bidrag till ett visst steg i processen och kan utföras på vakna återhållna eller fritt rörliga djur. En mängd olika läkemedel, inklusive lokalbedövningsmedel, agonister, antagonister, omvända agonister och biologiska toxiner som tetrodotoxin (TTX) kan mikroinjekt injiceras i den region där det är intressant vid specifika tidpunkter.

TTX är ett biologiskt toxin som syntetiseras av bakterier som lever i pufferfishens kropp samt andra ryggradsdjur och ryggradslösa djur. TTX tystar neural aktivitet genom selektiv och övergående blockad av natriumkanaler, vilket resulterar i hämning av natriumberoende åtgärdspotentialer. I närvaro av TTX upplever cellerna en förändring i depolariseringsfasen och är därför inte upphetsande utan förblir levande. Den blockerande effekten av TTX förklaras av dess molekylära sammansättning: en guanidiniumgrupp kan passera genom den extracellulära aspekten av natriumkanalen, men resten av molekylen kan inte passera på grund av dess storlek, så den sitter fast och blockerar kanalen13,14,15,16,17 . TTX verkningsmekanism tillät dess användning som ett verktyg för att studera nervsystemet både in vitro och in vivo. Intracerebral injektion av detta toxin har använts för att studera rollen av diskreta hjärnområden i flera processer som minnesretention18, sömn och upphetsning19,platsigenkänning 20, rumslignavigering 21,drogmissbruk 22, termoregulering23, utveckling av schizofreni24, sexuelltbeteende 25 och reglering av ägglossning26 bland annat. I detta protokoll beskriver vi effekterna på ägglossning av övergående inaktivering av hypotalamus atomkärnor av TTX microinjection i vakna och ohämmade råttor.

Protocol

Djurförsök godkändes av Etikkommittén för Facultad de Estudios Superiores Zaragoza, UNAM. Denna institution verkar i strikt överensstämmelse med de mexikanska reglerna för djurhantering, officiell norm: NOM-062-ZOO-1999, som överensstämmer med internationella riktlinjer. 1. Byggande av bilaterala kanyler Extrahera den rostfria axeln från navet på två 23 G hypodermiska nålar med trycktweezers och ta sedan bort eventuellt återstående lim med hjälp av ett skalpellblad.<…

Representative Results

Det protokoll som beskrivs ovan testades genom utvärdering av effekterna av en enda TTX eller ett enda fordon (konstgjord cerebrospinalvätska; ACSF) mikroinjektion i en av två olika kärnor som är kända för att vara involverade i regleringen av ägglossning hos råttan: suprachiasmatic och arcuate kärnan. Den suprachiasmatic kärnan valdes eftersom den innehåller den centrala dygnsrytm pacemakern hos däggdjur. Det är involverat i regleringen av cykliska händelser som utsöndring av gonadotropiner. Arcuate kär…

Discussion

Denna artikel beskriver en metod för att tillfälligt inaktivera, vid varje given tidpunkt, en diskret region i hjärnan hos vakna och obegränsade råttor. En enkel metod för att spåra deras estrous cykel och bedöma ägglossning tillhandahålls också. Detta protokoll möjliggör en enkel analys av specifika hjärnregioners bidrag till de mekanismer som driver ägglossning genom att jämföra ägglossningsresultatet hos TTX-behandlade djur med de fordonsbehandlade. Med undantag för det stereotaxiska instrumentet oc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi är tacksamma mot Raymond Sanchez vid University of Washington för hans värdefulla hjälp med manuskriptredigering och till M.Sc. Georgina Cortés och M.Sc. Cintia Javier för deras tekniska stöd i standardiseringen av denna teknik. Vi är också tacksamma mot medlemmarna i veterinärtjänsterna på Facultad de Estudios Superiores Zaragoza: MVZ. Adriana Altamirano, MVZ. Roman Hernández och MVZ. Dolores-Elizabeth Guzmán för utmärkt underhåll och vård av försöksdjur. De experiment som beskrivs i detta protokoll stöddes av DGAPA-PAPIIT-bidragsnummer: 216015 och conacyt-bidragsnummer: 236908 Roberto Domínguez. Carlos-Camilo Silva är doktorand från Programa de Doctorado en Ciencias Biomédicas, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM) och stöds av Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (Anslagsnummer: 294555).

Materials

10 μL Hamilton syringes Hamilton 80314
21 G x 1" stainless steel hypdermic needle BD 305165
23 G x 1" stainless steel hypdermic needle BD 305145
30 G x 1/2" stainless steel hypdermic needle BD 305106
Artificial cerebrospinal fluid BASi MD-2400
Bone trimer Fine Science Tools 16152-12
Burr for micro drill Fine Science Tools 19007-05
Clipper Wahl
Cut-off disc Dremel SM5010
Cutting tweezers Truper 17367
Cyanocrylate glue Kola loka K-1
Dental cement Nic Tone
Enrofloxasin Senosiain
Eosin Sigma E4009
Estereoscope Zeiss
Extra fine Bonn scissors Fine Science Tools 14084-08
Face mask Lanceta HG 60036
Graefe Forceps Fine Science Tools 11050-10
Hematoxilin Sigma H3136
Hemostats Fine Science Tools 13008-12
Hot bead sterilizer Fine Science Tools 18000-45
Hydrochloric acid Sigma 320331
Hypromelose artificial tears Sophia Labs 8950015
Isoflurane Pisa Agropecuaria
Meloxicam Aranda 1183
Microinjection pump KD Scientific 788380
Monomer Nic Tone
Mototool Dremel 3000
Nitrile gloves Lanceta HG 69028
Non-Rupture Ear Bars David Kopf Instruments 855
Poly-L lysine Sigma P4707
Povidone-iodine Dermo Dine
Povidone-iodine with soap Germisin espuma
Pressure tweezers Truper 17371
Rat anesthesia mask David Kopf Instruments Model 906
Saline solution PISA
Scalpel Fine Science Tools 10004-13
Scalpel blade Fine Science Tools 10015-00
Sodium pentobarbital Pisa Agropecuaria
Standard electrode holder David Kopf Instruments 1770
Stainless steel wire American Orthodontic 856-612
Stereotaxic apparatus David Kopf Instruments Model 900LS
Surgical Sissors Fine Science Tools 14001-12
Teflon connectors Basi MD-1510
Teflon tubing Basi MF-5164
Tetrodotoxin Alomone labs T-500
Vaporizer Kent scientific VetFlo

References

  1. Herbison, A. E. Control of puberty onset and fertility by gonadotropin-releasing hormone neurons. Nature Reviews Endocrinology. 12 (8), 452-466 (2016).
  2. Fink, G., Conn, M., Freeman, E. Neuroendocrine Regulation of Pituitary Function. Neuroendocrinology in Physiology and Medicine. , 107-133 (2000).
  3. Herbison, A. E. The Gonadotropin-Releasing Hormone Pulse Generator. Endocrinology. 159 (11), 3723-3736 (2018).
  4. Morello, H., Taleisnik, S. Changes of the release of luteinizing hormone (LH) on the day of proestrus after lesions or stimulation of the raphe nuclei in rats. Brain Research. 360 (1-2), 311-317 (1985).
  5. Slusher, M. A., Critchlow, V. Effect of Midbrain Lesions on Ovulation and Adrenal Response to Stress in Female Rats. Experimental Biology and Medicine. 101 (3), 497-499 (1959).
  6. Sawyer, C. H., Haun, C. K., Hilliard, J., Radford, H. M., Kanematsu, S. Further Evidence for the Identity of Hypothalamic Areas Controlling Ovulation and Lactation in the Rabbit. Endocrinology. 73 (3), 338-344 (1963).
  7. Schiavi, R., Jutisz, M., Sakiz, E., Guillemin, R. Stimulation of Ovulation by Purified LH-Releasing Factor (LRF) in Animals Rendered Anovulatory by Hypothalamic Lesion. Experimental Biology and Medicine. 114 (2), 426-429 (1963).
  8. Bagga, N., Chhina, G. S., Mohan Kumar, V., Singh, B. Cholinergic activation of medial preoptic area by amygdala for ovulation in rat. Physiology & Behavior. 32 (1), 45-48 (1984).
  9. Barraclough, C. A., Yrarrazaval, S., Hatton, R. A Possible Hypothalamic Site of Action of Progesterone in the Facilitation of Ovulation in the Rat. Endocrinology. 75 (6), 838-845 (1964).
  10. Critchlow, V. Blockade of ovulation in the rat by mesencephalic lesions 1, 2. Endocrinology. 63 (5), 596-610 (1958).
  11. Terasawa, E., Wiegand, S. J. Effects of Hypothalamic Deafferentation on Ovulation and Estrous Cyclicity in the Female Guinea Pig. Neuroendocrinology. 26 (4), 229-248 (1978).
  12. Halász, B., Köves, K., Molnár, J. Neural control of ovulation. Human Reproduction. 3 (1), 33-37 (1988).
  13. Narahashi, T. Pharmacology of tetrodotoxin. Journal of Toxicology: Toxin Reviews. 20 (1), 67-84 (2001).
  14. Narahashi, T., Moore, J. W., Scott, W. Tetrodotoxin blockage of sodium conductance increase in lobster giant axons. The Journal of General Physiology. 47 (5), 965-974 (1964).
  15. Narahashi, T., Deguchi, T., Urakawa, N., Ohkubo, Y. Stabilization and rectification of muscle fiber membrane by tetrodotoxin. American Journal of Physiology-Legacy Content. 198 (5), 934-938 (1960).
  16. Narahashi, T. Chemicals as tools in the study of excitable membranes. Physiological Reviews. 54 (4), 813-889 (1974).
  17. Ritchie, J. M., Rogart, R. B. The binding of saxitoxin and tetrodotoxin to excitable tissue. Reviews of Physiology, Biochemistry and Pharmacology. 79 (1), 1-50 (1977).
  18. Bermudez-Rattoni, F., Introini-Collison, I. B., McGaugh, J. L. Reversible inactivation of the insular cortex by tetrodotoxin produces retrograde and anterograde amnesia for inhibitory avoidance and spatial learning. Proceedings of the National Academy of Sciences. 88 (12), 5379-5382 (1991).
  19. Tang, X., Yang, L., Liu, X., Sanford, L. D. Influence of Tetrodotoxin Inactivation of the Central Nucleus of the Amygdala on Sleep and Arousal. Sleep. 28 (8), 923-930 (2005).
  20. Klement, D., Pašt’alková, E., Fenton, A. A. Tetrodotoxin infusions into the dorsal hippocampus block non-locomotor place recognition. Hippocampus. 15 (4), 460-471 (2005).
  21. Conejo, N. M., Cimadevilla, J. M., González-Pardo, H., Méndez-Couz, M., Arias, J. L. Hippocampal Inactivation with TTX Impairs Long-Term Spatial Memory Retrieval and Modifies Brain Metabolic Activity. PLoS ONE. 8 (5), 64749 (2013).
  22. Grimm, J., Ronald, E. Dissociation of Primary and Secondary Reward-Relevant Limbic Nuclei in an Animal Model of Relapse. Neuropsychopharmacology. 22 (5), 473-479 (2000).
  23. Hasegawa, H., et al. Inhibition of the preoptic area and anterior hypothalamus by tetrodotoxin alters thermoregulatory functions in exercising rats. Journal of Applied Physiology. 98 (4), 1458-1462 (2005).
  24. Meyer, F., Louilot, A. Early Prefrontal Functional Blockade in Rats Results in Schizophrenia-Related Anomalies in Behavior and Dopamine. Neuropsychopharmacology. 37 (10), 2233-2243 (2012).
  25. Rothfeld, J. M., Harlan, R. E., Shivers, B. D. Reversible disruption of lordosis via midbrain infusions of procaine and tetrodotoxin. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 25 (4), 857-863 (1986).
  26. Silva, C., Cortés, G. D., Javier, C. Y., Flores, A., Domínguez, R. A neural circadian signal essential for ovulation is generated in the suprachiasmatic nucleus during each stage of the estrous cycle. Experimental Physiology. , (2019).
  27. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates (7th Ed). , (2014).
  28. Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal Cytology of the Laboratory Rat and Mouse. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
  29. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS ONE. 7 (4), 35538 (2012).
  30. Wirtshafter, D., Asin, K., Kent, E. W. Simple technique for midline stereotaxic surgery in the rat. Physiology & Behavior. 23 (1), 409-410 (1979).
  31. Kozai, T. D., Jaquins-Gerstl, A. S., Vazquez, A. L., Michael, A. C., Cui, X. T. Brain tissue responses to neural implants impact signal sensitivity and intervention strategies. ACS Chemical Neuroscience. 6 (1), 48-67 (2015).
  32. Kazim, S. F., Enam, S. A., Shamim, M. S. Possible detrimental effects of neurosurgical irrigation fluids on neural tissue: An evidence based analysis of various irrigants used in contemporary neurosurgical practice. International Journal of Surgery. 8 (8), 586-590 (2010).
  33. Miyajima, M., et al. Role of cerebrospinal fluid as perfusate in neuroendoscopic surgery: A basic investigation. Acta Neurochirurgica. 113, 103-107 (2012).
  34. Mori, K., et al. Potential risk of artificial cerebrospinal fluid solution without magnesium ion for cerebral irrigation and perfusion in neurosurgical practice. Neurologia Medico-Chirurgica. 53 (9), 596-600 (2013).
  35. Oka, K., Yamamoto, M., Nonaka, T., Tomonaga, M. The significance of artificial cerebrospinal fluid as perfusate and endoneurosurgery. Neurosurgery. 38 (4), (1996).
  36. James, T. A., Starr, M. S. Effects of the rate and volume of injection on the pharmacological response elicited by intraingral microapplication of drugs in the rat. Journal of Pharmacological Methods. 1 (3), 197-202 (1978).
  37. Freund, N., Manns, M., Rose, J. A method for the evaluation of intracranial tetrodotoxin injections. Journal of Neuroscience Methods. 186 (1), 25-28 (2010).
  38. Zhuravin, I. A., Bures, J. Extent of the tetrodotoxin induced blockade examined by pupillary paralysis elicited by intracerebral injection of the drug. Experimental Brain Research. 83 (3), 687-690 (1991).
  39. Myers, R. Injection of solutions into cerebral tissue: relation between volume and diffusion. Physiology and Behavior. 1 (2), 171-174 (1966).
  40. Gonzalez-Perez, O., Guerrero-Cazares, H., Quiñones-Hinojosa, A. Targeting of deep brain structures with microinjections for delivery of drugs, viral vectors, or cell transplants. Journal of Visualized Experiments. (46), e2082 (2010).
  41. McCluskey, L., Campbell, S., Anthony, D., Allan, S. M. Inflammatory responses in the rat brain in response to different methods of intra-cerebral administration. J Neuroimmunol. 194 (1-2), 27-33 (2008).
  42. Cunningham, M. G., O’Connor, R. P., Wong, S. E. Construction and implantation of a microinfusion system for sustained delivery of neuroactive agents. Journal of VisualizedExperiments. (13), e716 (2008).
  43. Akinori, A., Masamichi, S., Hiroshi, T. A new device for microinjection of drugs into the lower brain stem of conscious rats: Studies on site of action of morphine. Journal of Pharmacological Methods. 2 (4), 371-378 (1979).
  44. Malpeli, J. G. Reversible inactivation of subcortical sites by drug injection. Journal of Neuroscience Methods. 86 (2), 119-128 (1999).
  45. Yizhar, O., Fenno, L. E., Davidson, T. J., Mogri, M., Deisseroth, K. Optogenetics in neural systems. Neuron. 71 (1), 9-34 (2011).
  46. de Sousa, A. F., et al. Optogenetic reactivation of memory ensembles in the retrosplenial cortex induces systems consolidation. Proceedings of the Natural Academy of Sciences. 116 (17), 8576-8581 (2019).
  47. Beppu, K., et al. Optogenetic countering of glial acidosis suppresses glial glutamate release and ischemic brain damage. Neuron. 81 (2), 314-320 (2014).

Play Video

Cite This Article
Silva, C., Bolaños-Hurtado, M., Juárez-Tapia, C., Flores, A., Arrieta-Cruz, I., Cruz, M., Domínguez, R. Unraveling the Role of Discrete Areas of the Rat Brain in the Regulation of Ovulation through Reversible Inactivation by Tetrodotoxin Microinjections. J. Vis. Exp. (163), e61493, doi:10.3791/61493 (2020).

View Video