Summary

توليد مكتبات الإدراج Transposon في البكتيريا السلبية الغرامية لتسلسل عالي الإنتاجية

Published: July 07, 2020
doi:

Summary

نحن وصف طريقة لتوليد مكتبات متحولة تشبع transposon في البكتيريا السلبية الغرام وإعداد لاحقة من مكتبات ابيرليكون الحمض النووي لتسلسل عالية الإنتاجية. على سبيل المثال، ونحن نركز على مسببات الأمراض ESKAPE، Acinetobacter baumannii، ولكن هذا البروتوكول هو قابل لمجموعة واسعة من الكائنات الحية سلبية الغرام.

Abstract

إن تسلسل الـ Transposon (Tn-eq) هو طريقة قوية تجمع بين التوازج المُتَرْكَمِيّة المُتَرْكِم والتسلسل المُزَاَتِقِي لتحديد الجينات والمسارات التي تُسهم في اللياقة البدنية الجرثومية في ظل مجموعة واسعة من الظروف البيئية. 31 – إن تطبيقات Tn-eq هي تطبيقات واسعة النطاق ولم تُمكّن فقط من فحص العلاقات بين النمط الجيني والفينوين على مستوى الكائنات الحية، بل أيضاً على مستوى السكان والمجتمع المحلي والنظم. ترتبط البكتيريا السلبية بالجرام ارتباطًا كبيرًا بالأنماط الظاهرية المقاومة للميكروبات ، والتي زادت من حوادث فشل العلاج بالمضادات الحيوية. تُعرَّف مقاومة مضادات الميكروبات بأنها نمو البكتيريا في وجود مضادات حيوية قاتلة. يستخدم الكُليسين المضاد للميكروبات “الخط الأخير” لعلاج العدوى البكتيرية السالبة بالجرام. ومع ذلك ، يمكن أن العديد من مسببات الأمراض سلبية الغرام ، بما في ذلك Acinetobacter baumannii تطوير مقاومة colistin من خلال مجموعة من الآليات الجزيئية ، والتي تم وصف بعضها باستخدام Tn-seq. وعلاوة على ذلك، تختلف مسارات نقل الإشارة التي تنظم مقاومة الكولستين داخل البكتيريا السالبة للجرام. هنا نقترح طريقة فعالة من التحول المطفرة في A. baumannii أن يبسط توليد مكتبة الإدراج transposon تشبع وبناء مكتبة أمليكون من خلال القضاء على الحاجة إلى الإنزيمات تقييد, ربط محول, وتنقية هلام. الأساليب المذكورة هنا ستمكن من التحليل المتعمق للمحددات الجزيئية التي تسهم في اللياقة البدنية A. baumannii عندما تحدى مع colistin. كما ينطبق البروتوكول على مسببات الأمراض الأخرى ESKAPE السلبية للجرام ، والتي ترتبط في المقام الأول بالعدوى التي يتم الحصول عليها من المستشفيات المقاومةللأدوية.

Introduction

اكتشاف المضادات الحيوية هو بلا شك واحدة من الأحداث الأكثر تأثيرا ذات الصلة بالصحة فيالقرن 20. لا تقتصر المضادات الحيوية على حل الالتهابات البكتيرية الخطيرة بسرعة، بل تلعب أيضًا دورًا محوريًا في الطب الحديث. العمليات الجراحية الكبرى، وعمليات زرع وتقدم في طب حديثي الولادة والعلاج الكيميائي ترك المرضى عرضة للعدوى تهدد الحياة وهذه العلاجات لن يكون ممكنا من دون المضادات الحيوية1,2. ومع ذلك ، فإن التطور السريع وانتشار مقاومة المضادات الحيوية بين مسببات الأمراض البشرية قد انخفض بشكل كبير فعالية جميع الفئات الهامة سريريًا من المضادات الحيوية3. العديد من الالتهابات البكتيرية التي تم تطهيرها مرة واحدة بسهولة مع العلاج بالمضادات الحيوية، لم تعد تستجيب لبروتوكولات العلاج الكلاسيكية، مما تسبب في تهديد خطير للصحة العامة العالمية1. مقاومة مضادات الميكروبات (AMR) هي المكان الذي تنمو فيه الخلايا البكتيرية في تركيزات قاتلة من المضادات الحيوية ، بغض النظر عن مدة العلاج4،5. هناك حاجة ملحة لفهم العوامل الجزيئية والبيوكيميائية التي تنظم العلاج بمضادات الميكروبات، والتي ستساعد على توجيه التنمية البديلة لمضادات الميكروبات. على وجه التحديد، مسببات الأمراض ESKAPE هي إشكالية في البيئات السريرية والمرتبطة AMR واسعة النطاق. وتشمل هذه Enterococcus faecium, Staphylococcus aureus, Klebsiella pneumoniae, acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa وEnterobacter spp. في حين أن العديد من الآليات تساهم في AMR في مسببات الأمراض ESKAPE ، فإن الكائنات الأربعة الأخيرة سلبية الغرام.

البكتيريا السلبية الغرام تجميع غشاء خارجي محدد أن يحميهم من الظروف البيئية الضارة. يعمل الغشاء الخارجي كحاجز نفاذي لتقييد دخول الجزيئات السامة، مثل المضادات الحيوية، إلى الخلية. خلافا للأغشية البيولوجية الأخرى، والغشاء الخارجي غير متناظرة. يتم إثراء النشرة الخارجية مع lipopolysaccharide المكشوفة السطح ، في حين أن النشرة الداخلية هي مزيج من الفوسفاتية6. يتم إرساء جزيئات Lipopolysaccharide إلى الغشاء الخارجي من قبل الحفاظ على الدهون A moiety جزءا لا يتجزأ من ثنائي الطبقات الدهنية7. مطلوب من الدهون الكنسي المجال من الإشريكية القولونية lipopolysaccharide لنمو معظم البكتيريا سلبية الغرام ويتم تصنيعها من قبل مسار انزيمي من تسع خطوات التي هي واحدة من المسارات الأساسية الأكثر والحفاظ عليها في الكائنات الحية سلبية الغرام6,7,8.

البوليميكسينات هي الببتيدات المضادة للميكروبات الكاتيونية التي تستهدف نطاق الدهون A من السكاريد الدهنية لاضطرابات الغشاء الخارجي وثقب الخلية. التفاعل الكهربائي بين بقايا مشحونة إيجابيا من البولي الديميسينات والدهون المشحونة سلبا مجموعات الفوسفات تعطل غشاء الخلية البكتيرية مما يؤدي في نهاية المطاف إلى موت الخلية9,10,11,12,13. Colistin (بوليميكسين E) هو الملاذ الأخير المضادة للميكروبات المستخدمة لعلاج العدوى الناجمة عن عدة مسببات الأمراض المقاومة للأدوية الغرام سلبية الرضّع، مثل Acinetobacter baumannii14،15،16. اكتشفت لأول مرة في عام 1947 ، يتم إنتاج البوليميكسينات من قبل بكتيريا التربة ، Paenibacillus بوليميكا17،18،19. وقد وصفت polymyxins لعلاج التهابات الغرام السلبية لسنوات قبل استخدامها السريري كان محدودا بسبب تقارير عن nephro كبيرة ،والأعصاب 20،21.

A. baumannii هو مرض الأمراض السلبية الغرام nosocomial التي زادت بشكل كبير من المراضة والوفيات من نتائج المرضى على مدى العقود الأخيرة22. ما كان يعتبر مرة واحدة كمسببات الأمراض منخفضة التهديد، تشكل الآن خطرا كبيرا للعدوى المكتسبة في المستشفى في جميع أنحاء العالم بسبب قدرتها لا يصدق للحصول على AMR وارتفاع خطر الوباء23،24. ألف baumannii مسؤولة عن أكثر من 10 ٪ من الإصابات النوسومية في الولايات المتحدة. يظهر المرض مثل الالتهاب الرئوي، البكتيريا، التهابات المسالك البولية، التهابات الجلد والأنسجة الرخوة، التهاب السحايا، والتهاب الشغاف25. وقد تضاءلت خيارات العلاج لعدوى A. baumannii بسبب المقاومة ضد جميع فئات المضادات الحيوية تقريبا، بما في ذلك β-lactams، الفلوروكينولون، التتراسيكلين، و aminoglycosides23،24. وقد أدى انتشار مقاومة للأدوية المتعددة، ومقاومة للأدوية على نطاق واسع ومقاومة للأدوية A. baumannii عزل إلى عودة في علاج colistin، الذي كان يعتقد أن يكون واحدا من الخيارات العلاجية القليلة المتبقية لا تزال فعالة ضد مقاومة للأدوية المتعددة A. baumannii. ومع ذلك ، زيادة مقاومة colistin بين العزل A. baumannii قد تضخيم تهديدها للصحة العامة العالمية10،11،12،13،27،30،31.

وقد وفرت التطورات الأخيرة في التكنولوجيات ذات الإنتاجية العالية التسلسل، مثل التسلسل transposon (TN-seq)، أدوات هامة لتعزيز فهمنا للياقة البدنية البكتيرية في المختبر وفي الجسم الحي. Tn-seq هي أداة قوية يمكن الاستفادة منها لدراسة التفاعلات ذات النمط الجيني-النمط الظاهري في البكتيريا. TN-seq قابلة للتطبيق على نطاق واسع عبر مسببات الأمراض البكتيرية، حيث يجمع بين التطفرة التقليدية transposon مع تسلسل متوازي ضخمة لمواقع الإدراج خريطة بسرعة، والتي يمكن استخدامها لربط طفرات الحمض النووي إلى المتغيرات الظاهرية على نطاق الجينوم على نطاق32،33،34،35. في حين أن طرق التاطفرة التي تم وصفها سابقاً، فإن الخطوات العامة مماثلة33. أولاً، يتم إنشاء مكتبة إدخال باستخدام التماطيل المُتَرَكَّة، حيث تقتصر كل خلية بكتيرية داخل مجموعة سكانية على إدخال واحد في مادة الـ DNA الجينومية (gDNA). بعد الطفرات، يتم تجميع المسوخ الفردية. يتم استخراج gDNA من تجمع متحولة الإدراج ويتم تضخيم وصلات transposon وتخضع لتسلسل عالي الإنتاجية. تمثل القراءة مواقع الإدراج، والتي يمكن تعيينها إلى الجينوم. إدراج Transposon التي تقلل من اللياقة البدنية تسقط بسرعة من السكان, في حين يتم إثراء عمليات الإدراج المفيدة. TN-seq كان له دور فعال في تعزيز فهمنا لكيفية تأثير الجينات على اللياقة البكتيرية في الإجهاد33.

وقد تم بناء نظام همار 1 للناور بالبوافير المشفّر المشفّر في pJNW684 على وجه التحديد وجرى تحسينه على النحو الأمثل لغرض التوليد المُتَجَدّ. وهو يشمل تبديل -الأسرة البحريةيحيط جين مقاومة كاناميسين, الذي يستخدم لاختيار المسوخ transposon في A. baumannii. كما أنه يشفّر A. baumannii المروج محددة أن يدفع التعبير عن ترميز transposase الجين36. يحتوي transposon أساسًامن البحار أيضًا على جهازي إنهاء تحويلي في اتجاه مجرى النهر من جين مقاومة الكاناميسين ، والذي يمنع القراءة من خلال المصب37من الإدراج . pJNW684 يحمل أيضا RP4/oriT/oriR6K-مشروط أصل النسخ المتماثل الذي يتطلب الجين λpir التي ساهمت بها سلالة المانحة لتكرار38. في غياب الجين λpir، لن يكون الناقل pJNW684 الذي يحمل آلية نقل القدرة على تكرار في سلالة المتلقي A. baumannii 10،36،38. لذلك, أثناء الاقتران بكتيريّة, فقط التبّاجن يكون أدخلت داخل الالجتم جينوم دون خلفيّة إدراج من البلازميّ, أيّ يحمل الpopoase مورثة. وهذا أمر هام لأن فقدان نشاط الـ transposase جنبا إلى جنب مع نتائج البلازميد في واحد, حدث نقل مستقرة التي تمنع transposon من الانتقال إلى مواقع مختلفة بمجرد إدراجها في الجينوم المتلقي.

PJNW648 كما تم اختبار للنشاط في كائن آخر غرام سالبة، E. القولونية. وأشار التجميع الناجح لمكتبة Tn-seq المشبعة في سلالة القولونية W3110 إلى أن النظام قابل لإجراء الطفرات في مجموعة واسعة من مسببات الأمراض ، بما في ذلك Enterobacteriaceae. وعلاوة على ذلك، يمكن بسرعة تبادل المروج A. baumannii محددة التي تدفع التعبير transposase مع المروج الأنواع المحددة. وأخيراً، يمكن استبدال جين مقاومة الكاناميسين بشرائط المقاومة الأخرى، وذلك حسب النمط الظاهري AMR للكائن الحي الذي تجري دراسته.

أحد العوامل التي تساهم في مقاومة الكولستين في A. baumannii هو إدارة جرعات غير كافية ، حيث تتعرض البكتيريا لضغوط انتقائية عند مستويات غير قاتلة39. وأظهرت عدة تقارير أن تركيزات مضادة للميكروبات دون الباطنية يمكن أن تحفز الاستجابات المنظمة التي تغير فسيولوجيا الخلية للحد من قابلية جميع السكان البكتيرية11,12,30,31. باستخدام Tn-seq، اكتشفنا العوامل التي تنظم مقاومة الكليستين في سلالة A. baumannii ATCC 17978 بعد التعرض لتركيزاتمثبطة 10 و subinhibitory من colistin. هذا المثال تفاصيل طريقة Tn-seq التي تبسط بناء وإثراء مكتبة متحولة transposon المشبعة باستخدام الأسرة أساسها marinerمن transposons40،41. في حين أن العديد من بروتوكولات Tn-seq تولد 20،000 – 100،000 المسوخ35،42،43،44،45،46، البروتوكول الموصوف هنا يمكن أن تولد بسرعة مكتبة transposon من 400،000 + المسوخ ، الذي يعادل تقريبا إلى الإدراج transposon كل أزواج 10 قاعدة في A. baumannii10. وعلاوة على ذلك، يمكن توسيع حجم المكتبة دون بذل جهد إضافي كبير. هذه الطريقة أيضا يلغي شرط تقييد endonucleases ، ربط محول وتنقية هلام ، والتي يمكن أن تقلل من تنوع المكتبة النهائية.

Protocol

1. إعداد سلالة بكتيرية خط “المانح” سلالة(E. القولونية MFD DAP-/ pJNW684، جدول المواد)للمستعمرات المعزولة على Luria-Bertani agar تكملها 600 ميكرومتر ديامينوميليك حمض (DAP)، 100 ملغ/لتر من الأمبيسيلين و 25 ملغم/لتر من kanamycin. احتضان ليلة وضحاها في 37 درجة مئوية. باستخدام مستعمرة معزولة واحدة،…

Representative Results

تصف الطرق المبينة توليد مكتبة نقل عالية الكثافة في سلالة A. baumannii ATCC 17978 من خلال الاقتران البكتيري باستخدام E. coli MFD DAP-، الذي يكرر pJmid pJNW684 (الشكل 4B). البروتوكول المفصل يستخدم الاقتران البكتيرية ثنائية الوالدين لنقل pJNW684 من سلالة E. القولونية λpir+ المانح…

Discussion

A. baumannii هو تهديد ناشئ للصحة العامة العالمية بسبب الاكتساب السريع لـ AMR ضد العلاجيات “الخط الأخير” مثل colistin10,11,12,23,24,30,31. في العقود الأخيرة، Tn-seq لعبت دورا حاسما …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وقد تم دعم هذا العمل بتمويل من المعهد الوطني للصحة (منحة AI146829 إلى J.M.B.) وهو أمر يلقى التنويه به.

Materials

10 mM ddCTP, 2’,3’-Dideoxycytidine-5’-Triphosphate Affymetrix 77112
100 mM dCTP 2’-Deoxycytidine-5’-Triphosphate Invitrogen 10217-016
100bp DNA Ladder Molecular Weight Marker Promega PR-G2101
100mm x 15mm Petri Dishes Corning 351029
150mm x 15mm Petri Dishes Corning 351058
1X B&W N/A N/A Dilute 2X B&W by half to get 1X B&W.
2,6-Diaminopimelic acid Alfa Aesar B2239103 used at 600 µM
2X B&W N/A N/A Add 2 M NaCl, 10 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA (pH 7.5) in water. Used with Streptavidin beads. Solutions keep at room temperature.
50mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes Fisher Scientific 12-565-271
9.5 mM dCTP/0.5 mM ddCTP N/A N/A 9.5 ml 100 mM dCTP; 5 ml 10 mM ddCTP; 85.5 ml water. Store at -20°C.
AccuPrimeTM Pfx DNA Polymerase Invitrogen 12344
Acinetobacter baumannii ATCC 17978 ATCC N/A AmpS, KanS
Ampicillin (100 mg/L) Fisher Scientific BP1760 used at 100 mg/L
AMPure XP PCR purification system BECKMAN COULTER A63881
BioAnalyzer Agilent G2939B
Bioanalyzer High Sensitivity DNA Analysis Agilent 5067-4626
Deoxynucleotide Solution Mix (dNTP) New England Biolabs (NEB) N0447L
DynaMag-2 Magnetic rack Invitrogen 12321D
E.coli MFD Dap- N/A N/A DAP Auxotroph, requires 600 mM exogenously added DAP to grow. Contains RP4 machinery for plasmid transfer. Carrier for JNW68 (36).
Ethanol Fisher Scientific A4094
Externally Threaded Cryogenic Vials Corning 09-761-71
Glass beads Corning 72684
Glycerol Fisher Scientific G33
Inoculating loops Fisher Scientific 22-363-602 Scraping tool
Kanamycin Fisher Scientific BP906 used at 25 mg/L
LB agar, Miller Fisher Scientific BP1425
LB broth, Miller Fisher Scientific BP1426
LoTE N/A N/A Add 3 mM Tris-HCl, 0.2 mM EDTA (pH 7.5) in water. Used with Streptavidin beads. Solutions keep at room temperature.
Lysis buffer N/A N/A 9.34 mL TE buffer; 600 ml of 10% SDS; 60 ml of proteinase K (20 mg/mL)
Phenol/Chloroform/Isoamyl Alcohol (25:24:1 Mixture, pH 6.7/8.0, Liq.) Fisher Scientific BP1752I
Phosphate Buffered Saline, 10X Solution Fisher Scientific BP39920 Diluted to 1X
Qubit 4 Fluorometer Thermo Fisher Q33238
Qubit Assay Tubes Thermo Fisher Q32856
Qubit dsDNA HS Assay Kit Thermo Fisher Q32851
Sonicator with refridgerated waterbath Qsonica Sonicators Q2000FCE
Streptavidin Magnetic Beads New England Biolabs (NEB) S1420S
TE buffer N/A N/A 10 mM Tris-HCl (pH 8.0); 1 mM EDTA (pH 8.0)
Terminal Deoxynucleotidyl Transferase (rTdt) Promega PR-M1875

References

  1. Gould, I. M., Bal, A. M. New antibiotic agents in the pipeline and how they can help overcome microbial resistance. Virulence. 4 (2), 185-191 (2013).
  2. Holzheimer, R. G. Antibiotic induced endotoxin release and clinical sepsis: a review. Journal of Chemotherapy. 13 (1), 159-172 (2001).
  3. Centers for Disease Control and Prevention (U.S.). Antibiotic resistance threats in the United States, 2019. Centers for Disease Control and Prevention (U.S.). , (2019).
  4. Scholar, E. M., Pratt, W. B. . The antimicrobial drugs. , (2000).
  5. Brauner, A., Fridman, O., Gefen, O., Balaban, N. Q. Distinguishing between resistance, tolerance and persistence to antibiotic treatment. Nature Reviews Microbiology. 14 (5), 320-330 (2016).
  6. Henderson, J. C., et al. The Power of Asymmetry: Architecture and Assembly of the Gram-Negative Outer Membrane Lipid Bilayer. Annual Review of Microbiology. 70, 255-278 (2016).
  7. Whitfield, C., Trent, M. S. Biosynthesis and export of bacterial lipopolysaccharides. Annual Review of Biochemistry. 83, 99-128 (2014).
  8. Raetz, C. R. H., Whitfield, C. Lipopolysaccharide Endotoxins. Annual Review of Biochemistry. 71 (1), 635-700 (2002).
  9. Kang, K. N., et al. Colistin heteroresistance in Enterobacter cloacae is regulated by PhoPQ-dependent 4-amino-4-deoxy- L -arabinose addition to lipid A. Molecular Microbiology. 111 (6), 1604-1616 (2019).
  10. Boll, J. M., et al. A penicillin-binding protein inhibits selection of colistin-resistant, lipooligosaccharide-deficient Acinetobacter baumannii. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (41), 6228-6237 (2016).
  11. Boll, J. M., et al. Reinforcing Lipid A Acylation on the Cell Surface of Acinetobacter baumannii Promotes Cationic Antimicrobial Peptide Resistance and Desiccation Survival. mBio. 6 (3), 00478 (2015).
  12. Arroyo, L. A., et al. The pmrCAB operon mediates polymyxin resistance in Acinetobacter baumannii ATCC 17978 and clinical isolates through phosphoethanolamine modification of lipid A. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 55 (8), 3743-3751 (2011).
  13. Harris, T. L., et al. Small molecule downregulation of PmrAB reverses lipid A modification and breaks colistin resistance. ACS Chemical Biology. 9 (1), 122-127 (2014).
  14. Vaara, M. Agents that increase the permeability of the outer membrane. Microbiological Reviews. 56 (3), 395-411 (1992).
  15. Vaara, M. Polymyxins and their novel derivatives. Current Opinion in Microbiology. 13 (5), 574-581 (2010).
  16. Kassamali, Z., Rotschafer, J. C., Jones, R. N., Prince, R. A., Danziger, L. H. Polymyxins: wisdom does not always come with age. Clinical Infectious Diseases: An Official publication of the Infectious Diseases Society of America. 57 (6), 877-883 (2013).
  17. Ainsworth, G. C., Brown, A. M., Brownlee, G. Aerosporin, an antibiotic produced by Bacillus aerosporus Greer. Nature. 159 (4060), 263 (1947).
  18. Benedict, R. G., Langlykke, A. F. Antibiotic activity of Bacillus polymyxa. Journal of Bacteriology. 54 (1), 24 (1947).
  19. Stansly, P. G., Shepherd, R. G., White, H. J. Polymyxin: a new chemotherapeutic agent. Bulletin of the Johns Hopkins Hospital. 81 (1), 43-54 (1947).
  20. Hermsen, E. D., Sullivan, C. J., Rotschafer, J. C. Polymyxins: pharmacology, pharmacokinetics, pharmacodynamics, and clinical applications. Infectious Disease Clinics of North America. 17 (3), 545-562 (2003).
  21. Pedersen, M. F., Pedersen, J. F., Adsen, P. O. A clinical and experimental comparative study of sodium colistimethate and polymyxin B sulfate. Investigative Urology. 9 (3), 234-237 (1971).
  22. Falagas, M. E., Bliziotis, I. A. Pandrug-resistant Gram-negative bacteria: the dawn of the post-antibiotic era. International Journal of Antimicrobial Agents. 29 (6), 630-636 (2007).
  23. Peleg, A. Y., Seifert, H., Paterson, D. L. Acinetobacter baumannii: Emergence of a Successful Pathogen. Clinical Microbiology Reviews. 21 (3), 538-582 (2008).
  24. Beceiro, A., Tomás, M., Bou, G. Antimicrobial resistance and virulence: a successful or deleterious association in the bacterial world. Clinical Microbiology Reviews. 26 (2), 185-230 (2013).
  25. Eliopoulos, G. M., Maragakis, L. L., Perl, T. M. Acinetobacter baumannii: Epidemiology, Antimicrobial Resistance, and Treatment Options. Clinical Infectious Diseases. 46 (8), 1254-1263 (2008).
  26. Lee, A., Nolan, A., Watson, J., Tristem, M. Identification of an ancient endogenous retrovirus, predating the divergence of the placental mammals. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 368 (1626), 20120503 (2013).
  27. Moffatt, J. H., et al. Colistin Resistance in Acinetobacter baumannii Is Mediated by Complete Loss of Lipopolysaccharide Production. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 54 (12), 4971-4977 (2010).
  28. Cai, Y., Chai, D., Wang, R., Liang, B., Bai, N. Colistin resistance of Acinetobacter baumannii: clinical reports, mechanisms and antimicrobial strategies. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 67 (7), 1607-1615 (2012).
  29. Da Silva, G., Domingues, S. Interplay between Colistin Resistance, Virulence and Fitness in Acinetobacter baumannii. Antibiotics. 6 (4), 28 (2017).
  30. Chin, C. -. Y., Gregg, K. A., Napier, B. A., Ernst, R. K., Weiss, D. S. A PmrB-Regulated Deacetylase Required for Lipid A Modification and Polymyxin Resistance in Acinetobacter baumannii. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 59 (12), 7911-7914 (2015).
  31. Beceiro, A., et al. Phosphoethanolamine modification of lipid A in colistin-resistant variants of Acinetobacter baumannii mediated by the pmrAB two-component regulatory system. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 55 (7), 3370-3379 (2011).
  32. van Opijnen, T., Lazinski, D. W., Camilli, A. Genome-Wide Fitness and Genetic Interactions Determined by Tn-seq, a High-Throughput Massively Parallel Sequencing Method for Microorganisms. Current Protocols in Microbiology. 36, 1-24 (2015).
  33. Kwon, Y. M., Ricke, S. C., Mandal, R. K. Transposon sequencing: methods and expanding applications. Applied Microbiology and Biotechnology. 100 (1), 31-43 (2016).
  34. Yamaichi, Y., Dörr, T. Transposon Insertion Site Sequencing for Synthetic Lethal Screening. Methods in Molecular Biology. 1624, 39-49 (2017).
  35. Goodman, A. L., et al. Identifying Genetic Determinants Needed to Establish a Human Gut Symbiont in Its Habitat. Cell Host & Microbe. 6 (3), 279-289 (2009).
  36. Wang, N., Ozer, E. A., Mandel, M. J., Hauser, A. R. Genome-Wide Identification of Acinetobacter baumannii Genes Necessary for Persistence in the Lung. mBio. 5 (3), 01163 (2014).
  37. Klein, B. A., et al. Identification of essential genes of the periodontal pathogen Porphyromonas gingivalis. BMC Genomics. 13 (1), 578 (2012).
  38. Ferrieres, L., et al. Silent Mischief: Bacteriophage Mu Insertions Contaminate Products of Escherichia coli Random Mutagenesis Performed Using Suicidal Transposon Delivery Plasmids Mobilized by Broad-Host-Range RP4 Conjugative Machinery. Journal of Bacteriology. 192 (24), 6418-6427 (2010).
  39. Lim, L. M., et al. Resurgence of Colistin: A Review of Resistance, Toxicity, Pharmacodynamics, and Dosing. Pharmacotherapy. 30 (12), 1279-1291 (2010).
  40. Lampe, D. J., Churchill, M. E., Robertson, H. M. A purified mariner transposase is sufficient to mediate transposition in vitro. The EMBO Journal. 15 (19), 5470-5479 (1996).
  41. Mazurkiewicz, P., Tang, C. M., Boone, C., Holden, D. W. Signature-tagged mutagenesis: barcoding mutants for genome-wide screens. Nature Reviews. Genetics. 7 (12), 929-939 (2006).
  42. Goodman, A. L., Wu, M., Gordon, J. I. Identifying microbial fitness determinants by insertion sequencing using genome-wide transposon mutant libraries. Nature Protocols. 6 (12), 1969-1980 (2011).
  43. van Opijnen, T., Camilli, A. Transposon insertion sequencing: a new tool for systems-level analysis of microorganisms. Nature Reviews. Microbiology. 11 (7), 3033 (2013).
  44. Liu, H., Bouillaut, L., Sonenshein, A. L., Melville, S. B. Use of a Mariner-Based Transposon Mutagenesis System To Isolate Clostridium perfringens Mutants Deficient in Gliding Motility. Journal of Bacteriology. 195 (3), 629-636 (2013).
  45. Singer, J. T., Finnerty, W. R. Insertional specificity of transposon Tn5 in Acinetobacter sp. Journal of Bacteriology. 157 (2), 607-611 (1984).
  46. Subashchandrabose, S., et al. Acinetobacter baumannii Genes Required for Bacterial Survival during Bloodstream Infection. mSphere. 1 (1), 13-15 (2015).
  47. Shull, L. M., Camilli, A. Transposon Sequencing of Vibrio cholerae in the Infant Rabbit Model of Cholera. Vibrio Cholerae. 1839, 103-116 (2018).
  48. Smith, M. G., et al. New insights into Acinetobacter baumannii pathogenesis revealed by high-density pyrosequencing and transposon mutagenesis. Genes & Development. 21 (5), 601-614 (2007).
  49. Stahl, M., Stintzi, A. Identification of essential genes in C. jejuni genome highlights hyper-variable plasticity regions. Functional & Integrative Genomics. 11 (2), 241-257 (2011).
  50. Chaudhuri, R. R., et al. Comprehensive identification of essential Staphylococcus aureus genes using Transposon-Mediated Differential Hybridisation (TMDH). BMC Genomics. 10 (1), 291 (2009).
  51. Griffin, J. E., et al. High-resolution phenotypic profiling defines genes essential for mycobacterial growth and cholesterol catabolism. PLoS Pathogens. 7 (9), 1002251 (2011).
  52. Gallagher, L. A., Shendure, J., Manoil, C. Genome-scale identification of resistance functions in Pseudomonas aeruginosa using Tn-seq. mBio. 2 (1), 00315 (2011).
  53. Khatiwara, A., et al. Genome scanning for conditionally essential genes in Salmonella enterica Serotype Typhimurium. Applied and Environmental Microbiology. 78 (9), 3098-3107 (2012).
  54. van Opijnen, T., Camilli, A. A fine scale phenotype-genotype virulence map of a bacterial pathogen. Genome Research. 22 (12), 2541-2551 (2012).
  55. Hurd, P. J., Nelson, C. J. Advantages of next-generation sequencing versus the microarray in epigenetic research. Briefings in Functional Genomics and Proteomics. 8 (3), 174-183 (2009).
  56. Barquist, L., Boinett, C. J., Cain, A. K. Approaches to querying bacterial genomes with transposon-insertion sequencing. RNA Biology. 10 (7), 1161-1169 (2013).
  57. Perry, B. J., Yost, C. K. Construction of a mariner-based transposon vector for use in insertion sequence mutagenesis in selected members of the Rhizobiaceae. BMC Microbiology. 14 (1), 298 (2014).
  58. Plasterk, R. H. A., Izsvák, Z., Ivics, Z. Resident aliens: the Tc1/ mariner superfamily of transposable elements. Trends in Genetics. 15 (8), 326-332 (1999).
  59. Lazinski, D. W., Camilli, A. Homopolymer tail-mediated ligation PCR: a streamlined and highly efficient method for DNA cloning and library construction. BioTechniques. 54 (1), (2013).
  60. Gawronski, J. D., Wong, S. M. S., Giannoukos, G., Ward, D. V., Akerley, B. J. Tracking insertion mutants within libraries by deep sequencing and a genome-wide screen for Haemophilus genes required in the lung. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (38), 16422-16427 (2009).
  61. Langridge, G. C., et al. Simultaneous assay of every Salmonella Typhi gene using one million transposon mutants. Genome Research. 19 (12), 2308-2316 (2009).
  62. Quail, M. A., Swerdlow, H., Turner, D. J. Improved Protocols for the Illumina Genome Analyzer Sequencing System. Current Protocols in Human Genetics. 62 (1), (2009).
check_url/kr/61612?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kazi, M. I., Schargel, R. D., Boll, J. M. Generating Transposon Insertion Libraries in Gram-Negative Bacteria for High-Throughput Sequencing. J. Vis. Exp. (161), e61612, doi:10.3791/61612 (2020).

View Video