Summary

Måling af biocontrolprodukters flygtige og ikke-flygtige svampedræbende aktivitet

Published: December 05, 2020
doi:

Summary

Vi beskriver en modificeret agarbaseret metode designet til at kvantificere de svampedræbende virkninger af plantebaserede produkter. Både volatile og ikke-volatile bidrag til svampeaktiviteten kan vurderes ved hjælp af denne protokol. Derudover kan effekten mod svampe måles på centrale udviklingsstadier i et enkelt eksperimentelt setup.

Abstract

Den beskrevne protokol er baseret på en plug-transfer-teknik, der giver mulighed for nøjagtig bestemmelse af mikroorganismemængder og deres udviklingsstadier. Et bestemt antal sporer spredes på en agarplade. Denne agarplade inkuberes i en bestemt periode, så svampene kan nå det forventede udviklingsstadium, undtagen sporer, hvor inkubation ikke er påkrævet. Agar stik dækket af sporer, hyphae, eller mycelium er næste trukket tilbage og overføres til agar medier, der indeholder svampedræbende forbindelse, der skal testes enten placeret i en afstand fra svampe eller i kontakt. Denne metode anvendes til test af både flydende ekstrakter og faste prøver (pulvere). Det er især velegnet til at kvantificere de relative bidrag fra flygtige og ikke-flygtige stoffer i bioaktive blandinger og til bestemmelse af deres virkninger, specielt på sporer, tidlig hyphae og mycelium.

Metoden er yderst relevant for karakteriseringen af biokontrolprodukters svampedræbende aktivitet, navnlig planteafledte produkter. Til plantebehandling kan resultaterne faktisk bruges til at vejlede valget af anvendelsesmåde og til at fastsætte udløsertærsklerne.

Introduction

Globale tab af frugt og grøntsager kan nå op til 50% af produktionen1 og skyldes hovedsagelig mad henfald forårsaget af svampe fordærv i marken eller under post-høst opbevaring2,3, på trods af den omfattende beskæftigelse af syntetiske fungicider siden midten af det tyvende århundrede4. Anvendelsen af disse stoffer tages op til fornyet overvejelse, da det udgør alvorlige miljø- og sundhedsrisici. Da de skadelige konsekvenser af deres anvendelse viser sig i hele økosystemerne , og der er indsamlet dokumentation for potentielle sundhedsmæssige virkninger5,6, udvikles der nye alternativer til gamle profylaktiske strategier til behandling før og efterhøsten 7,8,9. Derfor er den udfordring, vi står over for, dobbelt. Nye svampedræbende strategier skal for det første opretholde niveauet for fødevaresikkerhed mod fytopatogener og samtidig bidrage til en drastisk reduktion af landbrugspraksissens miljømæssige fodaftryk. For at opfylde dette ambitiøse mål foreslås strategier inspireret af det naturlige forsvar udviklet i planter, da mere end 1000 plantearter er blevet fremhævet for deres antimikrobielle egenskaber8. For eksempel er planter, der har udviklet naturlige fungicider til bekæmpelse af fytopathogens, en ny ressource i at udforske udviklingen af nye biokontrolprodukter2. Æteriske olier er flagskib molekyler af denne type. For eksempel beskytter Origanum æterisk olie tomatplanter mod grå skimmelsvamp i drivhuse 10 og Solidago canadensis L. og cassia æteriske olier har vist sig at bevare post-høstede jordbær fra grå skimmel skader11,12. Disse eksempler illustrerer, at biokontrol og især plantebaserede produkter udgør en løsning, der kombinerer biologisk effektivitet og miljømæssig bæredygtighed.

Således er planter en vigtig ressource af molekyler af potentiel interesse for afgrødebeskyttelsesindustrien. Der er imidlertid kun foreslået en håndfuld planteprodukter, der skal anvendes som biokontrolprodukter, selv om de generelt anerkendes som sikre, ikke-fytotoksiske og miljøvenlige2. Der er konstateret visse vanskeligheder i forbindelse med gennemførelsen fra laboratoriet til marken , f.eks. Således bliver det vigtigt at forbedre muligheden for lab tests til bedre at forudsige felteffektivitet. I denne forbindelse er svampedræbende testmetoder for planteafledte produkter nødvendige både for at evaluere deres svampedræbende virkning og for at definere deres optimale anvendelsesbetingelser. Specifikt er biokontrolprodukter generelt mindre effektive end kemiske fungicider, så en bedre forståelse af deres virkningsmåde er vigtig for at foreslå passende formuleringer, identificere anvendelsesmåden på områder og definere, hvilken udviklingsstadium af patogenet der er sårbar over for kandidatbioproduktet.

De nuværende metoder til antibakterielle og svampedræbende aktiviteter omfatter diffusionsmetoder såsom diffusion af agardisketter, fortynding, bioautografi og flowcytometri13. De fleste af disse teknikker, og mere specifikt, standard antifungal modtagelighed test – agar-disk diffusion og fortynding assays – er velegnede til vurdering af antimikrobiel aktivitet opløselige forbindelser på bakterielle og svampesporer i flydende suspensioner14. Disse metoder er dog generelt ikke egnede til at teste faste forbindelser såsom tørret plantepulver eller til at kvantificere svampedræbende aktivitet under myceliumvækst, da de kræver sporefortynding eller sporespredning på agarplader og / eller fortynding af svampedræbende forbindelser13. I den fødevaregiftede metode podes agarplader, der indeholder svampedræbende middel, med en 5-7 mm diameter disk udtaget fra en 7-dages gammel svampekultur uden at overveje den nøjagtige mængde start mycelium. Efter inkubation bestemmes svampedræbende aktivitet som en procentdel af radialvæksthæmning17,18,19. Med denne tilgang kan vi evaluere svampedræbende aktivitet på mycelial vækst. Derimod udføres agarfortyndingsmetoden for at bestemme svampedræbende aktivitet på sporer, der er direkte podet på overfladen af agarpladen, der indeholder svampedræbende forbindelser13,20,21. Disse to tilgange giver komplementære resultater med antifungal aktivitet. Men disse er to uafhængige teknikker, der anvendes parallelt, som ikke giver nøjagtig side-by-side sammenligning af den relative effekt af svampedræbende forbindelser på sporer og mycelium17,20,22 da mængden af startvalsemateriale varierer i de to tilgange. Desuden skyldes den svampedræbende aktivitet af et planteafledt produkt ofte kombinationen af svampedræbende molekyler syntetiseret af planter til ansigt patogener. Disse molekyler omfatter proteiner, peptider23,24, og metabolitter med bred kemisk diversitet og tilhører forskellige klasser af molekyler såsom polyfenoler, terpener, alcaloïds25, glucosinolater8, og organosulfurforbindelser26. Nogle af disse molekyler er flygtige eller bliver flygtige under patogenangreb27. Disse midler er oftest dårligt vandopløselige og højdamptryksforbindelser, der skal genvindes gennem vanddestillation som æteriske olier, hvoraf nogle antimikrobielle aktiviteter er veletablerede.28. Dampfase medieret modtagelighed assays er blevet udviklet til at måle antimikrobiel aktivitet af flygtige forbindelser efter fordampning og migration via damp fase29. Disse metoder er baseret på indførelsen af svampedræbende forbindelser i en afstand fra den mikrobielle kultur29,30,31,32,33. I den almindeligt anvendte dampfase agaranalyse deponeres æteriske olier på en papirdisk og placeres i midten af dækslet af petriskålen i afstand fra bakteriel eller svampesporeaffjedring, som spredes på agar medium. Diameteren af væksthæmmende zone måles derefter på samme måde som for agar-disk diffusionsmetoden20,24. Der er udviklet andre metoder til kvantitativ måling af æteriske oliers antifungale modtagelighed i dampfasen, der stammer fra bouillonfortyndingsmetoden, hvorfra der blev beregnet en hæmmende dampfasemedieret antimikrobiel aktivitet.32, eller fremstillet af diffusionsanalyser af agar-disk31. Disse metoder er generelt specifikke for dampfaseaktivitetsundersøgelser og ikke egnede til kontakthæmmende assays. Dette udelukker bestemmelse af det relative bidrag fra flygtige og ikke-flygtige stoffer til svampedræbende aktivitet i en kompleks bioaktiv blanding.

Den kvantitative metode, vi har udviklet, har til formål at måle den svampedræbende virkning af tørret plantepulver på kontrollerede mængder sporer og dyrket mycelium deponeret på overfladen af et agarmedium for at reproducere luftvæksten af fytopathogens under infektion af planter15 samt et sammenkoblet mycelialt netværk16. Tilgangen er en modificeret eksperimentel opsætning baseret på agarfortynding og fødevaregifte metoder, der også i samme eksperimentelle opsætning muliggør side om side kvantificering af bidraget fra både flygtige og ikke-flygtige svampedræbende metabolitter. I denne undersøgelse er metoden blevet benchmarket mod aktiviteten af tre velkaraktererede svampedræbende præparater.

Protocol

1. Podning af inocula Før forsøget lå 5 μL Trichoderma spp. SBT10-2018 sporer oplagret ved 4 °C på kartoffeldextrose agar medium (PDA) og inkuberes i 4 dage ved 30 °C med regelmæssig lyseksponering for at fremme conidiadannelse42 (Figur 1, panel A).BEMÆRK: Trichoderma spp. SBT10-2018 er blevet isoleret fra træ og bruges som model i denne undersøgelse for sin hurtige vækst og lette sporegenvinding. Denne stamme er bevaret af …

Representative Results

For at evaluere den kvantitative metodes evne til at diskriminere virkningsmåden for forskellige typer svampemidler, sammenlignede vi effekten af tre velkendte svampemidler. Carbendazim er et ikke-flygtigt syntetisk fungicid , som i vid udstrækning er blevet anvendt til at kontrollere en bred vifte af svampesygdomme i planter39,40. Thymus vulgaris æterisk olie er i vid udstrækning blevet beskrevet for sin antibakterielle og svampedræbende aktivitet …

Discussion

Den fremgangsmåde, der præsenteres her, giver mulighed for evaluering af svampedræbende egenskaber ved minimalt forarbejdede plantebaserede produkter. I denne protokol opnås homogen fordeling af sporer på agaroverfladen ved hjælp af 2 mm glasperler. Dette trin kræver håndtering færdigheder til korrekt at distribuere perler og for at opnå reproducerbare resultater, i sidste ende gør det muligt at sammenligne svampedræbende virkninger på forskellige stadier af svampevækst. Vi fandt ud af, at 5 mm glasperler e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er Frank Yates meget taknemmelige for hans dyrebare råd. Dette arbejde blev støttet af Sup’Biotech.

Materials

Autoclave-vacuclav 24B+ Melag
Carbendazim Sigma  378674-100G
Distilled water
Eppendorf tubes Sarstedt 72.706 1.5 mL
Falcons tubes Sarstedt 547254 50 mL
Five millimeters diameter stainless steel tube retail store /
Food dehydrator Sancusto six trays
Garlic powder Organic shop
Glass beads CLOUP 65020 Equation 1 2 mm
Hemocytometer counting cell Jeulin 713442 /
Incubator Memmert  UM400 30 °C
Knife mill Bosch TSM6A013B
Manual cell counter Labbox HCNT-001-001 /
Measuring ruler retail store
Microbiological safety cabinets FASTER FASTER BHA36, TYPE II, Cat 2
Micropipette Mettler-Toledo 17014407 100 – 1000 µL
Micropipette Mettler-Toledo 17014411 20 – 200 µL
Micropipette Mettler-Toledo 17014412 2 – 20 µL
Petri dish Sarstedt 82-1194500 Equation 1 55 mm
Petri dish Sarstedt 82-1473  Equation 1 90 mm
Pipette Controllers-EASY 60 Labbox EASY-P60-001 /
Potato Dextrose Agar Sigma  70139-500G
Precision scale-RADWAG Grosseron B126698 AS220.R2-ML 220g/0.1mg 
Rake Sarstedt 86-1569001 /
Reverse microscope AE31E trinocular Grosseron M097917 /
Sterile graduated pipette Sarstedt 1254001 10 mL
Thymus essential oil Drugstore Essential oil 100%
Tips 1000 µL  Sarstedt 70.762010
Tips 20 µL  Sarstedt 70.760012
Tips 200 µL Sarstedt 70.760002
Tooth pick retail store
Trichoderma spp strain Strain of LRPIA laboratory
Tween-20  Sigma  P1379-250ML
Tween-80 Sigma  P1754-1L
Tweezers Labbox FORS-001-002 /

References

  1. FAO. Global food losses and food waste – Extent, causes and prevention. FAO. , (2011).
  2. da Cruz Cabral, L., Fernández Pinto, V., Patriarca, A. Application of plant compounds to control fungal spoilage and mycotoxin production in foods. International Journal of Food Microbiology. 166 (1), 1-14 (2013).
  3. Romanazzi, G., Smilanick, J. L., Feliziani, E., Droby, S. Postharvest biology and technology integrated management of postharvest gray mold on fruit crops. Postharvest Biology and Technology. 113, (2016).
  4. Morton, V., Staub, T. A Short History of Fungicides. APSnet Feature Articles. (1755), 1-12 (2008).
  5. Brandhorst, T. T., Klein, B. S. Uncertainty surrounding the mechanism and safety of the post- harvest fungicide Fludioxonil. Food and Chemical Toxicology. 123, 561-565 (2019).
  6. Bénit, P., et al. Evolutionarily conserved susceptibility of the mitochondrial respiratory chain to SDHI pesticides and its consequence on the impact of SDHIs on human cultured cells. PLoS ONE. 14 (11), 1-20 (2019).
  7. Usall, J., Torres, R., Teixidó, N. Biological control of postharvest diseases on fruit: a suitable alternative. Current Opinion in Food Science. 11, 51-55 (2016).
  8. Tripathi, P., Dubey, N. K. Exploitation of natural products as an alternative strategy to control postharvest fungal rotting of fruit and vegetables. Postharvest Biology and Technology. 32 (3), 235-245 (2004).
  9. Abbey, J. A., et al. Biofungicides as alternative to synthetic fungicide control of grey mould (Botrytis cinerea)-prospects and challenges. Biocontrol Science and Technology. 29 (3), 241-262 (2019).
  10. Soylu, E. M., Kurt, &. #. 3. 5. 0. ;., Soylu, S. In vitro and in vivo antifungal activities of the essential oils of various plants against tomato grey mould disease agent Botrytis cinerea. International Journal of Food Microbiology. 143 (3), 183-189 (2010).
  11. Liu, S., Shao, X., Wei, Y., Li, Y., Xu, F., Wang, H. Solidago canadensis L. essential oil vapor effectively inhibits botrytis cinerea growth and preserves postharvest quality of strawberry as a food model system. Frontiers in Microbiology. 7, 0 (2016).
  12. El-Mogy, M. M., Alsanius, B. W. Cassia oil for controlling plant and human pathogens on fresh strawberries. Food Control. 28 (1), 157-162 (2012).
  13. Balouiri, M., Sadiki, M., Ibnsouda, S. K. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Journal of Pharmaceutical Analysis. 6 (2), 71-79 (2016).
  14. Arikan, S. Current status of antifungal susceptibility testing methods. Medical Mycology. 45 (7), 569-587 (2007).
  15. Girmay, Z., Gorems, W., Birhanu, G., Zewdie, S. Growth and yield performance of Pleurotus ostreatus (Jacq. Fr.) Kumm (oyster mushroom) on different substrates. AMB Express. 6 (1), 87 (2016).
  16. Fischer, M. S., Glass, N. L. Communicate and fuse: how filamentous fungi establish and maintain an interconnected mycelial network. Frontiers in Microbiology. 10, 1-20 (2019).
  17. Mohana, D. C., Raveesha, K. A. Anti-fungal evaluation of some plant extracts against some plant pathogenic field and storage fungi. Journal of Agricultural Technology. 4 (1), 119-137 (2007).
  18. Balamurugan, S. In vitro activity of aurantifolia plant extracts against phytopathogenic fungi phaseolina. International Letters of Natural Sciences. 13, 70-74 (2014).
  19. Ameziane, N., et al. Antifungal activity of Moroccan plants against citrus fruit pathogens. Agronomy for sustainable development. 27 (3), 273-277 (2007).
  20. Rizi, K., Murdan, S., Danquah, C. A., Faull, J., Bhakta, S. Development of a rapid, reliable and quantitative method – “SPOTi” for testing antifungal efficacy. Journal of Microbiological Methods. 117, 36-40 (2015).
  21. Imhof, A., Balajee, S. A., Marr, K., Marr, K. New methods to assess susceptibilities of Aspergillus isolates to caspofungin. Microbiology. 41 (12), 5683-5688 (2003).
  22. Goussous, S. J., Abu el-Samen, F. M., Tahhan, R. A. Antifungal activity of several medicinal plants extracts against the early blight pathogen (Alternaria solani). Archives of Phytopathology and Plant Protection. 43 (17), 1745-1757 (2010).
  23. Ng, T. B. Antifungal proteins and peptides of leguminous and non-leguminous origins. Peptides. 25 (7), 1215-1222 (2004).
  24. Hu, Z., Zhang, H., Shi, K. Plant peptides in plant defense responses. Plant Signaling and Behavior. 13 (8), (2018).
  25. Iriti, M., Faoro, F. Chemical diversity and defence metabolism: How plants cope with pathogens and ozone pollution. International Journal of Molecular Sciences. 10 (8), 3371-3399 (2009).
  26. Lanzotti, V., Bonanomi, G., Scala, F. What makes Allium species effective against pathogenic microbes. Phytochemistry Reviews. 12 (4), 751-772 (2013).
  27. Kyung, K. H. Antimicrobial properties of allium species. Current Opinion in Biotechnology. 23 (2), 142-147 (2012).
  28. Hyldgaard, M., Mygind, T., Meyer, R. L. Essential oils in food preservation: mode of action, synergies, and interactions with food matrix components. Frontiers in microbiology. 3, 12 (2012).
  29. Bueno, J. Models of evaluation of antimicrobial activity of essential oils in vapour phase: a promising use in healthcare decontamination. Natural Volatiles & Essential Oils. 2 (2), 16-29 (2015).
  30. Doi, N. M., Sae-Eaw, A., Suppakul, P., Chompreeda, P. Assessment of synergistic effects on antimicrobial activity in vapour- and liquidphase of cinnamon and oregano essential oils against Staphylococcus aureus. International Food Research Journal. 26 (2), 459-467 (2019).
  31. Amat, S., Baines, D., Alexander, T. W. A vapour phase assay for evaluating the antimicrobial activities of essential oils against bovine respiratory bacterial pathogens. Letters in Applied Microbiology. 65 (6), 489-495 (2017).
  32. Feyaerts, A. F., et al. Essential oils and their components are a class of antifungals with potent vapour-phase-mediated anti-Candida activity. Scientific Reports. 8 (1), 1-10 (2018).
  33. Wang, T. H., Hsia, S. M., Wu, C. H., Ko, S. Y., Chen, M. Y., Shih, Y. H., Shieh, T. M., Chuang, L. C. Evaluation of the antibacterial potential of liquid and vapor phase phenolic essential oil compounds against oral microorganisms. PLoS ONE. 11 (9), 1-17 (2016).
  34. Dean, R., et al. The Top 10 fungal pathogens in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology. 13 (4), 414-430 (2012).
  35. Leadbeater, A. Recent developments and challenges in chemical disease control. Plant Protection Science. 51 (4), 163-169 (2015).
  36. Jin, C., Zeng, Z., Fu, Z., Jin, Y. Oral imazalil exposure induces gut microbiota dysbiosis and colonic inflammation in mice. Chemosphere. 160, 349-358 (2016).
  37. Kumar, R., Ghatak, A., Balodi, R., Bhagat, A. P. Decay mechanism of postharvest pathogens and their management using non-chemical and biological approaches. Journal of Postharvest Technology. 6 (1), 1-11 (2018).
  38. Talibi, I., Boubaker, H., Boudyach, E. H., Ait Ben Aoumar, A. Alternative methods for the control of postharvest citrus diseases. Journal of Applied Microbiology. 117 (1), 1-17 (2014).
  39. Arya, R., Sharma, R., Malhotra, M., Kumar, V., Sharma, A. K. Biodegradation Aspects of Carbendazim and Sulfosulfuron: Trends, Scope and Relevance. Current Medicinal Chemistry. 22 (9), 1147-1155 (2015).
  40. European Food Safety Authority. Conclusion on the peer review of the pesticide risk assessment of the active substance carbendazim. EFSA Journal. 8 (5), 1-76 (2010).
  41. Sakkas, H., Papadopoulou, C. Antimicrobial activity of basil, oregano, and thyme essential oils. Journal of Microbiology and Biotechnology. 27 (3), 429-438 (2017).
  42. Steyaert, J. M., Weld, R. J., Mendoza-Mendoza, A., Stewart, A. Reproduction without sex: conidiation in the filamentous fungus Trichoderma. Microbiology. 156, 2887-2900 (2010).
  43. Leontiev, R., Hohaus, N., Jacob, C., Gruhlke, M. C. H., Slusarenko, A. J. A Comparison of the antibacterial and antifungal activities of thiosulfinate analogues of allicin. Scientific Reports. 8 (1), 1-19 (2018).
  44. Scorzoni, L., et al. The use of standard methodology for determination of antifungal activity of natural products against medical yeasts Candida sp and Cryptococcus sp. Brazilian Journal of Microbiology. 38 (3), 391-397 (2007).
check_url/kr/61798?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gligorijevic, V., Benel, C., Gonzalez, P., Saint-Pol, A. Measuring Volatile and Non-volatile Antifungal Activity of Biocontrol Products. J. Vis. Exp. (166), e61798, doi:10.3791/61798 (2020).

View Video