Vi beskriver en modificeret agarbaseret metode designet til at kvantificere de svampedræbende virkninger af plantebaserede produkter. Både volatile og ikke-volatile bidrag til svampeaktiviteten kan vurderes ved hjælp af denne protokol. Derudover kan effekten mod svampe måles på centrale udviklingsstadier i et enkelt eksperimentelt setup.
Den beskrevne protokol er baseret på en plug-transfer-teknik, der giver mulighed for nøjagtig bestemmelse af mikroorganismemængder og deres udviklingsstadier. Et bestemt antal sporer spredes på en agarplade. Denne agarplade inkuberes i en bestemt periode, så svampene kan nå det forventede udviklingsstadium, undtagen sporer, hvor inkubation ikke er påkrævet. Agar stik dækket af sporer, hyphae, eller mycelium er næste trukket tilbage og overføres til agar medier, der indeholder svampedræbende forbindelse, der skal testes enten placeret i en afstand fra svampe eller i kontakt. Denne metode anvendes til test af både flydende ekstrakter og faste prøver (pulvere). Det er især velegnet til at kvantificere de relative bidrag fra flygtige og ikke-flygtige stoffer i bioaktive blandinger og til bestemmelse af deres virkninger, specielt på sporer, tidlig hyphae og mycelium.
Metoden er yderst relevant for karakteriseringen af biokontrolprodukters svampedræbende aktivitet, navnlig planteafledte produkter. Til plantebehandling kan resultaterne faktisk bruges til at vejlede valget af anvendelsesmåde og til at fastsætte udløsertærsklerne.
Globale tab af frugt og grøntsager kan nå op til 50% af produktionen1 og skyldes hovedsagelig mad henfald forårsaget af svampe fordærv i marken eller under post-høst opbevaring2,3, på trods af den omfattende beskæftigelse af syntetiske fungicider siden midten af det tyvende århundrede4. Anvendelsen af disse stoffer tages op til fornyet overvejelse, da det udgør alvorlige miljø- og sundhedsrisici. Da de skadelige konsekvenser af deres anvendelse viser sig i hele økosystemerne , og der er indsamlet dokumentation for potentielle sundhedsmæssige virkninger5,6, udvikles der nye alternativer til gamle profylaktiske strategier til behandling før og efterhøsten 7,8,9. Derfor er den udfordring, vi står over for, dobbelt. Nye svampedræbende strategier skal for det første opretholde niveauet for fødevaresikkerhed mod fytopatogener og samtidig bidrage til en drastisk reduktion af landbrugspraksissens miljømæssige fodaftryk. For at opfylde dette ambitiøse mål foreslås strategier inspireret af det naturlige forsvar udviklet i planter, da mere end 1000 plantearter er blevet fremhævet for deres antimikrobielle egenskaber8. For eksempel er planter, der har udviklet naturlige fungicider til bekæmpelse af fytopathogens, en ny ressource i at udforske udviklingen af nye biokontrolprodukter2. Æteriske olier er flagskib molekyler af denne type. For eksempel beskytter Origanum æterisk olie tomatplanter mod grå skimmelsvamp i drivhuse 10 og Solidago canadensis L. og cassia æteriske olier har vist sig at bevare post-høstede jordbær fra grå skimmel skader11,12. Disse eksempler illustrerer, at biokontrol og især plantebaserede produkter udgør en løsning, der kombinerer biologisk effektivitet og miljømæssig bæredygtighed.
Således er planter en vigtig ressource af molekyler af potentiel interesse for afgrødebeskyttelsesindustrien. Der er imidlertid kun foreslået en håndfuld planteprodukter, der skal anvendes som biokontrolprodukter, selv om de generelt anerkendes som sikre, ikke-fytotoksiske og miljøvenlige2. Der er konstateret visse vanskeligheder i forbindelse med gennemførelsen fra laboratoriet til marken , f.eks. Således bliver det vigtigt at forbedre muligheden for lab tests til bedre at forudsige felteffektivitet. I denne forbindelse er svampedræbende testmetoder for planteafledte produkter nødvendige både for at evaluere deres svampedræbende virkning og for at definere deres optimale anvendelsesbetingelser. Specifikt er biokontrolprodukter generelt mindre effektive end kemiske fungicider, så en bedre forståelse af deres virkningsmåde er vigtig for at foreslå passende formuleringer, identificere anvendelsesmåden på områder og definere, hvilken udviklingsstadium af patogenet der er sårbar over for kandidatbioproduktet.
De nuværende metoder til antibakterielle og svampedræbende aktiviteter omfatter diffusionsmetoder såsom diffusion af agardisketter, fortynding, bioautografi og flowcytometri13. De fleste af disse teknikker, og mere specifikt, standard antifungal modtagelighed test – agar-disk diffusion og fortynding assays – er velegnede til vurdering af antimikrobiel aktivitet opløselige forbindelser på bakterielle og svampesporer i flydende suspensioner14. Disse metoder er dog generelt ikke egnede til at teste faste forbindelser såsom tørret plantepulver eller til at kvantificere svampedræbende aktivitet under myceliumvækst, da de kræver sporefortynding eller sporespredning på agarplader og / eller fortynding af svampedræbende forbindelser13. I den fødevaregiftede metode podes agarplader, der indeholder svampedræbende middel, med en 5-7 mm diameter disk udtaget fra en 7-dages gammel svampekultur uden at overveje den nøjagtige mængde start mycelium. Efter inkubation bestemmes svampedræbende aktivitet som en procentdel af radialvæksthæmning17,18,19. Med denne tilgang kan vi evaluere svampedræbende aktivitet på mycelial vækst. Derimod udføres agarfortyndingsmetoden for at bestemme svampedræbende aktivitet på sporer, der er direkte podet på overfladen af agarpladen, der indeholder svampedræbende forbindelser13,20,21. Disse to tilgange giver komplementære resultater med antifungal aktivitet. Men disse er to uafhængige teknikker, der anvendes parallelt, som ikke giver nøjagtig side-by-side sammenligning af den relative effekt af svampedræbende forbindelser på sporer og mycelium17,20,22 da mængden af startvalsemateriale varierer i de to tilgange. Desuden skyldes den svampedræbende aktivitet af et planteafledt produkt ofte kombinationen af svampedræbende molekyler syntetiseret af planter til ansigt patogener. Disse molekyler omfatter proteiner, peptider23,24, og metabolitter med bred kemisk diversitet og tilhører forskellige klasser af molekyler såsom polyfenoler, terpener, alcaloïds25, glucosinolater8, og organosulfurforbindelser26. Nogle af disse molekyler er flygtige eller bliver flygtige under patogenangreb27. Disse midler er oftest dårligt vandopløselige og højdamptryksforbindelser, der skal genvindes gennem vanddestillation som æteriske olier, hvoraf nogle antimikrobielle aktiviteter er veletablerede.28. Dampfase medieret modtagelighed assays er blevet udviklet til at måle antimikrobiel aktivitet af flygtige forbindelser efter fordampning og migration via damp fase29. Disse metoder er baseret på indførelsen af svampedræbende forbindelser i en afstand fra den mikrobielle kultur29,30,31,32,33. I den almindeligt anvendte dampfase agaranalyse deponeres æteriske olier på en papirdisk og placeres i midten af dækslet af petriskålen i afstand fra bakteriel eller svampesporeaffjedring, som spredes på agar medium. Diameteren af væksthæmmende zone måles derefter på samme måde som for agar-disk diffusionsmetoden20,24. Der er udviklet andre metoder til kvantitativ måling af æteriske oliers antifungale modtagelighed i dampfasen, der stammer fra bouillonfortyndingsmetoden, hvorfra der blev beregnet en hæmmende dampfasemedieret antimikrobiel aktivitet.32, eller fremstillet af diffusionsanalyser af agar-disk31. Disse metoder er generelt specifikke for dampfaseaktivitetsundersøgelser og ikke egnede til kontakthæmmende assays. Dette udelukker bestemmelse af det relative bidrag fra flygtige og ikke-flygtige stoffer til svampedræbende aktivitet i en kompleks bioaktiv blanding.
Den kvantitative metode, vi har udviklet, har til formål at måle den svampedræbende virkning af tørret plantepulver på kontrollerede mængder sporer og dyrket mycelium deponeret på overfladen af et agarmedium for at reproducere luftvæksten af fytopathogens under infektion af planter15 samt et sammenkoblet mycelialt netværk16. Tilgangen er en modificeret eksperimentel opsætning baseret på agarfortynding og fødevaregifte metoder, der også i samme eksperimentelle opsætning muliggør side om side kvantificering af bidraget fra både flygtige og ikke-flygtige svampedræbende metabolitter. I denne undersøgelse er metoden blevet benchmarket mod aktiviteten af tre velkaraktererede svampedræbende præparater.
Den fremgangsmåde, der præsenteres her, giver mulighed for evaluering af svampedræbende egenskaber ved minimalt forarbejdede plantebaserede produkter. I denne protokol opnås homogen fordeling af sporer på agaroverfladen ved hjælp af 2 mm glasperler. Dette trin kræver håndtering færdigheder til korrekt at distribuere perler og for at opnå reproducerbare resultater, i sidste ende gør det muligt at sammenligne svampedræbende virkninger på forskellige stadier af svampevækst. Vi fandt ud af, at 5 mm glasperler e…
The authors have nothing to disclose.
Vi er Frank Yates meget taknemmelige for hans dyrebare råd. Dette arbejde blev støttet af Sup’Biotech.
Autoclave-vacuclav 24B+ | Melag | ||
Carbendazim | Sigma | 378674-100G | |
Distilled water | |||
Eppendorf tubes | Sarstedt | 72.706 | 1.5 mL |
Falcons tubes | Sarstedt | 547254 | 50 mL |
Five millimeters diameter stainless steel tube | retail store | / | |
Food dehydrator | Sancusto | six trays | |
Garlic powder | Organic shop | ||
Glass beads | CLOUP | 65020 | ![]() |
Hemocytometer counting cell | Jeulin | 713442 | / |
Incubator | Memmert | UM400 | 30 °C |
Knife mill | Bosch | TSM6A013B | |
Manual cell counter | Labbox | HCNT-001-001 | / |
Measuring ruler | retail store | ||
Microbiological safety cabinets | FASTER | FASTER BHA36, TYPE II, Cat 2 | |
Micropipette | Mettler-Toledo | 17014407 | 100 – 1000 µL |
Micropipette | Mettler-Toledo | 17014411 | 20 – 200 µL |
Micropipette | Mettler-Toledo | 17014412 | 2 – 20 µL |
Petri dish | Sarstedt | 82-1194500 | ![]() |
Petri dish | Sarstedt | 82-1473 | ![]() |
Pipette Controllers-EASY 60 | Labbox | EASY-P60-001 | / |
Potato Dextrose Agar | Sigma | 70139-500G | |
Precision scale-RADWAG | Grosseron | B126698 | AS220.R2-ML 220g/0.1mg |
Rake | Sarstedt | 86-1569001 | / |
Reverse microscope AE31E trinocular | Grosseron | M097917 | / |
Sterile graduated pipette | Sarstedt | 1254001 | 10 mL |
Thymus essential oil | Drugstore | Essential oil 100% | |
Tips 1000 µL | Sarstedt | 70.762010 | |
Tips 20 µL | Sarstedt | 70.760012 | |
Tips 200 µL | Sarstedt | 70.760002 | |
Tooth pick | retail store | ||
Trichoderma spp strain | Strain of LRPIA laboratory | ||
Tween-20 | Sigma | P1379-250ML | |
Tween-80 | Sigma | P1754-1L | |
Tweezers | Labbox | FORS-001-002 | / |