Summary

In Vitro 3D Cell-Cultured Modelos arteriais para estudar a segmentação de drogas vasculares sob fluxo

Published: March 14, 2021
doi:

Summary

Aqui, apresentamos um novo protocolo para estudar e mapear a deposição direcionada dos portadores de drogas para células endoteliais em modelos de artéria humanas fabricadas, de tamanho real, tridimensionais sob fluxo fisiológico. O método apresentado pode servir como uma nova plataforma para o direcionamento de portadores de drogas dentro do sistema vascular.

Abstract

O uso de modelos tridimensionais (3D) de artérias humanas, que são projetados com as dimensões corretas e anatomia, permite a modelagem adequada de vários processos importantes no sistema cardiovascular. Recentemente, embora vários estudos biológicos tenham sido realizados utilizando tais modelos 3D de artérias humanas, eles não foram aplicados para estudar o direcionamento vascular. Este artigo apresenta um novo método para fabricar modelos arteriais humanos reconstruídos de tamanho real usando uma técnica de impressão 3D, forra-los com células endoteliais humanas (CE) e estudar partículas direcionadas sob fluxo fisiológico. Esses modelos têm a vantagem de replicar o tamanho fisiológico e as condições dos vasos sanguíneos no corpo humano usando componentes de baixo custo. Esta técnica pode servir como uma nova plataforma para estudar e entender a segmentação de medicamentos no sistema cardiovascular e pode melhorar o design de novas nanomedicinas injetáveis. Além disso, a abordagem apresentada pode fornecer ferramentas significativas para o estudo da entrega direcionada de diferentes agentes para doenças cardiovasculares sob fluxo específico do paciente e condições fisiológicas.

Introduction

Várias abordagens foram recentemente aplicadas utilizando modelos 3D de artérias humanas1,2,3,4,5. Esses modelos replicam a anatomia fisiológica e o ambiente de diferentes artérias do corpo humano in vitro. No entanto, eles têm sido usados principalmente em estudos de biologia celular. Estudos atuais sobre direcionamento vascular de partículas para o endotélio incluem em simulações computacionais silico 6,7,8, modelos microfluidos in vitro 9,10,11, e in vivo modelos animais12. Apesar dos insights que eles forneceram, esses modelos experimentais falharam em simular com precisão o processo de segmentação que ocorre nas artérias humanas, onde o fluxo sanguíneo e a hemodinâmica constituem fatores dominantes. Por exemplo, o estudo de partículas direcionadas a regiões ateroscleróticas na bifurcação da artéria carótida, conhecida por seu complexo padrão de fluxo de recirculação e gradiente de estresse de cisalhamento de parede, pode impactar a viagem tomada pelas partículas antes de atingirem o endotélio13,14,15,16. Portanto, esses estudos devem ser realizados em condições que replicam o ambiente fisiológico, ou seja,tamanho, dimensão, anatomia e perfil de fluxo.

Recentemente, este grupo de pesquisa fabricou modelos arteriais humanos reconstruídos em 3D para estudar a deposição e direcionamento de partículas para a vasculatura17. Os modelos foram baseados em réplicas geométricas 3D de vasos sanguíneos humanos, que foram então cultivadas com CEs humanos que posteriormente forraram suas paredes internas. Além disso, quando submetidos a um sistema de perfusão que produz fluxo fisiológico, os modelos replicaram com precisão as condições fisiológicas. O sistema de perfusão foi projetado para perfumar fluidos a uma taxa de fluxo constante, utilizando uma bomba peristáltica em configurações de circuito fechado e aberto(Figura 1). O sistema pode ser usado como um circuito fechado para mapear a deposição de partículas e direcionar para as células semeadas dentro do modelo carótida. Além disso, pode ser usado como um circuito aberto para lavar partículas não aderentes no final dos experimentos e para limpar e manter o sistema. Este artigo apresenta protocolos para a fabricação de modelos 3D da bifurcação carótida humana, design do sistema de perfusão e mapeamento da deposição de partículas-alvo dentro dos modelos.

Protocol

NOTA: Este protocolo descreve a fabricação de um modelo 3D da artéria carótida e pode ser aplicado para gerar qualquer outra artéria de interesse simplesmente modificando os parâmetros geométricos. 1. Design e fabricação de uma bifurcação 3D do modelo de artéria carótida humana Escolha imagens de pacientes ou geometrias previamente estudadas da bifurcação da artéria carótida humana e crie um modelo de design auxiliado por computador do molde que precisa ser impresso….

Representative Results

Este artigo apresenta um novo protocolo para mapear a deposição de partículas dentro de modelos de artéria humana 3D de tamanho real, que podem fornecer uma nova plataforma para pesquisa de entrega de medicamentos. Utilizando uma técnica de impressão 3D, foi fabricado um modelo da artéria de bifurcação carótida humana(Figura 2). O modelo era feito de borracha de silicone e semeado com CEs humanos (Figura 3). É importante ressaltar que este protocolo p…

Discussion

As abordagens atuais para estudar o direcionamento vascular de partículas ficam aquém na replicação das condições fisiológicas presentes no corpo humano. Apresentado aqui é um protocolo para fabricar modelos reconstruídos em 3D de artérias humanas para estudar partículas direcionadas às CES que revestem a artéria sob fluxo fisiológico aplicado usando um sistema de perfusão personalizado. Ao escolher o material para impressão 3D, é melhor usar um plástico transparente para evitar a transferência de pigm…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pela Israel Science Foundation (isf grant # 902/18). A bolsa de estudos de Maria Khoury foi apoiada pelo Programa de Doutorado feminino da Baronesa Ariane de Rothschild.

Materials

3D printer FormLabs PKG-F2-REFURB
Acetone, absolute (AR grade)
Connectors Nordson Medical FTLL013-1 Female Luer
FTLL230-1 Female Luer
FTLL360-1 Female Luer
LP4-1 Male Luer Integral Lock
Damper Thermo-Fisher Scientific DS2127-0250 Nalgene Polycarbonate, Validation Bottle
Damper Cover Thermo-Fisher Scientific 2162-0531 Nalgene Filling/Venting Closures
Elastosil Elastosil RT 601 A Wacker 60003805
Elastosil RT 601 B Wacker 60003817 The crosslinker
Endothelial Cell Media ScienCell 1001
Fibrontectin Sigma Aldrich F0895-5mg
HUVEC Lonza CC-2519
Isopropyl alcohol, AR grade 99.5% Remove plastic dust from the sanded model
Lacquer Rust-Oleum 2X-Ultra cover Gloss Clear
Matlab Mathworks https://www.mathworks.com/products/matlab.html
Microscope Nikon SMZ25
Microscope Camera Nikon DS-Qi2
Peristaltic pump Watson Marlow 530U IP31 With 2 pumpheads: 313D
Plastic tube clamp Quickun 1-2240-stopvalve-2pcs
Polystyrene Particles  Thermo-Fisher Scientific  F8827  Diameter = 2 µm
Printer resin FormLabs RS-F2-GPCL-04
Rotator ELMI Ltd. Intelli-Mixer RM-2
Solidworks  SolidWorks Corp., Dassault Systèmes https://www.solidworks.com/
Tubing Watson Marlow 933.0064.016 Tubing for the pump: 6.4 mm ID
All the other tubing: Silicon tubing: 4 mm ID

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check_url/kr/62279?article_type=t

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Cite This Article
Khoury, M., Epshtein, M., Korin, N. In Vitro 3D Cell-Cultured Arterial Models for Studying Vascular Drug Targeting Under Flow. J. Vis. Exp. (169), e62279, doi:10.3791/62279 (2021).

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