Summary

Analyse van transformerende groeifactor ß familiesplitsingsproducten uitgescheiden in de blastocoele van Xenopus laevis-embryo's

Published: July 21, 2021
doi:

Summary

Wanneer Transforming Growth Factor ß familie voorloper eiwitten ectopisch tot expressie komen in Xenopus laevis embryo’s, worden ze gedimeriseerd, worden ze gesplitst en worden ze uitgescheiden in de blastocoele, die begint bij de late blastula tot vroege gastrula stadium. We beschrijven een methode voor het opzuigen van splitsingsproducten uit de blastocoeleholte voor immunoblotanalyse.

Abstract

De twee armen van de Transforming Growth Factor ß (Tgfß) superfamilie, vertegenwoordigd door respectievelijk Tgfß/Nodal of Bone morphogenetic protein (Bmp) liganden, spelen een essentiële rol in de embryonale ontwikkeling en volwassen homeostase. Leden van de Tgfß-familie worden gemaakt als inactieve voorlopers die dimeriseren en vouwen in het endoplasmatisch reticulum. De voorloper wordt vervolgens gesplitst in ligand- en prodomeinfragmenten. Hoewel alleen het dimerische ligand Tgfß-receptoren kan activeren en stroomafwaartse signalering kan activeren, is er een groeiende erkenning dat het prodomeingedeelte bijdraagt aan ligandactiviteit. In dit artikel wordt een protocol beschreven dat kan worden gebruikt om splitsingsproducten te identificeren die worden gegenereerd tijdens de activering van Tgfß-precursoreiwitten. RNA dat codeert voor Tgfß-voorlopers wordt eerst micro-geïnjecteerd in X. laevis-embryo’s. De volgende dag worden splitsingsproducten verzameld uit de blastocoele van gastrula-stadiumembryo’s en geanalyseerd op Western blots. Dit protocol kan relatief snel worden voltooid, vereist geen dure reagentia en biedt een bron van geconcentreerde Tgfß-splitsingsproducten onder fysiologische omstandigheden.

Introduction

Leden van de Transforming Growth Factor ß (Tgfß) superfamilie worden gesynthetiseerd als inactieve, gedimde voorlopereiwitten. De voorlopers worden vervolgens gesplitst door leden van de proproteïne convertase (PC) familie, hetzij binnen de secretoire route of buiten cellen. Hierdoor ontstaat een actief, disulfide-gebonden liganddimeer en twee prodomeinfragmenten1. Hoewel het al meer dan 30 jaar bekend is dat het prodomein van voorlopers van de Tgfß-familie nodig is om een actief ligand2te genereren, is het begrip van hoe prodomeinen bijdragen aan de ligandfunctie onvolledig.

Hoewel het begrip van het proces van proteolytische activering van Tgfß-familieleden onvolledig blijft, is er een toenemende belangstelling voor het begrijpen welke PC-consensusmotieven in vivoworden gesplitst, of de splitsing plaatsvindt in een specifiek subcellulair of extracellulair compartiment, en of het prodomein covalent of niet-covalent geassocieerd blijft met het gekloofde ligand3. Verschillende studies hebben aangetoond dathet prodomein niet alleen ligandvouwing vóór splitsing4, 5,maar ook de stabiliteit van de groeifactor en het actiebereik6,7,8, 9kan beïnvloeden, de vorming van homodimeren of heterodimeren10kan stimuleren, het ligand in de extracellulaire matrix kan verankeren om ligandlatentie11te behouden en in sommige gevallen als een ligand op zichzelf te functioneren om heterologe te activeren signalering12. Heterozygote puntmutaties binnen het prodomein van veel leden van de Tgfß-familie zijn geassocieerd met oog-, bot-, nier-, skelet- of andere defecten bij mensen3. Deze bevindingen benadrukken de cruciale rol van het prodomein bij het genereren en onderhouden van een actief ligand en benadrukken het belang van het identificeren en ontcijferen van de rol van splitsingsproducten die zijn ontwikkeld tijdens proteolytische rijping van Tgfß-familieprecursoren.

Hier beschrijven we een gedetailleerd protocol voor het opzuigen van splitsingsproducten die worden gegenereerd tijdens de rijping van Tgfß-familieprecursoren uit de blastocoele van X. laevis-embryo’s en analyseren ze vervolgens op immunoblots. Dit protocol kan worden gebruikt om te bepalen of een of meer PC-consensusmotieven in een voorlopereiwit in vivo10,13worden gesplitst, de endogene PC(‘s) identificeren die elk motief splitsen13,14,in vivo vorming van Tgfß-familiehomodimeren versus heterodimeren10 vergelijken of analyseren of menselijke ziekte-geassocieerde puntmutaties in Tgfß-precursoren hun vermogen om functionele dimerische liganden te vormen beïnvloeden.

Protocol

Alle beschreven procedures zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van de Universiteit van Utah. Kikkers worden gehuisvest in een IACUC-goedgekeurde faciliteit. Mannelijke kikkers worden geëuthanaseerd door onderdompeling in tricaïne na het knippen van de ventrikel van het hart. Vrouwelijke kikkers worden maximaal 24 uur in het laboratorium gehuisvest na hormonale inductie van paaien om het verzamelen van eieren mogelijk te maken en vervolgens teruggebracht naar de zorginstelling.</…

Representative Results

Het doel van het experiment dat hieronder wordt beschreven, was om te bepalen of Bmp4 en Bmp7 heterodimeren vormen (dimeren bestaande uit één Bmp4-ligand en één Bmp7-ligand), homodimeren (samengesteld uit twee Bmp4- of twee Bmp7-liganden), of een mengsel van elk wanneer ze samen worden uitgedrukt in X. laevis. De gegevens in figuur 2 zijn afkomstig uit een eerder gepubliceerde studie10. Figuur 2A is een schema van splitsingsp…

Discussion

De belangrijkste voordelen van het hier beschreven protocol zijn dat het relatief snel kan worden voltooid, geen dure reagentia vereist en een bron van geconcentreerde Tgfß-splitsingsproducten biedt onder fysiologische omstandigheden. Een ander voordeel is dat het iemand in staat stelt om epitoop-gelabelde eiwitten te analyseren en zo het tekort aan commercieel beschikbare antilichamen te omzeilen die de meeste Tgfß-familie prodomein herkennen. Hoewel het ook mogelijk is om de splitsing van epitoop-gelabelde Tgfß-voor…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken Mary Sanchez voor de uitstekende verzorging van dieren. Het onderzoek van de auteurs wordt ondersteund door het National Institute of Child Health and Human Development van de National Institutes of Health (NIH / NICHD) subsidies R01HD067473-08 en R21 HD102668-01 en door het National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases (NIDDK / NIH) subsidie R01DK128068-01.

Materials

ß-mercaptoethanol Fisher AC125470100
Bromophenol Blue Fisher B392-5
Calcium Chloride Fisher C79-500
Calcium Nitrate Fisher C109-500
Disposable Pellet Pestle/Tissue Grinder Fisher 12-141-364
Dumont #5 forceps Fine Science tools 11251-10
Fetal Bovine Serum Atlanta Biologicals S11150H
Ficoll 400 Sigma Aldrich F9378-500G
Glass capillary, 1 X 90 mm Narshige G-1
Glycerol Fisher G33-4
HEPES Fisher BP310-500
Human chorionic gonadotropin Sigma Aldrich CG10-10VL
Injection Syringe, 1 mL Fisher 8881501368
L-Cysteine Sigma Aldrich C7352
Magnesium Sulfate Fisher M63-500
Needle, 26 G Fisher 305111
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140148
Picoliter Microinjector Warner Instruments PLI-100A
Pipette Puller Narashige PC-100
Potassium Chloride Fisher P217-500
PVDF Membrane Sigma Aldrich IPVH00010
Sodium Bicarbonate Fisher S233-500
Sodium Chloride Fisher S271-10
Sodium Dodecyl Sulfate Fisher BP166-500
Sodium Hydroxide Fisher S318-500
Tricaine-S Pentair TRS5
Tris Fisher BP152-5

References

  1. Harrison, C. A., Al-Musawi, S. L., Walton, K. L. Prodomains regulate the synthesis, extracellular localisation and activity of TGF-beta superfamily ligands. Growth Factors. 29 (5), 174-186 (2011).
  2. Gray, A. M., Mason, A. J. Requirement for activin A and transforming growth factor–beta 1 pro-regions in homodimer assembly. Science. 247 (4948), 1328-1330 (1990).
  3. Constam, D. B. Regulation of TGFbeta and related signals by precursor processing. Seminars in Cell and Developmental Biology. 32, 85-97 (2014).
  4. Wang, X., Fischer, G., Hyvonen, M. Structure and activation of pro-activin A. Nature Communications. 7, 12052 (2016).
  5. Zhao, B., Xu, S., Dong, X., Lu, C., Springer, T. A. Prodomain-growth factor swapping in the structure of pro-TGF-beta1. Journal of Biological Chemistry. 293 (5), 1579-1589 (2018).
  6. Cui, Y., et al. The activity and signaling range of mature BMP-4 is regulated by sequential cleavage at two sites within the prodomain of the precursor. Genes & Development. 15 (21), 2797-2802 (2001).
  7. Goldman, D. C., et al. Mutation of an upstream cleavage site in the BMP4 prodomain leads to tissue-specific loss of activity. Development. 133 (10), 1933-1942 (2006).
  8. Le Good, J. A., et al. Nodal stability determines signaling range. Current Biology. 15 (1), 31-36 (2005).
  9. Tilak, A., et al. Simultaneous rather than ordered cleavage of two sites within the BMP4 prodomain leads to loss of ligand in mice. Development. 141 (15), 3062-3071 (2014).
  10. Neugebauer, J. M., et al. The prodomain of BMP4 is necessary and sufficient to generate stable BMP4/7 heterodimers with enhanced bioactivity in vivo. Proceedings of the National Academy of Science U S A. 112 (18), 2307-2316 (2015).
  11. Robertson, I. B., Rifkin, D. B. Regulation of the Bioavailability of TGF-beta and TGF-beta-Related Proteins. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 8 (6), 355-372 (2016).
  12. Zhou, F., et al. GDF6-CD99 Signaling Regulates Src and Ewing Sarcoma Growth. Cell Reports. 33, 108332 (2020).
  13. Nelsen, S. M., Christian, J. L. Site-specific cleavage of BMP4 by furin, PC6, and PC7. Journal of Biological Chemistry. 284 (40), 27157-27166 (2009).
  14. Birsoy, B., et al. XPACE4 is a localized pro-protein convertase required for mesoderm induction and the cleavage of specific TGFbeta proteins in Xenopus development. Development. 132 (3), 591-602 (2005).
  15. Mimoto, M. S., Christian, J. L. Manipulation of gene function in Xenopus laevis. Methods Mol Biol. 770, 55-75 (2011).
  16. Nelsen, S., Berg, L., Wong, C., Christian, J. L. Proprotein convertase genes in Xenopus development. Developmental Dynamics. 233 (3), 1038-1044 (2005).
  17. Constam, D. B., Robertson, E. J. Regulation of bone morphogenetic protein activity by pro domains and proprotein convertases. Journal of Cell Biology. 144 (1), 139-149 (1999).
  18. Sopory, S., Nelsen, S. M., Degnin, C., Wong, C., Christian, J. L. Regulation of bone morphogenetic protein-4 activity by sequence elements within the prodomain. Journal of Biological Chemistry. 281 (45), 34021-34031 (2006).
  19. Sopory, S., Christian, J. L., Whitman, M. A., Whitman, S. . Analysis of Growth Factor Signaling in Embryos. , 38-55 (2006).
  20. Kim, H. S., McKnite, A., Christian, J. L. Proteolytic Activation of Bmps: Analysis of Cleavage in Xenopus Oocytes and Embryos. Methods in Molecular Biology. 1891, 115-133 (2019).
  21. Degnin, C., Jean, F., Thomas, G., Christian, J. L. Cleavages within the prodomain direct intracellular trafficking and degradation of mature bone morphogenetic protein-4. Molecular Biology of the Cell. 15 (11), 5012-5020 (2004).

Play Video

Cite This Article
Kim, H., Christian, J. L. Analysis of Transforming Growth Factor ß Family Cleavage Products Secreted Into the Blastocoele of Xenopus laevis Embryos. J. Vis. Exp. (173), e62782, doi:10.3791/62782 (2021).

View Video