Summary

Gnaver estrous cyklus overvågning ved hjælp af vaginal skylning: Ikke sådan noget som en normal cyklus

Published: August 30, 2021
doi:

Summary

Denne undersøgelse beskriver de afgørende faktorer, der skal overvejes i eksperimentelle designs, der involverer hunrotter. I en større forstand tjener disse data til at mindske stigmatisering og hjælpe med udviklingen af mere inkluderende diagnostiske og interventionsværktøjer.

Abstract

Den nuværende metode etablerer en reproducerbar, standardiseret og omkostningseffektiv tilgang til overvågning af den estrouscyklus hos kvindelige Sprague Dawley (SD) unge rotter. Denne undersøgelse demonstrerer kompleksiteten af hormonelle cyklusser og det brede spektrum af forståelse, der kræves for at konstruere en pålidelig og gyldig overvågningsteknik. Gennem en grundig undersøgelse af de vigtigste eksperimentelle design- og proceduremæssige elementer giver denne beskrivelse af cyklussen og dens grundlæggende principper en ramme for yderligere forståelse og dekonstruerer misforståelser til fremtidig replikation.

Sammen med en oversigt over prøveindsamlingsprocessen, der anvender vaginal skylning, beskriver proceduren mekanismen for datakategorisering i firetrinsmodellen af proestrus, østrus, metestrus og diestrus. Disse stadier er kendetegnet ved en ny foreslået tilgang, der anvender de 4 kategoriserende determinanter for vaginal væsketilstand, celletype (r) til stede, cellearrangement og cellemængde på indsamlingstidspunktet. Variationer af hvert trin, gunstige og ugunstige prøver, sondringen mellem cyklisk og acykliskitet og grafiske skildringer af de indsamlede kategoriseringskomponenter præsenteres sammen med effektiv fortolkning og organisatorisk praksis af dataene. Samlet set giver disse værktøjer mulighed for offentliggørelse af kvantificerbare dataområder for første gang, hvilket fører til standardisering af kategoriseringsfaktorer ved replikering.

Introduction

Nye bidrag
Gnaverens østrocyklus er blevet identificeret som en væsentlig indikator for velvære. Imidlertid hindrer ubevidste forstyrrelser af efterforskere og unøjagtige fortolkninger vedrørende den kvindelige krop det videnskabelige samfund. Selve etymologien af ordet “estrous” indebærer en følelse af underlegenhed og negativitet. Euripides brugte udtrykket til at beskrive en “vanvid” eller galskab, Homer til at beskrive panik og Platon til at beskrive en irrationel drift. Denne undersøgelse fremhæver, hvordan disse oprindelige perspektiver påvirker det nuværende videnskabelige samfund og adresserer disse bekymringer gennem et nyt mosaikparadigme – en opdateret kombination af tidligere studerede metoder, udvidet i omfang for en mere omfattende tilgang.

Undersøgelsen og brugen af denne teknik er for det første nødvendig, da der ikke er nogen standardiseret og omfattende overvågningsteknik, og datafortolkningspraksis kan være uklar. For det andet, selvom østrocyklusegenskaber er afhængige af individuelle rotter, der undersøges, er de ofte universaliserede. For det tredje, mens hormonelle cyklusser er rutinemæssige og gavnlige processer, er de omgivet af farlig stigmatisering udforsket i afsnittet ‘Oversættelse til mennesker’. Denne undersøgelse har til formål at løse disse tre problemer på tre måder – (A) ved at beskrive en dybdegående østrøs cyklusovervågningsteknik og afklare, hvordan resultaterne kan fortolkes, (B) ved at skitsere metoder, der opretholder integriteten og individualiteten af hver cyklus, og (C) ved at henlede opmærksomheden på misforståelser, der opretholder udokumenterede praksis.

Denne undersøgelse er også unik i sit fokus på unge rotter, en periode præget af afgørende udviklingsændringer, der kaster lys over forskellige adfærdsmæssige, anatomiske og fysiologiske manifestationer i voksenalderen1. Opbygning af et standardiseret eksperimentelt design til overvågning af hormoncyklusser i en underforsket population, samtidig med at almindelige forstyrrelser dekonstrueres, vil muliggøre udvikling af pålidelige og gyldige hormonelle korrelationer 2,3,4 og bestemmelse af tilstandsafhængige cyklusforstyrrelser 5,6,7,8,9,10 . I sidste ende tjener disse nyheder til at udvide diagnostiske kriterier, behandlinger og interventioner af forskellige wellness-bekymringer.

Grundlæggende definitioner og anvendelser
Den østrøse cyklus er en samling af dynamiske fysiologiske processer, der forekommer som reaktion på de tre oscillerende kvindelige kønssteroidhormoner: østradiol, leuteiniserende hormon (LH) og progesteron (figur 1A, B). Interaktioner mellem det endokrine og centralnervesystemet regulerer cyklussen, som oftest vedvarer i 4-5 dage og gentager sig fra begyndelsen af seksuel modning til reproduktiv ældning og / eller ophør. Det er opdelt i separate kategorier baseret på hormonniveauer – oftest i de 4 faser af diestrus (DIE), proestrus (PRO), østrus (EST) og metestrus (MET), som udvikler sig på en cirkulær måde. Antallet af divisioner kan variere fra 3 trin11 til 13 trin12 afhængigt af undersøgelsens art13. Det lavere antal divisioner udelukker ofte MET som en fase og klassificerer det som en overgangsperiode af kort varighed. Det højere tal inkluderer typisk underafsnit, der giver mulighed for en nærmere undersøgelse af fænomener som tumorudvikling eller spontan pseudograviditet, den fysiologiske tilstand af graviditet uden embryonal implantation 12,14,15.

I denne undersøgelse blev stadierne identificeret gennem komponenter i vaginalkanalen, navngivet de 3 kategoriserende determinanter-celletype (r) til stede, cellearrangement og cellemængde (figur 2A-D). Mens tilstanden af vaginalvæsken ikke blev overvåget i denne undersøgelse, anbefales det at inkludere det som en fjerde kategoriseringskomponent. Yderligere oplysninger om undersøgelse af vaginalvæsken findes i referencelisten16. De kategoriserende komponenter kan undersøges ved at ekstrahere celler via vaginal skylning, den primære teknik, der anbefales i moderne østrocyklusovervågning. Mens de dybtgående fysiologiske processer inden for hvert trin ligger uden for rammerne af denne undersøgelse, kan flere oplysninger findes i litteraturen17.

Brugen og den fortsatte udvikling af denne østrocyklusovervågningsteknik er forankret i forbindelserne mellem kønssteroidhormoner og funktionen af kropslige systemer såsom det kardiovaskulære system18, endokrine system8 og centralnervesystemet 19,20,21. Samtidig er det ikke altid nødvendigt at overvåge østrocyklus, når hungnavere er involveret 22,23,24,25. Det er snarere vigtigt først at overveje, om kønsforskelle er blevet rapporteret inden for det specifikke undersøgelsesområde, som kan undersøges yderligere i offentliggjorte anmeldelser 22,23. Selv om overvågning af skumringscyklus er afgørende i et bredt spektrum af forskningsundersøgelser, bør det ikke ses som en hindring for at inkludere hungnavere i forsøg. Selvom denne teknik kan virke kompleks og tidskrævende, kan selve proceduren tage mindre end 15 minutter at gennemføre, afhængigt af efterforskeren, og er omkostningseffektiv. Samlet set er inddragelsen af kvindelige gnavere i videnskabelige undersøgelser fordelagtig for forståelsen af kropslige systemer, forskellige tilstande og patologier og generel velvære, da denne udvikling hovedsageligt har været baseret på den mandlige kropsskabelon.

Universelle parametre og naturlige variationer i gnaveren
Etablering af intervaller for aspekter, der betragtes som “typiske”, er nødvendig for at definere standardcyklusmønstre, indstille parametre til komparative og analytiske formål og detektere abnormiteter og outliers. Samtidig er det også vigtigt at erkende, at hver rottes cyklus er unik, og afvigelser baseret på dyrestamme, fysiologiske processer og miljøforhold forventes. Faktisk er et af de mest “normale” aspekter af den østrøse cyklus variabilitet. Dette ses i den samlede cykluslængde med et interval på 3-38 dage26,27; alderen for seksuel modning, der kan variere fra 32-34 dage til flere uger 28,29,30; hvad der betragtes som acyklisk11, og de kategoriserende determinantmønstre 11,13. Samlet set er der ingen universel skabelon for den estrous cyklus, og at oversætte det til både det videnskabelige samfund og offentligheden er en vigtig del af den eksperimentelle proces.

Eksperimentelle tidspunkter og udviklingsalder
At anerkende dette princip om variabilitet hjælper med at opbygge et pålideligt og gyldigt eksperimentelt design. For eksempel er starten på overvågning af østrocykling afhængig af rotternes anatomiske og fysiologiske udvikling, som varierer afhængigt af miljømæssige og fysiologiske faktorer. Overvågning kan ikke begynde før udviklingen af vaginalåbningen (VO), som er den eksterne vaginale åbning omgivet af vulva, der fører til den indre del af vaginalkanalen (figur 3A-D). Mens VO ofte udvikler sig fuldt ud mellem 32 og 34 dage, forbliver den individualiseret til hvert emne, og meget om processen forbliver ukendt. Denne åbning er blevet brugt til at identificere begyndelsen af seksuel modning, som har været forbundet med stigningen i østradiol31, modningen af hypothalamus-hypofyse-ovarieaksen32 og den første ægløsning hos rotter 17,33,34,35. Nylige publikationer har imidlertid fundet ud af, at det kun er en indirekte markør for reproduktiv udvikling, da det kan blive afkoblet fra hormonelle og udviklingsmæssige forekomster i ugunstige miljøer31 og kan repræsentere ændringer i østradiolniveauer snarere end seksuel modning33. Derfor anbefales det ikke udelukkende at stole på VO for at bestemme udviklingsalder og som en kvalifikation til overvågning af østruscyklus36, men også at udnytte udseendet af det første EST-trin og cornificering af epitelcellerne30 for at markere begyndelsen af seksuel modning.

Kropsvægt er især korreleret med udviklingsalder i ungdomsperioden hos gnavere30,37 og kan derfor også hjælpe med at bestemme udviklingsalderen i denne periode. Foreslåede mekanismer relateret til dette fænomen omfatter stimulering af hormoner, der er nødvendige for reproduktiv udvikling, såsom væksthormon, og inhibering af hypothalamus-hypofyse adrenal (HPA) akse af appetitregulatoren, leptin30. Det anbefales dog ikke at bruge denne foranstaltning som den eneste indikator for udviklingsalder på grund af den store varians, der ses mellem rotter på tværs af arter og leverandørudbydere38. Den variation, der ses i udviklingen af VO og kropsvægt, eksemplificerer konceptets betydning i den samlede eksperimentelle proces.

Oversættelse til mennesker: kulturelle og videnskabelige sammenhænge
Det translationelle forhold mellem dyr-til-menneske reproduktive undersøgelser er tovejs. Resultaterne fra dyrebaserede undersøgelser påvirker, hvordan de menneskelige processer vurderes, nærmer sig og analyseres39. Opfattelsen af det menneskelige reproduktive system og dets relaterede processer påvirker, hvordan dyr studeres. Faktisk stammer en af de højeste indikationer for yderligere forskning på dette område fra partiske sociokulturelle overbevisninger relateret til hormonelle cyklusser, der påvirker den videnskabelige proces. Mange af disse konventioner er afledt af en generel kulturel modvilje mod at diskutere menstruation, hvilket har ført til et datagab i velunderbygget viden 40,41. Dette har et spektrum af konsekvenser, der spænder fra mindre til dødelig – fra reolhøjde og smartphonestørrelse til politiets kropspansertilpasning og ubesvarede kræftdiagnoser42.

Beskrivelsen af menstruation som uhygiejnisk, destruktiv og giftig – set i ærede tekster, medier, ordbøger og medicinsk lære – bevares af videnskabelige publikationer. Dette sker gennem unøjagtige og partiske beskrivelser af hormonelle cyklusser, isoleringen af reproduktionssystemet fra dets neuroendokrine modstykker og miljøpåvirkninger og det reduktionistiske perspektiv på afslutningen af en cyklus som en ‘manglende undfangelse’43,44. Dette fører til skabelsen af usund eksperimentel praksis, såsom udeladelse af eksterne variabler, der påvirker hormonelle cyklusser, bestemmelse af start og endepunkter udelukkende baseret på anatomiske udviklinger og måling af cyklusfremskridt på en lineær snarere end cirkulær måde. På trods af den direkte sammenhæng mellem sociokulturelle faktorer og biologiske konsekvenser overvejes det ikke ofte i videnskabelig litteratur. Gennem inspektion af mere holistiske publikationer 43,44,45 kan forskere dekonstruere disse stigmas og skabe mere pålidelige og gyldige eksperimentelle designs.

Protocol

Alle håndterings- og proceduremetoder, der er beskrevet i denne protokol, er i overensstemmelse med National Institutes of Health (NIH) retningslinjer for dyrepleje og brug og er blevet godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved Pepperdine University og UCLA Chancellor’s Animal Research Committee (ARC). 1. Pleje og brug af dyr Erhverv hunrotter, i antal ifølge effektanalyse, og hanrotter for at fremme Whitten-effekten eller mere konsekvent cykling<sup class…

Representative Results

De nuværende data afspejler det kvindelige unge SD International Genetic Standardization Program (IGS) i nærværelse af mandlige SD-rotter. Disse dyr blev placeret på både Pepperdine University og UCLA laboratorier som en del af en samarbejdsundersøgelse. Figur 5 viser flere variationer af de 4 cyklusfaser. Figur 5A1 blev identificeret som en diestrus-prøve med flere celletyper til stede. Dette eksempel viser, at prøver med et større ant…

Discussion

Vigtige trin og vigtige overvejelser
Visse kritiske trin i den medfølgende protokol kræver vægt, især inden for indsamling af vaginale celler. Under vaginal væskeekstraktion er sikring af den rette vinkel og dybde af sprøjteindsættelse nøglen til at producere tilfredsstillende resultater og i sidste ende forhindre irritation, skade eller cervikal stimulering af dyret. Stimuleringen af livmoderhalsen kan være en kilde til pseudopregnancy induktion, indikeret ved 12-14 dage af en leukocyt-kun v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev udført gennem et NIH-finansieret samarbejde mellem University of California Los Angeles Brain Injury Research Center (BIRC).

Materials

AmScope 40X-1000X LED Student Microscope + 5MP USB Camera AmScope Part Number: M150C-E5 EAN: 0608729747796 Model Number: M150C-E5 https://www.amazon.com/AmScope-40X-1000X-Student-Microscope-Camera/dp/B00O9GNOTA/ref=sr_1_15?crid=2W9CHTG8YSOTV&amp;
keywords=usb+camera+for+microscope&amp;
qid=1572477663&amp;s=industrial
&amp;sprefix=USB+camera+for+micr%2Cindustrial%2C177&amp;sr=1-15
BD PrecisionGlide Needle Pack, 20G x 1, Short Bevel Fischer Scientific 14-815-526 https://www.fishersci.com/shop/products/bd-precisionglide-single-use-needles-short-bevel-regular-wall-4/14815526#?keyword=BD%20PrecisionGlide%20Needle%20Pack,%2020G%20x%201
Bed O Cob 1/8 NEWCO 93009 https://andersonslabbedding.com/cob-products/bed-ocobs-8b/
Corning™ Plain Microscope Slides Plain water-white glass Fischer Scientific 12-553-7A https://www.fishersci.com/shop/products/corning-plain-microscope-slides-microscope-slides-75-x-25mm/125537a
Corning™ Rectangular Cover Glasses Fischer Scientific 12-553-464 https://www.fishersci.com/shop/products/corning-square-rectangular-cover-glasses-rectangle-no-1-thickness-0-13-0-17mm-size-24-x-50mm/12553464#?keyword=true
Kimberly-Clark Professional™ Kimtech Science™ Kimwipes™ Delicate Task Wipers, 1-Ply Fischer Scientific 06-666 https://www.fishersci.com/shop/products/kimberly-clark-kimtech-science-kimwipes-delicate-task-wipers-7/p-211240?crossRef=kimwipes
Labdiet Rodent Lab Chow 50lb, 15001  NEWCO Specialty and LabDiet 5012 https://www.labdiet.com/products/standarddiets/rodents/index.html
Linear LED Bulb, UL Type A, T8, Medium Bi-Pin (G13), 4,000 K Color Temperature, Lumens 2550 lm Grainger 36UX10 https://www.grainger.com/product/36UX10?gclid=CjwKCAjw_
LL2BRAkEiwAv2Y3SW1WdNdkf7
zdIxoT9R6n2DGnrToJHjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRoCi4
cQAvD_BwE&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696
!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&ef_id=
CjwKCAjw_LL2BRAkEiwAv2Y3SW
1WdNdkf7zdIxoT9R6n2DGnrToJ
Hjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRo
Ci4cQAvD_BwE:G:s&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&cm_mmc=
PPC:+Google+PPC
Sodium Chloride Injection Bags, 0.9% Live Action Safety ABB079830939 https://www.liveactionsafety.com/injection-iv-solution-9-sodium-chloride-1000ml-bags/
Syringe Sterile 1ml  with Luer Slip Tip – 100 Syringes by BH Supplies BH Supplies ASIN: B07BQDRDC2 UPC: 638632928821 https://www.amazon.com/1ml-Syringe-Sterile-Luer-Slip/dp/B07BQDRDC2/ref=sr_1_1_sspa?crid=13S8EGEUK90G7&amp;
keywords=1ml+sterile+syringe&amp;qid=
1572478649&amp;s=industrial
&amp;sprefix=1+ml+steri%2Cindustrial%2C187&amp;sr=1-1-spons&amp;psc=1&amp;spLa=
ZW5jcnlwdGVkUXVhbGlmaWVy
PUEyRlo4NFdZWkJLWkxGJm
VuY3J5cHRlZElkPUEwMDEzODQ
yMjNWNzdWM0hTNzVBRCZlbmNy
eXB0ZWRBZElkPUEwNDI3NzAzM
0E5SzVKMkxaQVc2JndpZGdldE5h
bWU9c3BfYXRmJmFjdGlvbj1jbGlja
1JlZGlyZWN0JmRvTm90TG9nQ2
xpY2s9dHJ1ZQ==
Wire lids and floors Mouse Maternity Wire Bar LidUsed with Rat Cage (10" X 19" x 8"H )Overall dimen Allentown LV40326013 https://www.labx.com/item/wire-lids-and-floors-mouse-maternity-wire-bar-lidused/LV40326013#description
Ultra Lightweight Tissue and Plastic 17' x 24' Disposable Underpad Medline EAN: 0480196288558
 Global Trade Identification Number: 40080196288558
https://www.amazon.com/Medline-Industries-MSC281224C-Lightweight-Disposable/dp/B00A2G67YU/ref=sr_1_4?keywords=medline+industries+surgical+pads&amp;qid=1572475853&amp;
sr=8-4

References

  1. Schneider, M. Adolescence as a vulnerable period to alter rodent behavior. Cell and Tissue Research. 354 (1), 99-106 (2013).
  2. Camacho-Arroyo, I., Montor, J. M. Beyond reproductive effects of sex steroids. MiniReviews in Medicinal Chemistry. 12 (11), 1037-1039 (2012).
  3. Shah, S. I. A. Systemic non-reproductive effects of sex steroids in adult males and females. Human Physiology. 44, 83-87 (2018).
  4. Wierman, M. E. Sex steroid effects at target tissues: mechanisms of action. Advances in Physiology Education. 31 (1), 26-33 (2007).
  5. An, G., et al. Pathophysiological changes in female rats with estrous cycle disorder induced by long-term heat stress. BioMed Research International. 2020, 4701563 (2020).
  6. Donato, J., et al. The ventral premammillary nucleus links fasting-induced changes in leptin levels and coordinated luteinizing hormone secretion. Journal of Neuroscience. 29 (16), 5240-5250 (2009).
  7. Fortress, A. M., Avcu, P., Wagner, A. K., Dixon, C. E., Pang, K. Experimental traumatic brain injury results in estrous cycle disruption, neurobehavioral deficits, and impaired GSK3β/β-catenin signaling in female rats. Experimental Neurology. 315, 42-51 (2019).
  8. Hatsuta, M., et al. Effects of hypothyroidism on the estrous cycle and reproductive hormones in mature female rats. European Journal of Pharmacology. 486 (3), 343-348 (2004).
  9. Jaini, R., Altuntas, C. Z., Loya, M. G., Tuohy, V. K. Disruption of estrous cycle homeostasis in mice with experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroimmunology. 279, 71-74 (2015).
  10. Tropp, J., Markus, E. J. Effects of mild food deprivation on the estrous cycle of rats. Physiology and Behavior. 73 (4), 553-559 (2001).
  11. Goldman, J. M., Murr, A. S., Cooper, R. L. The rodent estrous cycle: characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Research. Part B, Developmental and Reproductive Toxicology. 80 (2), 84-97 (2007).
  12. Thung, P. J., Boot, L. M., Muhlbock, O. Senile changes in the oestrous cycle and in ovarian structure in some inbred strains of mice. Acta Endocrinologica. 23 (1), 8-32 (1956).
  13. Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal cytology of the laboratory rat and mouse: Review and criteria for the staging of the estrous cycle using stained vaginal smears. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
  14. . Biochemical and endocrinological studies of normal and neoplastic tissue: The metabolism of estrogen-producing ovarian tumors and other malignancies in the mouse Available from: https://www.translatetheweb.com/?from=nl&to=en&ref=SERP&dl=en&rr=UC&a=https%3a%2f%2frepository.tudelft.nl%2fislandora%2fobject%2fuuid%253A8776d58a-6695-4a38-99ca-0abf607480f0 (2021)
  15. Van Der Lee, S., Boot, L. M. Spontaneous pseudopregnancy in mice. Acta Physiologica Pharmacologica Neerlandica. 4 (3), 442-444 (1955).
  16. Paccola, C., Resende, C., Stumpp, T., Miraglia, S., Cipriano, I. The rat estrous cycle revisited: a quantitative and qualitative analysis. Animal Reproduction. 10 (4), 677-683 (2013).
  17. Ojeda, S. R., Urbanski, H. F., Knobil, E., Neill, J. D. Puberty in the rat. The Physiology of Reproduction. , 363-409 (1994).
  18. Schallmayer, S., Hughes, B. M. Impact of oral contraception and neuroticism on cardiovascular stress reactivity across the menstrual cycle. Psychology, Health & Medicine. 15 (1), 105-115 (2010).
  19. Barreto-Cordero, L. M., et al. Cyclic changes and actions of progesterone andallopregnanolone on cognition and hippocampal basal (stratum oriens) dendritic spinesof female rats. Behavioural Brain Research. 379, 112355 (2020).
  20. de Zambotti, M., Trinder, J., Colrain, I. M., Baker, F. C. Menstrual cycle-related variation in autonomic nervous system functioning in women in the early menopausal transition with and without insomnia disorder. Psychoneuroendocrinology. 75, 44-51 (2017).
  21. Maghool, F., Khaksari, M., Khachki, A. S. Differences in brain edema and intracranial pressure following traumatic brain injury across the estrous cycle: Involvement of female sex steroid hormones. Brain Research. 1497, 61-72 (2013).
  22. Bale, T. L., Epperson, C. N. Sex as a biological variable: Who, what, when, why, and how. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 386-396 (2017).
  23. Becker, J. B., Prendergast, B. J., Liang, J. W. Female rats are not more variable than male rats: a meta-analysis of neuroscience studies. Biology of Sex Differences. 7, 34 (2016).
  24. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  25. Joel, D., McCarthy, M. M. Incorporating sex as a biological variable in neuropsychiatric research: where are we now and where should we be. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 379-385 (2017).
  26. Long, J. A., Evans, H. M. The oestrous cycle in the rat and its associated phenomena. Memoirs of the University of California. 6, 1 (1922).
  27. Westwood, F. R. The female rat reproductive cycle: A practical histological guide to staging. Toxicologic Pathology. 36 (3), 375-384 (2008).
  28. Lenschow, C., Sigl-Glöckner, J., Brecht, M. Development of rat female genital cortex and control of female puberty by sexual touch. PLoS Biology. 15 (9), 2001283 (2017).
  29. Lewis, E. M., Barnett, J. F., Freshwater, L., Hoberman, A. M., Christian, M. S. Sexual maturation data for Crl Sprague-Dawley rats: Criteria and confounding factors. Drug and Chemistry Toxicology. 25 (4), 437-458 (2002).
  30. Spear, L. P. The adolescent brain and age-related behavioral manifestations. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 24 (4), 417-463 (2000).
  31. Gaytan, F., et al. Development and validation of a method for precise dating of female puberty in laboratory rodents: the puberty ovarian maturation score (pub-score). Scientific Reports. 7, 46381 (2017).
  32. da Silva Faria, T., da Fonte Ramos, C., Sampaio, F. J. Puberty onset in the female offspring of rats submitted to protein or energy restricted diet during lactation. Journal of Nutritional Biochemistry. 15 (2), 123-127 (2004).
  33. Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Current Protocols in Neuroscience. 48 (1), 1 (2009).
  34. Engelbregt, M. J., et al. Delayed first cycle in intrauterine growth-retarded and postnatally undernourished female rats: follicular growth and ovulation after stimulation with pregnant mare serum gonadotropin at first cycle. Journal of Endocrinology. 173 (2), 297-304 (2002).
  35. Pescovitz, O. H., Walvoord, E. C. . When puberty is precocious: Scientific and clinical aspects. , (2007).
  36. . Standard Evaluation Procedure Test Guidelines 890.1450: Pubertal development and thyroid function in intact juvenile/peripubertal female rats assay Available from: https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-07/documents/final_890.1450_female_pubertal_assay_sep_8.24.11.pdf (2011)
  37. Kennedy, G. G., Mitra, J. Body weight and food intake as initiating factors for puberty in the rat. Journal of Physiology. 166 (2), 408-418 (1963).
  38. Sengupta, S., Arshad, M., Sharma, S., Dubey, M., Singh, M. M. Attainment of peak bone mass and bone turnover rate in relation to estrous cycle, pregnancy and lactation in colony-bred Sprague-Dawley rats: Suitability for studies on pathophysiology of bone and therapeutic measures for its management. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 94 (5), 421-429 (2005).
  39. Iannaccone, P. M., Jacob, H. J. Rats. Disease models & Mechanisms. 2 (5-6), 206-210 (2009).
  40. Koff, E., Rierdan, J., Stubbs, M. L. Conceptions and misconceptions of the menstrual cycle. Women & Health. 16 (3-4), 119-136 (1990).
  41. Sahay, N. Myths and misconceptions about menstruation: A study of adolescent school girls of Delhi. Journal of Women’s Health and Development. 3 (3), 154-169 (2020).
  42. . The deadly truth about a world built for men – from stab vests to car crashes Available from: https://www.theguardian.com/lifeandstyle/2019/feb/23/truth-world-built-for-men-car-crashes (2019)
  43. Chrisler, J. C., Denmark, F. L., Paludi, M. A. The menstrual cycle in a biopsychosocial context. Women’s Psychology. Psychology of Women: A Handbook of Issues and Theories. , 193-232 (2008).
  44. . Re-cycling the menstrual cycle: A multidisciplinary reinterpretation of menstruation Available from: https://scholarworks.wmich.edu/masters_theses/3942 (1998)
  45. Sato, J., Nasu, M., Tsuchitani, M. Comparative histopathology of the estrous or menstrual cycle in laboratory animals. Journal of Toxicologic Pathology. 29 (3), 155-162 (2016).
  46. Whitten, W. K. Modification of the oestrous cycle of the mouse by external stimuli associated with the male. Journal of Endocrinology. 13 (4), 399-404 (1956).
  47. Smith, J. R., et al. The year of the rat: The Rat Genome Database at 20: a multi-species knowledgebase and analysis platform. Nucleic Acids Research. 48 (1), 731-742 (2020).
  48. Capdevila, S., Giral, M., Ruiz de la Torre, J. L., Russell, R. J., Kramer, K. Acclimatization of rats after ground transportation to a new animal facility. Laboratory Animals. 41 (2), 255-261 (2007).
  49. Conour, L., Murray, K., Brown, M. Preparation of animals for research-issues to consider for rodents and rabbits. ILAR journal. 47 (4), 283-293 (2006).
  50. National Academies Press (US) Committee on Guidelines for the Humane Transportation of Laboratory Animals. Guidelines for the Humane Transportation of Research Animals. National Academies Press. , (2006).
  51. Obernier, J., Baldwin, R. Establishing an appropriate period of acclimatization following transportation of laboratory animals. ILAR Journal. 47 (4), 364-369 (2006).
  52. National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. US) . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).
  53. Pantier, L. K., Li, J., Christian, C. A. Estrous cycle monitoring in mice with rapid data visualization and analysis. Bio-protocol. 9 (17), 1-17 (2019).
  54. Cohen, I., Mann, D. Seasonal changes associated with puberty in female rats: effect of photoperiod and ACTH administration. Biology of Reproduction. 20 (4), 757-776 (1979).
  55. Nelson, J. F., Felicio, L. S., Randall, P. K., Sims, C., Finch, C. E. A longitudinal study of estrous cyclicity in aging C57BL/6J Mice: I. cycle frequency, length and vaginal cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  56. Pennycuik, P. R. Seasonal changes in reproductive productivity, growth rate, and food intake in mice exposed to different regimens of day length and environmental temperature. Australian Journal of Biological Sciences. 25 (3), 627-635 (1972).
  57. Piacsek, B. E., Hautzinger, G. M. Effects of duration, intensity and spectrum of light exposure on sexual maturation time of female rats. Biology of Reproduction. 10 (3), 380-387 (1974).
  58. Rubinow, M. J., Arseneau, L. M., Beverly, J. L., Juraska, J. M. Effect of the estrous cycle on water maze acquisition depends on the temperature of the water. Behavioral Neuroscience. 118 (4), 863-868 (2004).
  59. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Fundamentals of Breeding and Weaning. JoVE. , (2020).
  60. Campbell, C., Schwartz, N. The impact of constant light on the estrous cycle of the rat. Endocrinology. 106 (4), 1230-1238 (1980).
  61. Nelson, J. F., Felicio, L. S., Osterburg, H. H., Finch, C. E. Altered profiles of estradiol and progesterone associated with prolonged estrous cycles and persistent vaginal cornification in aging C578L/6J mice. Biology of Reproduction. 24 (4), 784-794 (1981).
  62. Rivest, R. W. Sexual maturation in female rats: Hereditary, developmental and environmental aspects. Experientia. 47 (10), 1026-1038 (1991).
  63. CD® (Sprague Dawley) IGS Rat. Charles River Laboratories Available from: https://www.criver.com/products-services/find-model/cd-sd-igs-rat?region=3611 (2021)
  64. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Rodent Handling and Restraint Techniques. JoVE. , (2020).
  65. Circulatory System. Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
  66. Urogenital System. n.d.). Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
  67. . Anatomical foundations of neuroscience: Mini-atlas of rat’s brain. Anatomy and Cell Biology 9535b Available from: https://instruct.uwo.ca/anatomy/530/535downs.htm (2008)
  68. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse estrous cycle identification tool and images. PloS One. 7 (4), 1-5 (2012).
  69. Marcondes, F. K., Bianchi, F. J., Tanno, A. P. Determination of the estrous cycle phases of rats: some helpful considerations. Brazilian Journal of Biology. 62 (4), 609-614 (2002).
  70. Champlin, A. K., Dorr, D. L., Gates, A. H. Determining the stage of the estrous cycle in the mouse by the appearance of the vagina. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  71. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6 (5), (2020).
  72. Bartos, L. Vaginal impedance measurement used for mating in the rat. Laboratory Animals. 11 (1), 53-55 (1977).
  73. Belozertseva, I. V., Merkulov, D. D., Vilitis, O. E., Skryabin, B. V. Instrumental method for determining the stages of the estrous cycle in small laboratory rodents. Laboratory Animals for Scientific Research. (4), (2018).
  74. Ramos, S. D., Lee, J. M., Peuler, J. D. An inexpensive meter to measure differences in electrical resistance in the rat vagina during the ovarian cycle. Journal of Applied Physiology. 91 (2), 667-670 (2001).
  75. Singletary, S. J., et al. Lack of correlation of vaginal impedance measurements with hormone levels in the rat. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (6), 37-42 (2005).
  76. Bretveld, R. W., Thomas, C. M., Scheepers, P. T., et al. Pesticide exposure: the hormonal function of the female reproductive system disrupted. Reproductive Biology Endocrinology. 4 (30), (2006).
  77. MacDonald, J. K., Pyle, W. G., Reitz, C. J., Howlett, S. E. Cardiac contraction, calcium transients, and myofilament calcium sensitivity fluctuate with the estrous cycle in young adult female mice. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 306 (7), 938-953 (2014).
  78. Koebele, S. V., Bimonte-Nelson, H. A. Modeling menopause: The utility of rodents in translational behavioral endocrinology research. Maturitas. 87, 5-17 (2016).
check_url/kr/62884?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Robert, H., Ferguson, L., Reins, O., Greco, T., Prins, M. L., Folkerts, M. Rodent Estrous Cycle Monitoring Utilizing Vaginal Lavage: No Such Thing As a Normal Cycle. J. Vis. Exp. (174), e62884, doi:10.3791/62884 (2021).

View Video