Summary

Knaagdier Estrous Cycle Monitoring met behulp van vaginale lavage: niet zoiets als een normale cyclus

Published: August 30, 2021
doi:

Summary

Deze studie beschrijft de cruciale factoren waarmee rekening moet worden gehouden bij experimentele ontwerpen met vrouwelijke ratten. In bredere zin dienen deze gegevens om stigma te verminderen en te helpen bij de ontwikkeling van meer inclusieve diagnostische en interventietools.

Abstract

De huidige methodologie stelt een reproduceerbare, gestandaardiseerde en kosteneffectieve aanpak vast voor het monitoren van de oestruscyclus van vrouwelijke Sprague Dawley (SD) adolescente ratten. Deze studie toont de complexiteit van hormonale cycli en het brede spectrum van begrip dat nodig is om een betrouwbare en geldige monitoringtechniek te construeren. Door middel van een diepgaand onderzoek van de belangrijkste experimentele ontwerp- en procedurele elementen, biedt deze beschrijving van de cyclus en de fundamentele principes ervan een kader voor verder begrip en deconstrueert misvattingen voor toekomstige replicatie.

Samen met een overzicht van het monsterverzamelingsproces met behulp van vaginale lavage, beschrijft de procedure het mechanisme van gegevenscategorisatie in het viertrapsmodel van proestrus, oestrus, metestrus en diestrus. Deze stadia worden gekenmerkt door een nieuwe voorgestelde aanpak, waarbij gebruik wordt gemaakt van de 4 categoriserende determinanten van vaginale vloeistofconditie, aanwezige celtype (s), celschikking en celhoeveelheid op het moment van verzameling. Variaties van elke fase, gunstige en ongunstige steekproeven, het onderscheid tussen cycliciteit en acycliciteit en grafische afbeeldingen van de verzamelde categoriserende componenten worden gepresenteerd naast effectieve interpretatieve en organisatorische praktijken van de gegevens. Over het algemeen maken deze tools het mogelijk om voor het eerst kwantificeerbare gegevensbereiken te publiceren, wat leidt tot de standaardisatie van categorisatiefactoren bij replicatie.

Introduction

Nieuwe bijdragen
De oestruscyclus van knaagdieren is geïdentificeerd als een essentiële indicator van welzijn. Onbewuste vooroordelen van onderzoekers en onnauwkeurige interpretaties met betrekking tot het vrouwelijk lichaam belemmeren echter de wetenschappelijke gemeenschap. De etymologie van het woord “oestrus” impliceert een gevoel van minderwaardigheid en negativiteit. Euripides gebruikte de term om een “razernij” of waanzin te beschrijven, Homerus om paniek te beschrijven en Plato om een irrationele drift te beschrijven. Deze studie benadrukt hoe deze oerperspectieven de huidige wetenschappelijke gemeenschap beïnvloeden en pakt deze zorgen aan door middel van een nieuw mozaïekparadigma – een bijgewerkte combinatie van eerder bestudeerde methoden, uitgebreid in reikwijdte voor een meer omvattende benadering.

De studie en het gebruik van deze techniek zijn ten eerste noodzakelijk, omdat er geen gestandaardiseerde en uitgebreide monitoringtechniek is en gegevensinterpretatiepraktijken onduidelijk kunnen zijn. Ten tweede, hoewel oestruscycluskenmerken afhankelijk zijn van individuele ratten die worden bestudeerd, zijn ze vaak universeel. Ten derde, hoewel hormonale cycli routinematige en nuttige processen zijn, worden ze omgeven door gevaarlijk stigma dat wordt onderzocht in de sectie ‘Vertaling naar mensen’. Deze studie heeft tot doel deze drie problemen op drie manieren aan te pakken- (A) door een diepgaande oestruscyclusmonitoringtechniek te beschrijven en te verduidelijken hoe de resultaten kunnen worden geïnterpreteerd, (B) door methoden te schetsen die de integriteit en individualiteit van elke cyclus behouden, en (C) door de aandacht te vestigen op misvattingen die ongefundeerde praktijken in stand houden.

Deze studie is ook uniek in zijn focus op adolescente ratten, een periode die wordt gekenmerkt door cruciale ontwikkelingsveranderingen die licht werpen op verschillende gedrags-, anatomische en fysiologische manifestaties op volwassen leeftijd1. Het bouwen van een gestandaardiseerd experimenteel ontwerp om hormonale cycli in een onderbelichte populatie te monitoren en tegelijkertijd gemeenschappelijke vooroordelen te deconstrueren, zal de ontwikkeling van betrouwbare en geldige hormonale correlaties 2,3,4 en de bepaling van conditieafhankelijke cyclusverstoringen mogelijk maken 5,6,7,8,9,10 . Uiteindelijk dienen deze nieuwigheden om diagnostische criteria, behandelingen en interventies van verschillende welzijnsproblemen uit te breiden.

Fundamentele definities en toepassingen
De oestruscyclus is een verzameling dynamische fysiologische processen die optreden als reactie op de drie oscillerende vrouwelijke geslachtssteroïde hormonen: oestradiol, leuteiniserend hormoon (LH) en progesteron (figuur 1A, B). Interacties tussen het endocriene en centrale zenuwstelsel reguleren de cyclus, die meestal 4-5 dagen aanhoudt en terugkeert vanaf het begin van seksuele rijping tot reproductieve senescentie en / of stopzetting. Het is verdeeld in afzonderlijke categorieën op basis van hormoonspiegels – meestal in de 4 stadia van diestrus (DIE), proestrus (PRO), oestrus (EST) en metestrus (MET), die op een circulaire manier vorderen. Het aantal divisies kan variëren van 3 fasen11 tot 13 fasen12, afhankelijk van de aard van het onderzoek13. Het lagere aantal divisies sluit met als fase vaak uit en classificeert het als een kortdurende overgangsperiode. Het hogere aantal omvat meestal subsecties die een nadere inspectie mogelijk maken van verschijnselen zoals tumorontwikkeling of spontane pseudozwangerschap, de fysiologische toestand van zwangerschap zonder embryonale implantatie 12,14,15.

In deze studie werden de stadia geïdentificeerd door componenten van het vaginale kanaal, genaamd de 3 categoriserende determinanten – aanwezige celtype (s), celschikking en celhoeveelheid (figuur 2A-D). Hoewel de toestand van de vaginale vloeistof niet werd gecontroleerd in deze studie, wordt aanbevolen om het op te nemen als een vierde categoriserende component. Meer informatie over het onderzoeken van de vaginale vloeistof is te vinden in de referentielijst16. De categoriserende componenten kunnen worden onderzocht door cellen te extraheren via vaginale lavage, de primaire techniek die wordt aanbevolen in de hedendaagse oestruscyclusmonitoring. Hoewel de diepgaande fysiologische processen binnen elke fase buiten het bestek van deze studie vallen, is meer informatie te vinden in de literatuur17.

Het gebruik en de verdere ontwikkeling van deze oestruscyclusmonitoringtechniek is geworteld in de verbanden tussen geslachtssteroïde hormonen en de functie van lichaamssystemen zoals het cardiovasculaire systeem18, endocriene systeem8 en het centrale zenuwstelsel 19,20,21. Tegelijkertijd is oestruscyclusmonitoring niet altijd nodig wanneer vrouwelijke knaagdieren 22,23,24,25 betrokken zijn. Integendeel, het is belangrijk om eerst te overwegen of sekseverschillen zijn gemeld in het specifieke studiegebied, dat verder kan worden onderzocht in gepubliceerde beoordelingen22,23. Hoewel estrouscyclusmonitoring van vitaal belang is in een breed spectrum van onderzoeken, moet het niet worden gezien als een obstakel voor het opnemen van vrouwelijke knaagdieren in experimenten. Hoewel deze techniek complex en tijdrovend kan lijken, kan de procedure zelf minder dan 15 minuten duren om te voltooien, afhankelijk van de onderzoeker, en is kosteneffectief. Over het algemeen is de opname van vrouwelijke knaagdieren in wetenschappelijke studies gunstig voor het begrip van lichaamssystemen, verschillende aandoeningen en pathologieën en algemeen welzijn, omdat deze ontwikkelingen voornamelijk zijn gebaseerd op de mannelijke lichaamssjabloon.

Universele parameters en natuurlijke variabiliteiten bij het knaagdier
Het vaststellen van bereiken voor aspecten die als “typisch” worden beschouwd, is noodzakelijk om standaardcycluspatronen te definiëren, parameters in te stellen voor vergelijkende en analytische doeleinden en afwijkingen en uitschieters te detecteren. Tegelijkertijd is het ook belangrijk om te erkennen dat de cyclus van elke rat uniek is en dat afwijkingen op basis van dierlijke stam, fysiologische processen en omgevingsomstandigheden worden verwacht. In feite is een van de meest “normale” aspecten van de oestruscyclus variabiliteit. Dit is te zien in de totale cycluslengte, met een bereik van 3-38 dagen26,27; de leeftijd van seksuele rijping die kan variëren van 32-34 dagen tot meerdere weken 28,29,30; wat wordt beschouwd als acyclisch11, en de categoriserende determinante patronen11,13. Over het algemeen is er geen universeel sjabloon voor de oestruscyclus, en het vertalen daarvan naar zowel de wetenschappelijke gemeenschap als het grote publiek is een belangrijk onderdeel van het experimentele proces.

Experimentele tijdspunten en ontwikkelingsleeftijd
Het herkennen van dit principe van variabiliteit helpt bij het bouwen van een betrouwbaar en geldig experimenteel ontwerp. Het begin van oestruscyclusmonitoring is bijvoorbeeld afhankelijk van de anatomische en fysiologische ontwikkeling van de ratten, die varieert op basis van omgevings- en fysiologische factoren. Monitoring kan niet beginnen tot de ontwikkeling van de vaginale opening (VO), de externe vaginale opening omringd door de vulva die naar het inwendige deel van het vaginale kanaal leidt (figuur 3A-D). Hoewel de VO zich vaak volledig ontwikkelt tussen de leeftijd van 32 en 34 dagen, blijft het geïndividualiseerd voor elk onderwerp en veel over het proces blijft onbekend. Deze opening is gebruikt om het begin van seksuele rijping te identificeren, wat in verband is gebracht met de toename van oestradiol31, de rijping van de hypothalamus-hypofyse-ovariële as32 en de eerste ovulatie bij ratten 17,33,34,35. Recente publicaties hebben echter aangetoond dat het slechts een indirecte marker van reproductieve ontwikkeling is, omdat het kan worden losgekoppeld van hormonale en ontwikkelingsgebeurtenissen in ongunstige omgevingen31 en veranderingen in oestradiolniveaus kan vertegenwoordigen in plaats van seksuele rijping33. Daarom wordt aanbevolen om niet alleen op de VO te vertrouwen om de ontwikkelingsleeftijd te bepalen en als een kwalificatie voor oestruscyclusmonitoring36, maar ook om het uiterlijk van de eerste EST-fase en de cornificatie van de epitheelcellen30 te gebruiken om het begin van seksuele rijping te markeren.

Het lichaamsgewicht is met name gecorreleerd met de ontwikkelingsleeftijd tijdens de adolescentieperiode bij knaagdieren30,37 en kan daarom ook helpen bij het bepalen van de ontwikkelingsleeftijd in deze periode. Voorgestelde mechanismen die verband houden met dit fenomeen omvatten de stimulatie van hormonen die nodig zijn voor de voortplantingsontwikkeling, zoals groeihormoon, en de remming van de hypothalamus-hypofyse bijnier (HPA) -as door de eetlustregulator, leptine30. Het wordt echter niet aanbevolen om deze maatregel te gebruiken als de enige indicator van ontwikkelingsleeftijd vanwege de grote variatie tussen ratten tussen soorten en leveranciers38. De variabiliteit die wordt gezien in de ontwikkeling van de VO en het lichaamsgewicht illustreren het belang van het concept in het algehele experimentele proces.

Vertaling naar de mens: culturele en wetenschappelijke contexten
De translationele relatie van dier-op-mens voortplantingsstudies is bidirectioneel. De resultaten van dierstudies beïnvloeden hoe de menselijke processen worden beoordeeld, benaderd en geanalyseerd39. De perceptie van het menselijke voortplantingssysteem en de bijbehorende processen beïnvloeden hoe dieren worden bestudeerd. In feite komt een van de luidste aanwijzingen voor verder onderzoek op dit gebied voort uit bevooroordeelde sociaal-culturele overtuigingen met betrekking tot hormonale cycli die het wetenschappelijke proces beïnvloeden. Veel van deze conventies zijn afgeleid van een algemene culturele afkeer van het bespreken van menstruatie, wat heeft geleid tot een datakloof in goed onderbouwde kennis 40,41. Dit heeft een spectrum van gevolgen die zich uitstrekken van klein tot dodelijk – van plankhoogte en smartphonegrootte tot het passen van kogelvrije vesten door de politie en gemiste kankerdiagnoses42.

De beschrijving van menstruatie als onhygiënisch, destructief en giftig – gezien in gerespecteerde teksten, media, woordenboeken en medische leringen – wordt bewaard door wetenschappelijke publicaties. Dit gebeurt door onnauwkeurige en bevooroordeelde beschrijvingen van hormonale cycli, de isolatie van het voortplantingssysteem van zijn neuro-endocriene tegenhangers en omgevingsinvloeden, en het reductionistische perspectief van de voltooiing van een cyclus als een ‘falen om zwanger te worden’43,44. Dit leidt tot het creëren van ondeugdelijke experimentele praktijken, zoals het weglaten van externe variabelen die hormonale cycli beïnvloeden, het bepalen van start en eindpunten uitsluitend op basis van anatomische ontwikkelingen en het meten van cyclusvoortgang op een lineaire in plaats van circulaire manier. Ondanks de directe correlatie tussen sociaal-culturele factoren en biologische gevolgen, wordt het niet vaak overwogen in de wetenschappelijke literatuur. Door de inspectie van meer holistische publicaties 43,44,45, kunnen onderzoekers deze stigma’s deconstrueren en betrouwbaardere en valide experimentele ontwerpen maken.

Protocol

Alle behandelings- en proceduremethoden die in dit protocol worden beschreven, komen overeen met de richtlijnen voor dierverzorging en -gebruik van de National Institutes of Health (NIH) en zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van Pepperdine University en de UCLA Chancellor’s Animal Research Committee (ARC). 1. Verzorging en gebruik van dieren Verkrijg vrouwelijke ratten, in aantallen volgens krachtanalyse, en mannelijke ratten om het Whitten-e…

Representative Results

De huidige gegevens weerspiegelen die van vrouwelijke adolescente SD International Genetic Standardization Program (IGS) in aanwezigheid van mannelijke SD-ratten. Deze dieren werden gelokaliseerd in zowel Pepperdine University als UCLA-laboratoria als onderdeel van een gezamenlijke studie. Figuur 5 toont meerdere variaties van de 4 cyclusfasen. Figuur 5A1 werd geïdentificeerd als een diestrusmonster met verschillende aanwezige celtypen. Dit voo…

Discussion

Belangrijkste stappen en belangrijke overwegingen
Bepaalde kritische stappen in het verstrekte protocol vereisen nadruk, vooral binnen de verzameling vaginale cellen. Tijdens de vaginale vloeistofextractie is het zorgen voor de juiste hoek en diepte van het inbrengen van de spuit de sleutel tot het produceren van bevredigende resultaten en uiteindelijk het voorkomen van irritatie, letsel of cervicale stimulatie van het dier. De stimulatie van de baarmoederhals kan een bron van pseudozwaartekrachtinduc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd uitgevoerd door een door de NIH gefinancierde samenwerking tussen het University of California Los Angeles Brain Injury Research Center (BIRC).

Materials

AmScope 40X-1000X LED Student Microscope + 5MP USB Camera AmScope Part Number: M150C-E5 EAN: 0608729747796 Model Number: M150C-E5 https://www.amazon.com/AmScope-40X-1000X-Student-Microscope-Camera/dp/B00O9GNOTA/ref=sr_1_15?crid=2W9CHTG8YSOTV&
keywords=usb+camera+for+microscope&
qid=1572477663&s=industrial
&sprefix=USB+camera+for+micr%2Cindustrial%2C177&sr=1-15
BD PrecisionGlide Needle Pack, 20G x 1, Short Bevel Fischer Scientific 14-815-526 https://www.fishersci.com/shop/products/bd-precisionglide-single-use-needles-short-bevel-regular-wall-4/14815526#?keyword=BD%20PrecisionGlide%20Needle%20Pack,%2020G%20x%201
Bed O Cob 1/8 NEWCO 93009 https://andersonslabbedding.com/cob-products/bed-ocobs-8b/
Corning™ Plain Microscope Slides Plain water-white glass Fischer Scientific 12-553-7A https://www.fishersci.com/shop/products/corning-plain-microscope-slides-microscope-slides-75-x-25mm/125537a
Corning™ Rectangular Cover Glasses Fischer Scientific 12-553-464 https://www.fishersci.com/shop/products/corning-square-rectangular-cover-glasses-rectangle-no-1-thickness-0-13-0-17mm-size-24-x-50mm/12553464#?keyword=true
Kimberly-Clark Professional™ Kimtech Science™ Kimwipes™ Delicate Task Wipers, 1-Ply Fischer Scientific 06-666 https://www.fishersci.com/shop/products/kimberly-clark-kimtech-science-kimwipes-delicate-task-wipers-7/p-211240?crossRef=kimwipes
Labdiet Rodent Lab Chow 50lb, 15001  NEWCO Specialty and LabDiet 5012 https://www.labdiet.com/products/standarddiets/rodents/index.html
Linear LED Bulb, UL Type A, T8, Medium Bi-Pin (G13), 4,000 K Color Temperature, Lumens 2550 lm Grainger 36UX10 https://www.grainger.com/product/36UX10?gclid=CjwKCAjw_
LL2BRAkEiwAv2Y3SW1WdNdkf7
zdIxoT9R6n2DGnrToJHjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRoCi4
cQAvD_BwE&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696
!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&ef_id=
CjwKCAjw_LL2BRAkEiwAv2Y3SW
1WdNdkf7zdIxoT9R6n2DGnrToJ
Hjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRo
Ci4cQAvD_BwE:G:s&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&cm_mmc=
PPC:+Google+PPC
Sodium Chloride Injection Bags, 0.9% Live Action Safety ABB079830939 https://www.liveactionsafety.com/injection-iv-solution-9-sodium-chloride-1000ml-bags/
Syringe Sterile 1ml  with Luer Slip Tip – 100 Syringes by BH Supplies BH Supplies ASIN: B07BQDRDC2 UPC: 638632928821 https://www.amazon.com/1ml-Syringe-Sterile-Luer-Slip/dp/B07BQDRDC2/ref=sr_1_1_sspa?crid=13S8EGEUK90G7&
keywords=1ml+sterile+syringe&qid=
1572478649&s=industrial
&sprefix=1+ml+steri%2Cindustrial%2C187&sr=1-1-spons&psc=1&spLa=
ZW5jcnlwdGVkUXVhbGlmaWVy
PUEyRlo4NFdZWkJLWkxGJm
VuY3J5cHRlZElkPUEwMDEzODQ
yMjNWNzdWM0hTNzVBRCZlbmNy
eXB0ZWRBZElkPUEwNDI3NzAzM
0E5SzVKMkxaQVc2JndpZGdldE5h
bWU9c3BfYXRmJmFjdGlvbj1jbGlja
1JlZGlyZWN0JmRvTm90TG9nQ2
xpY2s9dHJ1ZQ==
Wire lids and floors Mouse Maternity Wire Bar LidUsed with Rat Cage (10" X 19" x 8"H )Overall dimen Allentown LV40326013 https://www.labx.com/item/wire-lids-and-floors-mouse-maternity-wire-bar-lidused/LV40326013#description
Ultra Lightweight Tissue and Plastic 17' x 24' Disposable Underpad Medline EAN: 0480196288558
 Global Trade Identification Number: 40080196288558
https://www.amazon.com/Medline-Industries-MSC281224C-Lightweight-Disposable/dp/B00A2G67YU/ref=sr_1_4?keywords=medline+industries+surgical+pads&qid=1572475853&
sr=8-4

References

  1. Schneider, M. Adolescence as a vulnerable period to alter rodent behavior. Cell and Tissue Research. 354 (1), 99-106 (2013).
  2. Camacho-Arroyo, I., Montor, J. M. Beyond reproductive effects of sex steroids. MiniReviews in Medicinal Chemistry. 12 (11), 1037-1039 (2012).
  3. Shah, S. I. A. Systemic non-reproductive effects of sex steroids in adult males and females. Human Physiology. 44, 83-87 (2018).
  4. Wierman, M. E. Sex steroid effects at target tissues: mechanisms of action. Advances in Physiology Education. 31 (1), 26-33 (2007).
  5. An, G., et al. Pathophysiological changes in female rats with estrous cycle disorder induced by long-term heat stress. BioMed Research International. 2020, 4701563 (2020).
  6. Donato, J., et al. The ventral premammillary nucleus links fasting-induced changes in leptin levels and coordinated luteinizing hormone secretion. Journal of Neuroscience. 29 (16), 5240-5250 (2009).
  7. Fortress, A. M., Avcu, P., Wagner, A. K., Dixon, C. E., Pang, K. Experimental traumatic brain injury results in estrous cycle disruption, neurobehavioral deficits, and impaired GSK3β/β-catenin signaling in female rats. Experimental Neurology. 315, 42-51 (2019).
  8. Hatsuta, M., et al. Effects of hypothyroidism on the estrous cycle and reproductive hormones in mature female rats. European Journal of Pharmacology. 486 (3), 343-348 (2004).
  9. Jaini, R., Altuntas, C. Z., Loya, M. G., Tuohy, V. K. Disruption of estrous cycle homeostasis in mice with experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroimmunology. 279, 71-74 (2015).
  10. Tropp, J., Markus, E. J. Effects of mild food deprivation on the estrous cycle of rats. Physiology and Behavior. 73 (4), 553-559 (2001).
  11. Goldman, J. M., Murr, A. S., Cooper, R. L. The rodent estrous cycle: characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Research. Part B, Developmental and Reproductive Toxicology. 80 (2), 84-97 (2007).
  12. Thung, P. J., Boot, L. M., Muhlbock, O. Senile changes in the oestrous cycle and in ovarian structure in some inbred strains of mice. Acta Endocrinologica. 23 (1), 8-32 (1956).
  13. Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal cytology of the laboratory rat and mouse: Review and criteria for the staging of the estrous cycle using stained vaginal smears. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
  14. . Biochemical and endocrinological studies of normal and neoplastic tissue: The metabolism of estrogen-producing ovarian tumors and other malignancies in the mouse Available from: https://www.translatetheweb.com/?from=nl&to=en&ref=SERP&dl=en&rr=UC&a=https%3a%2f%2frepository.tudelft.nl%2fislandora%2fobject%2fuuid%253A8776d58a-6695-4a38-99ca-0abf607480f0 (2021)
  15. Van Der Lee, S., Boot, L. M. Spontaneous pseudopregnancy in mice. Acta Physiologica Pharmacologica Neerlandica. 4 (3), 442-444 (1955).
  16. Paccola, C., Resende, C., Stumpp, T., Miraglia, S., Cipriano, I. The rat estrous cycle revisited: a quantitative and qualitative analysis. Animal Reproduction. 10 (4), 677-683 (2013).
  17. Ojeda, S. R., Urbanski, H. F., Knobil, E., Neill, J. D. Puberty in the rat. The Physiology of Reproduction. , 363-409 (1994).
  18. Schallmayer, S., Hughes, B. M. Impact of oral contraception and neuroticism on cardiovascular stress reactivity across the menstrual cycle. Psychology, Health & Medicine. 15 (1), 105-115 (2010).
  19. Barreto-Cordero, L. M., et al. Cyclic changes and actions of progesterone andallopregnanolone on cognition and hippocampal basal (stratum oriens) dendritic spinesof female rats. Behavioural Brain Research. 379, 112355 (2020).
  20. de Zambotti, M., Trinder, J., Colrain, I. M., Baker, F. C. Menstrual cycle-related variation in autonomic nervous system functioning in women in the early menopausal transition with and without insomnia disorder. Psychoneuroendocrinology. 75, 44-51 (2017).
  21. Maghool, F., Khaksari, M., Khachki, A. S. Differences in brain edema and intracranial pressure following traumatic brain injury across the estrous cycle: Involvement of female sex steroid hormones. Brain Research. 1497, 61-72 (2013).
  22. Bale, T. L., Epperson, C. N. Sex as a biological variable: Who, what, when, why, and how. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 386-396 (2017).
  23. Becker, J. B., Prendergast, B. J., Liang, J. W. Female rats are not more variable than male rats: a meta-analysis of neuroscience studies. Biology of Sex Differences. 7, 34 (2016).
  24. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  25. Joel, D., McCarthy, M. M. Incorporating sex as a biological variable in neuropsychiatric research: where are we now and where should we be. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 379-385 (2017).
  26. Long, J. A., Evans, H. M. The oestrous cycle in the rat and its associated phenomena. Memoirs of the University of California. 6, 1 (1922).
  27. Westwood, F. R. The female rat reproductive cycle: A practical histological guide to staging. Toxicologic Pathology. 36 (3), 375-384 (2008).
  28. Lenschow, C., Sigl-Glöckner, J., Brecht, M. Development of rat female genital cortex and control of female puberty by sexual touch. PLoS Biology. 15 (9), 2001283 (2017).
  29. Lewis, E. M., Barnett, J. F., Freshwater, L., Hoberman, A. M., Christian, M. S. Sexual maturation data for Crl Sprague-Dawley rats: Criteria and confounding factors. Drug and Chemistry Toxicology. 25 (4), 437-458 (2002).
  30. Spear, L. P. The adolescent brain and age-related behavioral manifestations. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 24 (4), 417-463 (2000).
  31. Gaytan, F., et al. Development and validation of a method for precise dating of female puberty in laboratory rodents: the puberty ovarian maturation score (pub-score). Scientific Reports. 7, 46381 (2017).
  32. da Silva Faria, T., da Fonte Ramos, C., Sampaio, F. J. Puberty onset in the female offspring of rats submitted to protein or energy restricted diet during lactation. Journal of Nutritional Biochemistry. 15 (2), 123-127 (2004).
  33. Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Current Protocols in Neuroscience. 48 (1), 1 (2009).
  34. Engelbregt, M. J., et al. Delayed first cycle in intrauterine growth-retarded and postnatally undernourished female rats: follicular growth and ovulation after stimulation with pregnant mare serum gonadotropin at first cycle. Journal of Endocrinology. 173 (2), 297-304 (2002).
  35. Pescovitz, O. H., Walvoord, E. C. . When puberty is precocious: Scientific and clinical aspects. , (2007).
  36. . Standard Evaluation Procedure Test Guidelines 890.1450: Pubertal development and thyroid function in intact juvenile/peripubertal female rats assay Available from: https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-07/documents/final_890.1450_female_pubertal_assay_sep_8.24.11.pdf (2011)
  37. Kennedy, G. G., Mitra, J. Body weight and food intake as initiating factors for puberty in the rat. Journal of Physiology. 166 (2), 408-418 (1963).
  38. Sengupta, S., Arshad, M., Sharma, S., Dubey, M., Singh, M. M. Attainment of peak bone mass and bone turnover rate in relation to estrous cycle, pregnancy and lactation in colony-bred Sprague-Dawley rats: Suitability for studies on pathophysiology of bone and therapeutic measures for its management. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 94 (5), 421-429 (2005).
  39. Iannaccone, P. M., Jacob, H. J. Rats. Disease models & Mechanisms. 2 (5-6), 206-210 (2009).
  40. Koff, E., Rierdan, J., Stubbs, M. L. Conceptions and misconceptions of the menstrual cycle. Women & Health. 16 (3-4), 119-136 (1990).
  41. Sahay, N. Myths and misconceptions about menstruation: A study of adolescent school girls of Delhi. Journal of Women’s Health and Development. 3 (3), 154-169 (2020).
  42. . The deadly truth about a world built for men – from stab vests to car crashes Available from: https://www.theguardian.com/lifeandstyle/2019/feb/23/truth-world-built-for-men-car-crashes (2019)
  43. Chrisler, J. C., Denmark, F. L., Paludi, M. A. The menstrual cycle in a biopsychosocial context. Women’s Psychology. Psychology of Women: A Handbook of Issues and Theories. , 193-232 (2008).
  44. . Re-cycling the menstrual cycle: A multidisciplinary reinterpretation of menstruation Available from: https://scholarworks.wmich.edu/masters_theses/3942 (1998)
  45. Sato, J., Nasu, M., Tsuchitani, M. Comparative histopathology of the estrous or menstrual cycle in laboratory animals. Journal of Toxicologic Pathology. 29 (3), 155-162 (2016).
  46. Whitten, W. K. Modification of the oestrous cycle of the mouse by external stimuli associated with the male. Journal of Endocrinology. 13 (4), 399-404 (1956).
  47. Smith, J. R., et al. The year of the rat: The Rat Genome Database at 20: a multi-species knowledgebase and analysis platform. Nucleic Acids Research. 48 (1), 731-742 (2020).
  48. Capdevila, S., Giral, M., Ruiz de la Torre, J. L., Russell, R. J., Kramer, K. Acclimatization of rats after ground transportation to a new animal facility. Laboratory Animals. 41 (2), 255-261 (2007).
  49. Conour, L., Murray, K., Brown, M. Preparation of animals for research-issues to consider for rodents and rabbits. ILAR journal. 47 (4), 283-293 (2006).
  50. National Academies Press (US) Committee on Guidelines for the Humane Transportation of Laboratory Animals. Guidelines for the Humane Transportation of Research Animals. National Academies Press. , (2006).
  51. Obernier, J., Baldwin, R. Establishing an appropriate period of acclimatization following transportation of laboratory animals. ILAR Journal. 47 (4), 364-369 (2006).
  52. National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. US) . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).
  53. Pantier, L. K., Li, J., Christian, C. A. Estrous cycle monitoring in mice with rapid data visualization and analysis. Bio-protocol. 9 (17), 1-17 (2019).
  54. Cohen, I., Mann, D. Seasonal changes associated with puberty in female rats: effect of photoperiod and ACTH administration. Biology of Reproduction. 20 (4), 757-776 (1979).
  55. Nelson, J. F., Felicio, L. S., Randall, P. K., Sims, C., Finch, C. E. A longitudinal study of estrous cyclicity in aging C57BL/6J Mice: I. cycle frequency, length and vaginal cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  56. Pennycuik, P. R. Seasonal changes in reproductive productivity, growth rate, and food intake in mice exposed to different regimens of day length and environmental temperature. Australian Journal of Biological Sciences. 25 (3), 627-635 (1972).
  57. Piacsek, B. E., Hautzinger, G. M. Effects of duration, intensity and spectrum of light exposure on sexual maturation time of female rats. Biology of Reproduction. 10 (3), 380-387 (1974).
  58. Rubinow, M. J., Arseneau, L. M., Beverly, J. L., Juraska, J. M. Effect of the estrous cycle on water maze acquisition depends on the temperature of the water. Behavioral Neuroscience. 118 (4), 863-868 (2004).
  59. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Fundamentals of Breeding and Weaning. JoVE. , (2020).
  60. Campbell, C., Schwartz, N. The impact of constant light on the estrous cycle of the rat. Endocrinology. 106 (4), 1230-1238 (1980).
  61. Nelson, J. F., Felicio, L. S., Osterburg, H. H., Finch, C. E. Altered profiles of estradiol and progesterone associated with prolonged estrous cycles and persistent vaginal cornification in aging C578L/6J mice. Biology of Reproduction. 24 (4), 784-794 (1981).
  62. Rivest, R. W. Sexual maturation in female rats: Hereditary, developmental and environmental aspects. Experientia. 47 (10), 1026-1038 (1991).
  63. CD® (Sprague Dawley) IGS Rat. Charles River Laboratories Available from: https://www.criver.com/products-services/find-model/cd-sd-igs-rat?region=3611 (2021)
  64. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Rodent Handling and Restraint Techniques. JoVE. , (2020).
  65. Circulatory System. Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
  66. Urogenital System. n.d.). Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
  67. . Anatomical foundations of neuroscience: Mini-atlas of rat’s brain. Anatomy and Cell Biology 9535b Available from: https://instruct.uwo.ca/anatomy/530/535downs.htm (2008)
  68. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse estrous cycle identification tool and images. PloS One. 7 (4), 1-5 (2012).
  69. Marcondes, F. K., Bianchi, F. J., Tanno, A. P. Determination of the estrous cycle phases of rats: some helpful considerations. Brazilian Journal of Biology. 62 (4), 609-614 (2002).
  70. Champlin, A. K., Dorr, D. L., Gates, A. H. Determining the stage of the estrous cycle in the mouse by the appearance of the vagina. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  71. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6 (5), (2020).
  72. Bartos, L. Vaginal impedance measurement used for mating in the rat. Laboratory Animals. 11 (1), 53-55 (1977).
  73. Belozertseva, I. V., Merkulov, D. D., Vilitis, O. E., Skryabin, B. V. Instrumental method for determining the stages of the estrous cycle in small laboratory rodents. Laboratory Animals for Scientific Research. (4), (2018).
  74. Ramos, S. D., Lee, J. M., Peuler, J. D. An inexpensive meter to measure differences in electrical resistance in the rat vagina during the ovarian cycle. Journal of Applied Physiology. 91 (2), 667-670 (2001).
  75. Singletary, S. J., et al. Lack of correlation of vaginal impedance measurements with hormone levels in the rat. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (6), 37-42 (2005).
  76. Bretveld, R. W., Thomas, C. M., Scheepers, P. T., et al. Pesticide exposure: the hormonal function of the female reproductive system disrupted. Reproductive Biology Endocrinology. 4 (30), (2006).
  77. MacDonald, J. K., Pyle, W. G., Reitz, C. J., Howlett, S. E. Cardiac contraction, calcium transients, and myofilament calcium sensitivity fluctuate with the estrous cycle in young adult female mice. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 306 (7), 938-953 (2014).
  78. Koebele, S. V., Bimonte-Nelson, H. A. Modeling menopause: The utility of rodents in translational behavioral endocrinology research. Maturitas. 87, 5-17 (2016).
check_url/kr/62884?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Robert, H., Ferguson, L., Reins, O., Greco, T., Prins, M. L., Folkerts, M. Rodent Estrous Cycle Monitoring Utilizing Vaginal Lavage: No Such Thing As a Normal Cycle. J. Vis. Exp. (174), e62884, doi:10.3791/62884 (2021).

View Video