Summary

Gnagare Estrous cykelövervakning med vaginal sköljning: Inget sådant som en normal cykel

Published: August 30, 2021
doi:

Summary

Denna studie beskriver de avgörande faktorerna att tänka på i experimentella mönster som involverar honråttor. I en större mening tjänar dessa data till att minska stigmatiseringen och hjälpa till att utveckla mer inkluderande diagnostiska och interventionsverktyg.

Abstract

Den nuvarande metoden etablerar ett reproducerbart, standardiserat och kostnadseffektivt tillvägagångssätt för att övervaka estrouscykeln hos kvinnliga Sprague Dawley (SD) ungdomsråttor. Denna studie visar komplexiteten i hormonella cykler och det breda spektrum av förståelse som krävs för att konstruera en pålitlig och giltig övervakningsteknik. Genom en fördjupad undersökning av huvudsakliga experimentella design- och procedurelement ger denna beskrivning av cykeln och dess grundläggande principer en ram för ytterligare förståelse och dekonstruerar missuppfattningar för framtida replikering.

Tillsammans med en översikt över provinsamlingsprocessen som använder vaginal sköljning beskriver proceduren mekanismen för datakategorisering i fyrstegsmodellen av proestrus, estrus, metestrus och diestrus. Dessa steg kännetecknas av ett nytt föreslaget tillvägagångssätt, som använder de 4 kategoriserande determinanterna för vaginalt vätsketillstånd, närvarande celltyp (er), cellarrangemang och cellkvantitet vid tidpunkten för insamlingen. Variationer av varje steg, gynnsamma och ogynnsamma prover, skillnaden mellan cyklicitet och acyklicitet och grafiska skildringar av de insamlade kategoriseringskomponenterna presenteras tillsammans med effektiva tolknings- och organisatoriska metoder för data. Sammantaget möjliggör dessa verktyg publicering av kvantifierbara dataområden för första gången, vilket leder till standardisering av kategoriseringsfaktorer vid replikering.

Introduction

Nya bidrag
Gnagarens estrouscykel har identifierats som en viktig indikator på välbefinnande. Men omedvetna fördomar hos utredare och felaktiga tolkningar om kvinnokroppen hindrar det vetenskapliga samfundet. Själva etymologin av ordet “estrous” innebär en känsla av underlägsenhet och negativitet. Euripides använde termen för att beskriva en “frenesi” eller galenskap, Homeros för att beskriva panik och Platon för att beskriva en irrationell drivkraft. Denna studie belyser hur dessa urtidsperspektiv påverkar det nuvarande vetenskapliga samfundet och tar itu med dessa problem genom ett nytt mosaikparadigm – en uppdaterad kombination av tidigare studerade metoder, utökad i omfattning för ett mer omfattande tillvägagångssätt.

Studien och användningen av denna teknik är nödvändig, för det första eftersom det inte finns någon standardiserad och omfattande övervakningsteknik, och datatolkningspraxis kan vara oklar. För det andra, även om estrous cykelegenskaper är beroende av att enskilda råttor studeras, är de ofta universaliserade. För det tredje, medan hormonella cykler är rutinmässiga och fördelaktiga processer, är de omgivna av farlig stigma som utforskas i avsnittet “Översättning till människor”. Denna studie syftar till att ta itu med dessa tre frågor på tre sätt – (A) genom att beskriva en djupgående estrous cykelövervakningsteknik och klargöra hur resultaten kan tolkas, (B) genom att beskriva metoder som upprätthåller integriteten och individualiteten i varje cykel och (C) genom att uppmärksamma missuppfattningar som upprätthåller ogrundade metoder.

Denna studie är också unik i sitt fokus på tonårsråttor, en period som präglas av avgörande utvecklingsförändringar som belyser olika beteendemässiga, anatomiska och fysiologiska manifestationer i vuxen ålder1. Att bygga en standardiserad experimentell design för att övervaka hormonella cykler i en underbeforskad population samtidigt som man dekonstruerar vanliga fördomar kommer att möjliggöra utveckling av tillförlitliga och giltiga hormonella korrelationer 2,3,4 och bestämning av tillståndsberoende cykelstörningar 5,6,7,8,9,10 . I slutändan tjänar dessa nyheter till att utöka diagnostiska kriterier, behandlingar och interventioner av olika hälsoproblem.

Grundläggande definitioner och användningsområden
Den estrouscykeln är en samling dynamiska fysiologiska processer som uppstår som svar på de tre oscillerande kvinnliga könssteroidhormonerna: östradiol, leuteiniserande hormon (LH) och progesteron (Figur 1A,B). Interaktioner mellan det endokrina och centrala nervsystemet reglerar cykeln, som oftast kvarstår i 4-5 dagar och återkommer från början av sexuell mognad till reproduktiv åldrande och / eller upphörande. Det är indelat i separata kategorier baserat på hormonnivåer – oftast i de 4 stadierna av diestrus (DIE), proestrus (PRO), estrus (EST) och metestrus (MET), som utvecklas på ett cirkulärt sätt. Antalet divisioner kan sträcka sig från 3 steg11 till 13 steg12, beroende på studiens art13. Det lägre antalet divisioner utesluter ofta MET som ett stadium och klassificerar det som en kortvarig övergångsperiod. Det högre antalet innehåller vanligtvis underavsnitt som möjliggör en närmare inspektion av fenomen som tumörutveckling eller spontan pseudograviditet, det fysiologiska tillståndet för graviditet utan embryonal implantation 12,14,15.

I denna studie identifierades stadierna genom komponenter i vaginalkanalen, som heter de 3 kategoriserande determinanterna-celltyperna närvarande, cellarrangemang och cellkvantitet (figur 2A-D). Medan tillståndet för vaginalvätskan inte övervakades i denna studie, rekommenderas det att inkludera det som en fjärde kategoriserande komponent. Mer information om undersökning av vaginalvätskan finns i referenslistan16. De kategoriserande komponenterna kan undersökas genom att extrahera celler via vaginal sköljning, den primära tekniken som rekommenderas i dagens estrouscykelövervakning. Medan de djupgående fysiologiska processerna inom varje steg ligger utanför ramen för denna studie, kan mer information hittas i litteraturen17.

Användningen och den fortsatta utvecklingen av denna estrous cykelövervakningsteknik är rotad i kopplingarna mellan könssteroidhormoner och funktionen hos kroppsliga system som hjärt-kärlsystemet18, endokrina systemet8 och centrala nervsystemet 19,20,21. Samtidigt är det inte alltid nödvändigt med övervakning av estrouscykeln när kvinnliga gnagare är inblandade 22,23,24,25. Snarare är det viktigt att först överväga om könsskillnader har rapporterats inom det specifika studieområdet, vilket kan undersökas ytterligare i publicerade recensioner22,23. Även om estrous cykelövervakning är avgörande i ett brett spektrum av forskningsundersökningar, bör det inte ses som ett hinder för att inkludera kvinnliga gnagare i experiment. Även om denna teknik kan verka komplex och tidskrävande, kan själva proceduren ta mindre än 15 minuter att slutföra, beroende på utredaren, och är kostnadseffektiv. Sammantaget är inkluderingen av kvinnliga gnagare i vetenskapliga studier fördelaktig för förståelsen av kroppssystem, olika tillstånd och patologier och allmänt välbefinnande, eftersom denna utveckling huvudsakligen har baserats på den manliga kroppsmallen.

Universella parametrar och naturliga variationer hos gnagaren
Att fastställa intervall för aspekter som ses som “typiska” är nödvändigt för att definiera standardcykelmönster, ställa in parametrar för jämförande och analytiska ändamål och upptäcka avvikelser och avvikelser. Samtidigt är det också viktigt att inse att varje råttas cykel är unik, och avvikelser baserade på djurstam, fysiologiska processer och miljöförhållanden förväntas. Faktum är att en av de mest “normala” aspekterna av estrouscykeln är variabilitet. Detta ses i den totala cykellängden, med ett intervall på 3-38 dagar26,27; åldern för sexuell mognad som kan sträcka sig från 32-34 dagar till flera veckor 28,29,30; vad som anses varaacykliskt 11, och de kategoriserande determinantmönstren11,13. Sammantaget finns det ingen universell mall för estrouscykeln, och att översätta det till både det vetenskapliga samfundet och allmänheten är en viktig del av experimentprocessen.

Experimentella tidpunkter och utvecklingsålder
Att erkänna denna princip om variabilitet hjälper till att bygga en pålitlig och giltig experimentell design. Till exempel är starten av estrous cykelövervakning beroende av råttornas anatomiska och fysiologiska utveckling, som varierar beroende på miljömässiga och fysiologiska faktorer. Övervakningen kan inte börja förrän utvecklingen av vaginalöppningen (VO), som är den yttre vaginala öppningen omgiven av vulva som leder till den inre delen av vaginalkanalen (figur 3A-D). Medan VO ofta utvecklas fullt ut mellan 32 och 34 dagar, förblir den individualiserad för varje ämne, och mycket om processen är fortfarande okänt. Denna öppning har använts för att identifiera uppkomsten av sexuell mognad, som har kopplats till ökningen av östradiol31, mognaden av hypotalamus-hypofys-äggstocksaxeln32 och den första ägglossningen hos råttor 17,33,34,35. Nya publikationer har dock funnit att det bara är en indirekt markör för reproduktiv utveckling, eftersom den kan bli frikopplad från hormonella och utvecklingshändelser i ogynnsamma miljöer31 och kan representera förändringar i östradiolnivåer snarare än sexuell mognad33. Därför rekommenderas det att inte förlita sig enbart på VO för att bestämma utvecklingsålder och som en kvalificerare för estrouscykelövervakning36 utan att också använda utseendet på det första EST-steget och kornifiering av epitelcellerna30 för att markera uppkomsten av sexuell mognad.

Kroppsvikt är särskilt korrelerad med utvecklingsålder under tonårsperioden hos gnagare30,37 och kan därför också hjälpa till att bestämma utvecklingsåldern under denna period. Föreslagna mekanismer relaterade till detta fenomen inkluderar stimulering av hormoner som är nödvändiga för reproduktiv utveckling, såsom tillväxthormon, och hämning av hypotalamus-hypofys binjure (HPA) -axeln av aptitregulatorn, leptin30. Det rekommenderas dock inte att använda detta mått som den enda indikatorn på utvecklingsålder på grund av den stora variationen som ses mellan råttor mellan arter och leverantörsleverantörer38. Variationen som ses i utvecklingen av VO och kroppsvikt exemplifierar konceptets betydelse i den övergripande experimentella processen.

Översättning till människor: kulturella och vetenskapliga sammanhang
Det translationella förhållandet mellan reproduktionsstudier mellan djur och människa är dubbelriktat. Resultaten från djurbaserade studier påverkar hur de mänskliga processerna bedöms, närmar sig och analyseras39. Uppfattningen av det mänskliga reproduktionssystemet och dess relaterade processer påverkar hur djur studeras. Faktum är att en av de högsta indikationerna för vidare forskning på detta område härrör från partiska sociokulturella övertygelser relaterade till hormonella cykler som påverkar den vetenskapliga processen. Många av dessa konventioner härrör från en allmän kulturell aversion mot att diskutera menstruation, vilket har lett till en datalucka i väl underbyggd kunskap40,41. Detta har ett spektrum av konsekvenser som sträcker sig från mindre till dödliga – från hyllhöjd och smarttelefonstorlek till polisens kroppspansarmontering och missade cancerdiagnoser42.

Beskrivningen av menstruation som ohälsosam, destruktiv och giftig – sett i vördade texter, media, ordböcker och medicinska läror – bevaras av vetenskapliga publikationer. Detta sker genom felaktiga och partiska beskrivningar av hormonella cykler, isoleringen av reproduktionssystemet från dess neuroendokrina motsvarigheter och miljöpåverkan och det reduktionistiska perspektivet på slutförandet av en cykel som ett “misslyckande att bli gravid”43,44. Detta leder till skapandet av osunda experimentella metoder, såsom utelämnande av externa variabler som påverkar hormonella cykler, bestämning av start och slutpunkter baserade enbart på anatomisk utveckling och mätning av cykelframsteg på ett linjärt snarare än cirkulärt sätt. Trots den direkta korrelationen mellan sociokulturella faktorer och biologiska konsekvenser beaktas det inte ofta i vetenskaplig litteratur. Genom inspektion av mer holistiska publikationer 43,44,45 kan forskare dekonstruera dessa stigmas och skapa mer tillförlitliga och giltiga experimentella mönster.

Protocol

Alla hanterings- och procedurmetoder som beskrivs i detta protokoll överensstämmer med National Institutes of Health (NIH) riktlinjer för djurvård och användning och har godkänts av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) vid Pepperdine University och UCLA Chancellor’s Animal Research Committee (ARC). 1. Djurvård och användning Skaffa honråttor, i antal enligt kraftanalys, och hanråttor för att främja Whitten-effekten eller mer konsekvent cykling<sup class="xr…

Representative Results

De aktuella uppgifterna återspeglar de för kvinnliga ungdomar SD International Genetic Standardization Program (IGS) i närvaro av manliga SD-råttor. Dessa djur var belägna vid både Pepperdine University och UCLA laboratorier som en del av en samarbetsstudie. Figur 5 visar flera variationer av de 4 cykelstegen. Figur 5A1 identifierades som ett diestrusprov med flera celltyper närvarande. Detta exempel visar att prover med ett större antal…

Discussion

Viktiga steg och viktiga överväganden
Vissa kritiska steg i det tillhandahållna protokollet kräver betoning, särskilt inom samlingen av vaginala celler. Under vaginal vätskeutvinning är det viktigt att säkerställa rätt vinkel och djup för sprrutinsättning för att ge tillfredsställande resultat och i slutändan förhindra irritation, skada eller livmoderhalsstimulering till djuret. Stimuleringen av livmoderhalsen kan vara en källa till pseudogravinduktion, indikerad av 12-14 dagar av ett…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie genomfördes genom ett NIH-finansierat samarbete mellan University of California Los Angeles Brain Injury Research Center (BIRC).

Materials

AmScope 40X-1000X LED Student Microscope + 5MP USB Camera AmScope Part Number: M150C-E5 EAN: 0608729747796 Model Number: M150C-E5 https://www.amazon.com/AmScope-40X-1000X-Student-Microscope-Camera/dp/B00O9GNOTA/ref=sr_1_15?crid=2W9CHTG8YSOTV&amp;
keywords=usb+camera+for+microscope&amp;
qid=1572477663&amp;s=industrial
&amp;sprefix=USB+camera+for+micr%2Cindustrial%2C177&amp;sr=1-15
BD PrecisionGlide Needle Pack, 20G x 1, Short Bevel Fischer Scientific 14-815-526 https://www.fishersci.com/shop/products/bd-precisionglide-single-use-needles-short-bevel-regular-wall-4/14815526#?keyword=BD%20PrecisionGlide%20Needle%20Pack,%2020G%20x%201
Bed O Cob 1/8 NEWCO 93009 https://andersonslabbedding.com/cob-products/bed-ocobs-8b/
Corning™ Plain Microscope Slides Plain water-white glass Fischer Scientific 12-553-7A https://www.fishersci.com/shop/products/corning-plain-microscope-slides-microscope-slides-75-x-25mm/125537a
Corning™ Rectangular Cover Glasses Fischer Scientific 12-553-464 https://www.fishersci.com/shop/products/corning-square-rectangular-cover-glasses-rectangle-no-1-thickness-0-13-0-17mm-size-24-x-50mm/12553464#?keyword=true
Kimberly-Clark Professional™ Kimtech Science™ Kimwipes™ Delicate Task Wipers, 1-Ply Fischer Scientific 06-666 https://www.fishersci.com/shop/products/kimberly-clark-kimtech-science-kimwipes-delicate-task-wipers-7/p-211240?crossRef=kimwipes
Labdiet Rodent Lab Chow 50lb, 15001  NEWCO Specialty and LabDiet 5012 https://www.labdiet.com/products/standarddiets/rodents/index.html
Linear LED Bulb, UL Type A, T8, Medium Bi-Pin (G13), 4,000 K Color Temperature, Lumens 2550 lm Grainger 36UX10 https://www.grainger.com/product/36UX10?gclid=CjwKCAjw_
LL2BRAkEiwAv2Y3SW1WdNdkf7
zdIxoT9R6n2DGnrToJHjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRoCi4
cQAvD_BwE&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696
!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&ef_id=
CjwKCAjw_LL2BRAkEiwAv2Y3SW
1WdNdkf7zdIxoT9R6n2DGnrToJ
Hjv-pwCTca4ahQyExrrtWvbgwRo
Ci4cQAvD_BwE:G:s&s_kwcid=AL!2966!3!335676016696!p!!g!!led18et8%2F4%2F840&cm_mmc=
PPC:+Google+PPC
Sodium Chloride Injection Bags, 0.9% Live Action Safety ABB079830939 https://www.liveactionsafety.com/injection-iv-solution-9-sodium-chloride-1000ml-bags/
Syringe Sterile 1ml  with Luer Slip Tip – 100 Syringes by BH Supplies BH Supplies ASIN: B07BQDRDC2 UPC: 638632928821 https://www.amazon.com/1ml-Syringe-Sterile-Luer-Slip/dp/B07BQDRDC2/ref=sr_1_1_sspa?crid=13S8EGEUK90G7&amp;
keywords=1ml+sterile+syringe&amp;qid=
1572478649&amp;s=industrial
&amp;sprefix=1+ml+steri%2Cindustrial%2C187&amp;sr=1-1-spons&amp;psc=1&amp;spLa=
ZW5jcnlwdGVkUXVhbGlmaWVy
PUEyRlo4NFdZWkJLWkxGJm
VuY3J5cHRlZElkPUEwMDEzODQ
yMjNWNzdWM0hTNzVBRCZlbmNy
eXB0ZWRBZElkPUEwNDI3NzAzM
0E5SzVKMkxaQVc2JndpZGdldE5h
bWU9c3BfYXRmJmFjdGlvbj1jbGlja
1JlZGlyZWN0JmRvTm90TG9nQ2
xpY2s9dHJ1ZQ==
Wire lids and floors Mouse Maternity Wire Bar LidUsed with Rat Cage (10" X 19" x 8"H )Overall dimen Allentown LV40326013 https://www.labx.com/item/wire-lids-and-floors-mouse-maternity-wire-bar-lidused/LV40326013#description
Ultra Lightweight Tissue and Plastic 17' x 24' Disposable Underpad Medline EAN: 0480196288558
 Global Trade Identification Number: 40080196288558
https://www.amazon.com/Medline-Industries-MSC281224C-Lightweight-Disposable/dp/B00A2G67YU/ref=sr_1_4?keywords=medline+industries+surgical+pads&amp;qid=1572475853&amp;
sr=8-4

References

  1. Schneider, M. Adolescence as a vulnerable period to alter rodent behavior. Cell and Tissue Research. 354 (1), 99-106 (2013).
  2. Camacho-Arroyo, I., Montor, J. M. Beyond reproductive effects of sex steroids. MiniReviews in Medicinal Chemistry. 12 (11), 1037-1039 (2012).
  3. Shah, S. I. A. Systemic non-reproductive effects of sex steroids in adult males and females. Human Physiology. 44, 83-87 (2018).
  4. Wierman, M. E. Sex steroid effects at target tissues: mechanisms of action. Advances in Physiology Education. 31 (1), 26-33 (2007).
  5. An, G., et al. Pathophysiological changes in female rats with estrous cycle disorder induced by long-term heat stress. BioMed Research International. 2020, 4701563 (2020).
  6. Donato, J., et al. The ventral premammillary nucleus links fasting-induced changes in leptin levels and coordinated luteinizing hormone secretion. Journal of Neuroscience. 29 (16), 5240-5250 (2009).
  7. Fortress, A. M., Avcu, P., Wagner, A. K., Dixon, C. E., Pang, K. Experimental traumatic brain injury results in estrous cycle disruption, neurobehavioral deficits, and impaired GSK3β/β-catenin signaling in female rats. Experimental Neurology. 315, 42-51 (2019).
  8. Hatsuta, M., et al. Effects of hypothyroidism on the estrous cycle and reproductive hormones in mature female rats. European Journal of Pharmacology. 486 (3), 343-348 (2004).
  9. Jaini, R., Altuntas, C. Z., Loya, M. G., Tuohy, V. K. Disruption of estrous cycle homeostasis in mice with experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroimmunology. 279, 71-74 (2015).
  10. Tropp, J., Markus, E. J. Effects of mild food deprivation on the estrous cycle of rats. Physiology and Behavior. 73 (4), 553-559 (2001).
  11. Goldman, J. M., Murr, A. S., Cooper, R. L. The rodent estrous cycle: characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Research. Part B, Developmental and Reproductive Toxicology. 80 (2), 84-97 (2007).
  12. Thung, P. J., Boot, L. M., Muhlbock, O. Senile changes in the oestrous cycle and in ovarian structure in some inbred strains of mice. Acta Endocrinologica. 23 (1), 8-32 (1956).
  13. Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal cytology of the laboratory rat and mouse: Review and criteria for the staging of the estrous cycle using stained vaginal smears. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
  14. . Biochemical and endocrinological studies of normal and neoplastic tissue: The metabolism of estrogen-producing ovarian tumors and other malignancies in the mouse Available from: https://www.translatetheweb.com/?from=nl&to=en&ref=SERP&dl=en&rr=UC&a=https%3a%2f%2frepository.tudelft.nl%2fislandora%2fobject%2fuuid%253A8776d58a-6695-4a38-99ca-0abf607480f0 (2021)
  15. Van Der Lee, S., Boot, L. M. Spontaneous pseudopregnancy in mice. Acta Physiologica Pharmacologica Neerlandica. 4 (3), 442-444 (1955).
  16. Paccola, C., Resende, C., Stumpp, T., Miraglia, S., Cipriano, I. The rat estrous cycle revisited: a quantitative and qualitative analysis. Animal Reproduction. 10 (4), 677-683 (2013).
  17. Ojeda, S. R., Urbanski, H. F., Knobil, E., Neill, J. D. Puberty in the rat. The Physiology of Reproduction. , 363-409 (1994).
  18. Schallmayer, S., Hughes, B. M. Impact of oral contraception and neuroticism on cardiovascular stress reactivity across the menstrual cycle. Psychology, Health & Medicine. 15 (1), 105-115 (2010).
  19. Barreto-Cordero, L. M., et al. Cyclic changes and actions of progesterone andallopregnanolone on cognition and hippocampal basal (stratum oriens) dendritic spinesof female rats. Behavioural Brain Research. 379, 112355 (2020).
  20. de Zambotti, M., Trinder, J., Colrain, I. M., Baker, F. C. Menstrual cycle-related variation in autonomic nervous system functioning in women in the early menopausal transition with and without insomnia disorder. Psychoneuroendocrinology. 75, 44-51 (2017).
  21. Maghool, F., Khaksari, M., Khachki, A. S. Differences in brain edema and intracranial pressure following traumatic brain injury across the estrous cycle: Involvement of female sex steroid hormones. Brain Research. 1497, 61-72 (2013).
  22. Bale, T. L., Epperson, C. N. Sex as a biological variable: Who, what, when, why, and how. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 386-396 (2017).
  23. Becker, J. B., Prendergast, B. J., Liang, J. W. Female rats are not more variable than male rats: a meta-analysis of neuroscience studies. Biology of Sex Differences. 7, 34 (2016).
  24. Prendergast, B. J., Onishi, K. G., Zucker, I. Female mice liberated for inclusion in neuroscience and biomedical research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 40, 1-5 (2014).
  25. Joel, D., McCarthy, M. M. Incorporating sex as a biological variable in neuropsychiatric research: where are we now and where should we be. Neuropsychopharmacology. 42 (2), 379-385 (2017).
  26. Long, J. A., Evans, H. M. The oestrous cycle in the rat and its associated phenomena. Memoirs of the University of California. 6, 1 (1922).
  27. Westwood, F. R. The female rat reproductive cycle: A practical histological guide to staging. Toxicologic Pathology. 36 (3), 375-384 (2008).
  28. Lenschow, C., Sigl-Glöckner, J., Brecht, M. Development of rat female genital cortex and control of female puberty by sexual touch. PLoS Biology. 15 (9), 2001283 (2017).
  29. Lewis, E. M., Barnett, J. F., Freshwater, L., Hoberman, A. M., Christian, M. S. Sexual maturation data for Crl Sprague-Dawley rats: Criteria and confounding factors. Drug and Chemistry Toxicology. 25 (4), 437-458 (2002).
  30. Spear, L. P. The adolescent brain and age-related behavioral manifestations. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 24 (4), 417-463 (2000).
  31. Gaytan, F., et al. Development and validation of a method for precise dating of female puberty in laboratory rodents: the puberty ovarian maturation score (pub-score). Scientific Reports. 7, 46381 (2017).
  32. da Silva Faria, T., da Fonte Ramos, C., Sampaio, F. J. Puberty onset in the female offspring of rats submitted to protein or energy restricted diet during lactation. Journal of Nutritional Biochemistry. 15 (2), 123-127 (2004).
  33. Caligioni, C. S. Assessing reproductive status/stages in mice. Current Protocols in Neuroscience. 48 (1), 1 (2009).
  34. Engelbregt, M. J., et al. Delayed first cycle in intrauterine growth-retarded and postnatally undernourished female rats: follicular growth and ovulation after stimulation with pregnant mare serum gonadotropin at first cycle. Journal of Endocrinology. 173 (2), 297-304 (2002).
  35. Pescovitz, O. H., Walvoord, E. C. . When puberty is precocious: Scientific and clinical aspects. , (2007).
  36. . Standard Evaluation Procedure Test Guidelines 890.1450: Pubertal development and thyroid function in intact juvenile/peripubertal female rats assay Available from: https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-07/documents/final_890.1450_female_pubertal_assay_sep_8.24.11.pdf (2011)
  37. Kennedy, G. G., Mitra, J. Body weight and food intake as initiating factors for puberty in the rat. Journal of Physiology. 166 (2), 408-418 (1963).
  38. Sengupta, S., Arshad, M., Sharma, S., Dubey, M., Singh, M. M. Attainment of peak bone mass and bone turnover rate in relation to estrous cycle, pregnancy and lactation in colony-bred Sprague-Dawley rats: Suitability for studies on pathophysiology of bone and therapeutic measures for its management. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 94 (5), 421-429 (2005).
  39. Iannaccone, P. M., Jacob, H. J. Rats. Disease models & Mechanisms. 2 (5-6), 206-210 (2009).
  40. Koff, E., Rierdan, J., Stubbs, M. L. Conceptions and misconceptions of the menstrual cycle. Women & Health. 16 (3-4), 119-136 (1990).
  41. Sahay, N. Myths and misconceptions about menstruation: A study of adolescent school girls of Delhi. Journal of Women’s Health and Development. 3 (3), 154-169 (2020).
  42. . The deadly truth about a world built for men – from stab vests to car crashes Available from: https://www.theguardian.com/lifeandstyle/2019/feb/23/truth-world-built-for-men-car-crashes (2019)
  43. Chrisler, J. C., Denmark, F. L., Paludi, M. A. The menstrual cycle in a biopsychosocial context. Women’s Psychology. Psychology of Women: A Handbook of Issues and Theories. , 193-232 (2008).
  44. . Re-cycling the menstrual cycle: A multidisciplinary reinterpretation of menstruation Available from: https://scholarworks.wmich.edu/masters_theses/3942 (1998)
  45. Sato, J., Nasu, M., Tsuchitani, M. Comparative histopathology of the estrous or menstrual cycle in laboratory animals. Journal of Toxicologic Pathology. 29 (3), 155-162 (2016).
  46. Whitten, W. K. Modification of the oestrous cycle of the mouse by external stimuli associated with the male. Journal of Endocrinology. 13 (4), 399-404 (1956).
  47. Smith, J. R., et al. The year of the rat: The Rat Genome Database at 20: a multi-species knowledgebase and analysis platform. Nucleic Acids Research. 48 (1), 731-742 (2020).
  48. Capdevila, S., Giral, M., Ruiz de la Torre, J. L., Russell, R. J., Kramer, K. Acclimatization of rats after ground transportation to a new animal facility. Laboratory Animals. 41 (2), 255-261 (2007).
  49. Conour, L., Murray, K., Brown, M. Preparation of animals for research-issues to consider for rodents and rabbits. ILAR journal. 47 (4), 283-293 (2006).
  50. National Academies Press (US) Committee on Guidelines for the Humane Transportation of Laboratory Animals. Guidelines for the Humane Transportation of Research Animals. National Academies Press. , (2006).
  51. Obernier, J., Baldwin, R. Establishing an appropriate period of acclimatization following transportation of laboratory animals. ILAR Journal. 47 (4), 364-369 (2006).
  52. National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. US) . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).
  53. Pantier, L. K., Li, J., Christian, C. A. Estrous cycle monitoring in mice with rapid data visualization and analysis. Bio-protocol. 9 (17), 1-17 (2019).
  54. Cohen, I., Mann, D. Seasonal changes associated with puberty in female rats: effect of photoperiod and ACTH administration. Biology of Reproduction. 20 (4), 757-776 (1979).
  55. Nelson, J. F., Felicio, L. S., Randall, P. K., Sims, C., Finch, C. E. A longitudinal study of estrous cyclicity in aging C57BL/6J Mice: I. cycle frequency, length and vaginal cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  56. Pennycuik, P. R. Seasonal changes in reproductive productivity, growth rate, and food intake in mice exposed to different regimens of day length and environmental temperature. Australian Journal of Biological Sciences. 25 (3), 627-635 (1972).
  57. Piacsek, B. E., Hautzinger, G. M. Effects of duration, intensity and spectrum of light exposure on sexual maturation time of female rats. Biology of Reproduction. 10 (3), 380-387 (1974).
  58. Rubinow, M. J., Arseneau, L. M., Beverly, J. L., Juraska, J. M. Effect of the estrous cycle on water maze acquisition depends on the temperature of the water. Behavioral Neuroscience. 118 (4), 863-868 (2004).
  59. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Fundamentals of Breeding and Weaning. JoVE. , (2020).
  60. Campbell, C., Schwartz, N. The impact of constant light on the estrous cycle of the rat. Endocrinology. 106 (4), 1230-1238 (1980).
  61. Nelson, J. F., Felicio, L. S., Osterburg, H. H., Finch, C. E. Altered profiles of estradiol and progesterone associated with prolonged estrous cycles and persistent vaginal cornification in aging C578L/6J mice. Biology of Reproduction. 24 (4), 784-794 (1981).
  62. Rivest, R. W. Sexual maturation in female rats: Hereditary, developmental and environmental aspects. Experientia. 47 (10), 1026-1038 (1991).
  63. CD® (Sprague Dawley) IGS Rat. Charles River Laboratories Available from: https://www.criver.com/products-services/find-model/cd-sd-igs-rat?region=3611 (2021)
  64. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Rodent Handling and Restraint Techniques. JoVE. , (2020).
  65. Circulatory System. Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
  66. Urogenital System. n.d.). Biology Corner Available from: https://www.biologycorner.com/worksheets/rat_circulatory.html (2021)
  67. . Anatomical foundations of neuroscience: Mini-atlas of rat’s brain. Anatomy and Cell Biology 9535b Available from: https://instruct.uwo.ca/anatomy/530/535downs.htm (2008)
  68. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse estrous cycle identification tool and images. PloS One. 7 (4), 1-5 (2012).
  69. Marcondes, F. K., Bianchi, F. J., Tanno, A. P. Determination of the estrous cycle phases of rats: some helpful considerations. Brazilian Journal of Biology. 62 (4), 609-614 (2002).
  70. Champlin, A. K., Dorr, D. L., Gates, A. H. Determining the stage of the estrous cycle in the mouse by the appearance of the vagina. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  71. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6 (5), (2020).
  72. Bartos, L. Vaginal impedance measurement used for mating in the rat. Laboratory Animals. 11 (1), 53-55 (1977).
  73. Belozertseva, I. V., Merkulov, D. D., Vilitis, O. E., Skryabin, B. V. Instrumental method for determining the stages of the estrous cycle in small laboratory rodents. Laboratory Animals for Scientific Research. (4), (2018).
  74. Ramos, S. D., Lee, J. M., Peuler, J. D. An inexpensive meter to measure differences in electrical resistance in the rat vagina during the ovarian cycle. Journal of Applied Physiology. 91 (2), 667-670 (2001).
  75. Singletary, S. J., et al. Lack of correlation of vaginal impedance measurements with hormone levels in the rat. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (6), 37-42 (2005).
  76. Bretveld, R. W., Thomas, C. M., Scheepers, P. T., et al. Pesticide exposure: the hormonal function of the female reproductive system disrupted. Reproductive Biology Endocrinology. 4 (30), (2006).
  77. MacDonald, J. K., Pyle, W. G., Reitz, C. J., Howlett, S. E. Cardiac contraction, calcium transients, and myofilament calcium sensitivity fluctuate with the estrous cycle in young adult female mice. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 306 (7), 938-953 (2014).
  78. Koebele, S. V., Bimonte-Nelson, H. A. Modeling menopause: The utility of rodents in translational behavioral endocrinology research. Maturitas. 87, 5-17 (2016).
check_url/kr/62884?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Robert, H., Ferguson, L., Reins, O., Greco, T., Prins, M. L., Folkerts, M. Rodent Estrous Cycle Monitoring Utilizing Vaginal Lavage: No Such Thing As a Normal Cycle. J. Vis. Exp. (174), e62884, doi:10.3791/62884 (2021).

View Video