Summary

망막병증의 마우스 모델에 대한 광학 간섭 단층 촬영의 적용

Published: January 12, 2022
doi:

Summary

여기에서는 마우스에서 망막병증의 진단 및 정량적 측정을 용이하게 하기 위해 광학 간섭 단층 촬영을 사용하는 생체 내 이미징 기술에 대해 설명합니다.

Abstract

광학 간섭 단층 촬영 (OCT)은 망막 병증 진단을위한 비 침습적 방법을 제공합니다. OCT 기계는 망막 두께를 계산할 수 있는 망막 단면 이미지를 캡처할 수 있습니다. OCT는 임상 실습에서 널리 사용되지만 기초 연구에서의 적용은 특히 생쥐와 같은 작은 동물에서 널리 퍼지지 않습니다. 안구의 크기가 작기 때문에 생쥐에서 안저 영상 검사를 수행하는 것이 어렵습니다. 따라서 작은 동물에 대한 OCT 영상을 수용하기 위해서는 특수 망막 영상 시스템이 필요합니다. 이 기사에서는 OCT 검사 절차를 위한 작은 동물 전용 시스템과 이미지 분석을 위한 자세한 방법을 보여줍니다. 초저밀도 지단백질 수용체(Vldlr) 녹아웃 마우스와 C57BL/6J 마우스의 망막 OCT 검사 결과가 제시됩니다. C57BL/6J 마우스의 OCT 이미지는 망막층을 나타낸 반면, Vldlr 녹아웃 마우스의 이미지는 망막하 신생혈관하 및 망막 얇아짐을 보여주었습니다. 요약하면, OCT 검사는 마우스 모델에서 망막병증의 비침습적 검출 및 측정을 용이하게 할 수 있습니다.

Introduction

광학 간섭 단층 촬영 (OCT)은 조직 1,2,3,4,5,6,7,8, 특히 망막 9,10,11,12의 비 침습적 검사를 위해 생체 내 고해상도 및 단면 이미징을 제공 할 수있는 이미징 기술입니다. . 또한 망막 두께 및 망막 신경 섬유 층 두께와 같은 몇 가지 중요한 바이오 마커를 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. OCT의 원리는 샘플로부터 반사된 빛의 일관성으로부터 단면 조직 정보를 획득하고 컴퓨터 시스템(7)을 통해 그래픽 또는 디지털 형태로 변환하는 광학 간섭 반사 측정법이다. OCT는 망막 장애 환자의 진단, 후속 조치 및 관리를 위한 필수 도구로 안과 클리닉에서 널리 사용됩니다. 또한 망막 질환의 발병 기전에 대한 통찰력을 제공 할 수 있습니다.

임상 응용 외에도 OCT는 동물 연구에도 사용되었습니다. 병리학이 형태학적 특성화의 황금 표준이지만 OCT는 비침습적 생체 내 영상 및 종단 추적 관찰의 장점이 있습니다. 또한, OCT는 망막병증 동물 모델 11,13,14,15,16,17,18,19,20에서 조직병리학과 잘 상관관계가 있는 것으로 나타났다. 마우스는 생물 의학 연구에서 가장 일반적으로 사용되는 동물입니다. 그러나 작은 안구는 마우스에서 OCT 이미징을 수행하는 데 기술적인 문제를 제기합니다.

마우스21,22에서 망막 영상에 처음 사용 된 OCT와 비교하여 작은 동물의 OCT는 이제 하드웨어 및 소프트웨어 시스템과 관련하여 최적화되었습니다. 예를 들어, OCT는 트래커와 함께 신호 대 잡음비를 크게 줄입니다. OCT 소프트웨어 시스템 업그레이드를 통해 더 많은 망막층을 자동으로 감지할 수 있습니다. 통합 DLP 비머는 모션 아티팩트를 줄이는 데 도움이 됩니다.

초저밀도 지단백질 수용체(Vldlr)는 내피 세포의 막횡단 단백질입니다. 망막 혈관 내피 세포, 망막 색소 상피 세포, 및 외부 제한막(23, 24) 주위에 발현된다. 망막 신생 혈관은 Vldlr 녹아웃 마우스23의 표현형입니다. 따라서 Vldlr 녹아웃 마우스는 망막 신생 혈관의 병인 및 잠재적 치료법을 조사하는 데 사용됩니다. 이 기사는 Vldlr 녹아웃 마우스에서 망막 병변을 감지하기 위해 OCT 이미징을 적용하는 방법을 보여 주며 작은 동물 모델에서 망막 병증 연구에 대한 기술적 참고 자료를 제공하기를 희망합니다.

Protocol

수술은 시력 및 안과 연구 협회의 안과 및 시력 연구에서 동물 사용에 관한 성명서에 따라 수행되었습니다. 실험 설계는 기관 동물 윤리위원회 (JSIEC의 의료 윤리위원회, EC 20171213 (4) -P01))의 승인을 받았습니다. 2개월 된 C57BL/6J 마우스와 Vldlr 녹아웃 마우스를 본 연구에 사용하였다. 각 그룹에는 7마리의 마우스가 있었고, 모두 암컷이었고 무게는 20g 내지 24g이었다. 1. 실험 …

Representative Results

OCT의 고해상도 스캔 덕분에 마우스 망막의 층을 관찰하고 비정상적인 반사와 정확한 위치를 식별할 수 있습니다. Vldlr 녹아웃 마우스와 C57BL/6J 마우스의 망막 OCT 이미지를 이 연구에서 비교했습니다. 모든 C57BL/6J 마우스의 OCT 이미지는 반사율이 다른 다양한 망막층을 보여주었고 경계가 명확했습니다(그림 8D). 대조적으로, 모든 Vldlr 녹아웃 마우스는 OCT 이미지에…

Discussion

이 연구에서는 불완전한 후방 유리체 박리, 망막 신생 혈관 및 망막 두께 얇아짐을 나타내는 Vldlr 녹아웃 마우스의 망막 변화를 평가하기 위해 작은 동물 망막 영상 시스템을 사용한 OCT 영상을 적용했습니다. OCT는 생체 내에서 망막의 상태를 검사하는 비침습적 영상 방법입니다. 대부분의 OCT 장치는 사람의 눈 검사용으로 설계되었습니다. 하드웨어 장비의 크기, 초점 거리 설정, 시스?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

프로젝트 출처 : 광동성 자연 과학 재단 (2018A0303130306). 저자는 안과 연구소, 산 터우 대학의 산 터우 국제 안과 센터 및 홍콩 중문 대학에 자금과 자료에 감사드립니다.

Materials

100-Dpt contact lens Volk Optical,Inc, Mentor, OH Accessory belonging to the RETImap
Double aspheric 60-Dpt glass lens Volk Optical,Inc, Mentor, OH Accessory belonging to the RETImap
Electric heating blanket POPOCOLA CW-DRT-01 50 x 35 cm
Injection syringe (1 mL) Kaile 0.45 x 16RWLB
Levofloxacin Hydrochloride Eye Gel EBE PHARMACEUTICAL Co.LTD 5 g: 0.015 g
Medical sodium hyaluronate gel Alcon 16H01E
Microliter syringes Shanghai high pigeon industry and trade co., LTD Q31/0113000236C001-2017 50 µL
Povidone iodine solution Guangdong medihealth pharmaceutical Co.,LTD 100 mL
RETImap ROLAND CONSULT 19-99_50-2.1_1.2E cSLO/ERG/VEP/FA/OCT/GFP
Small animal ear studs OSMO POCKET OT110 INS1005-1S
Tropicamide Phenylephrine Eye Drops Santen Pharmaceutical Co.,LTD 5 mg/mL
Xylazin Sigma X1251-5G 5 g
Zoletil 50 Virbac.S.A 7FRPA Tiletamine 125 mg + Zolazepam 125 mg

References

  1. Frombach, J., et al. Serine protease-mediated cutaneous inflammation: characterization of an ex vivo skin model for the assessment of dexamethasone-loaded core multishell-nanocarriers. Pharmaceutics. 12 (9), 862 (2020).
  2. Osiac, E., Săftoiu, A., Gheonea, D. I., Mandrila, I., Angelescu, R. Optical coherence tomography and Doppler optical coherence tomography in the gastrointestinal tract. Journal of Gastroenterology. 17 (1), 15-20 (2011).
  3. Xiong, Y. Q., et al. Diagnostic accuracy of optical coherence tomography for bladder cancer: A systematic review and meta-analysis. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 27, 298-304 (2019).
  4. Andrews, P. M., et al. Optical coherence tomography of the aging kidney. & Clinical Transplantation. 14 (6), 617-622 (2016).
  5. Terashima, M., Kaneda, H., Suzuki, T. The role of optical coherence tomography in coronary intervention. The Korean Journal of Internal Medicine. 27 (1), 1-12 (2012).
  6. Avital, Y., Madar, A., Arnon, S., Koifman, E. Identification of coronary calcifications in optical coherence tomography imaging using deep learning. Scientific Reports. 11 (1), 11269 (2021).
  7. Huang, D., et al. Optical coherence tomography. Science. 254 (5035), 1178-1181 (1991).
  8. Tsai, T. H., et al. Optical coherence tomography in gastroenterology: a review and future outlook. Journal of Biomedical Optics. 22 (12), 1-17 (2017).
  9. Chen, J., et al. Relationship between optical intensity on optical coherence tomography and retinal ischemia in branch retinal vein occlusion. Scientific Reports. 8 (1), 9626 (2018).
  10. Chen, X., et al. Quantitative analysis of retinal layer optical intensities on three-dimensional optical coherence tomography. Investigative Opthalmology & Visual Science. 54 (10), 6846-6851 (2013).
  11. Cruz-Herranz, A., et al. Monitoring retinal changes with optical coherence tomography predicts neuronal loss in experimental autoimmune encephalomyelitis. Journal of Neuroinflammation. 16 (1), 203 (2019).
  12. Podoleanu, A. G. Optical coherence tomography. Journal of Microscopy. 247 (3), 209-219 (2012).
  13. Augustin, M., et al. Optical coherence tomography findings in the retinas of SOD1 knockout mice. Translational Vision Science & Technology. 9 (4), 15 (2020).
  14. Berger, A., et al. Spectral-domain optical coherence tomography of the rodent eye: highlighting layers of the outer retina using signal averaging and comparison with histology. PLoS One. 9 (5), 96494 (2014).
  15. Burns, M. E., et al. New developments in murine imaging for assessing photoreceptor degeneration in vivo. Advances in Experimental Medicine & Biology. 854, 269-275 (2016).
  16. Jagodzinska, J., et al. Optical coherence tomography: imaging mouse retinal ganglion cells in vivo. Journal of Visualized Experiments: Jove. (127), e55865 (2017).
  17. Kocaoglu, O. P., et al. Simultaneous fundus imaging and optical coherence tomography of the mouse retina. Investigative Opthalmology & Visual Science. 48 (3), 1283-1289 (2007).
  18. Tode, J., et al. Thermal stimulation of the retina reduces Bruch’s membrane thickness in age related macular degeneration mouse models. Translational Vision Science & Technology. 7 (3), 2 (2018).
  19. Wang, R., Jiang, C., Ma, J., Young, M. J. Monitoring morphological changes in the retina of rhodopsin-/- mice with spectral domain optical coherence tomography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (7), 3967-3972 (2012).
  20. Xie, Y., et al. A spectral-domain optical coherence tomographic analysis of Rdh5-/- mice retina. PLoS ONE. 15 (4), 0231220 (2020).
  21. Li, Q., et al. Noninvasive imaging by optical coherence tomography to monitor retinal degeneration in the mouse. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 42 (12), 2981-2989 (2001).
  22. Horio, N., et al. Progressive change of optical coherence tomography scans in retinal degeneration slow mice. Archives of Ophthalmology. 119 (9), 1329-1332 (2001).
  23. Hu, W., et al. Expression of VLDLR in the retina and evolution of subretinal neovascularization in the knockout mouse model’s retinal angiomatous proliferation. Investigative Opthalmology & Visual Science. 49 (1), 407-415 (2008).
  24. Wyne, K. Expression of the VLDL receptor in endothelial cells. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 16 (3), 407-415 (1996).
  25. Augustin, M., et al. In vivo characterization of spontaneous retinal neovascularization in the mouse eye by multifunctional optical coherence tomography. Investigative Opthalmology & Visual Science. 59 (5), 2054-2068 (2018).
  26. Fang, Y., et al. Fundus autofluorescence, spectral-domain optical coherence tomography, and histology correlations in a Stargardt disease mouse model. The FASEB Journal. 34 (3), 3693-3714 (2020).
check_url/kr/63421?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mai, X., Huang, S., Chen, W., Ng, T. K., Chen, H. Application of Optical Coherence Tomography to a Mouse Model of Retinopathy. J. Vis. Exp. (179), e63421, doi:10.3791/63421 (2022).

View Video