Summary

Svært multiplekset vevsavbildning med Raman Fargestoffer

Published: April 21, 2022
doi:

Summary

Elektronisk pre-resonans stimulert Raman spredning (epr-SRS) avbildning av regnbue-lignende Raman fargestoffer er en ny plattform for svært multiplekset epitop-basert protein avbildning. Her presenterer vi en praktisk guide, inkludert antistoffpreparat, vevsprøvefarging, SRS mikroskopmontering og epr-SRS vevsavbildning.

Abstract

Visualisering av et stort omfang av spesifikke biomarkører i vev spiller en viktig rolle i å utforske de intrikate organisasjonene av komplekse biologiske systemer. Derfor har svært multipleksede bildeteknologier blitt stadig mer verdsatt. Her beskriver vi en ny plattform med svært multippelxed vibrasjonsavbildning av spesifikke proteiner med sammenlignbar følsomhet for standard immunfluorescens via elektronisk pre-resonans stimulert Raman spredning (epr-SRS) bildebehandling av regnbuelignende Raman fargestoffer. Denne metoden omgår grensen for spektralt løselige kanaler i konvensjonell immunfluorescence og gir en ett-skudds optisk tilnærming for å forhøre flere markører i vev med subcellulær oppløsning. Det er generelt kompatibelt med standard vevspreparater, inkludert paraformaldehydfast vev, frossent vev og formalin-fast parafin-innebygd (FFPE) humant vev. Vi ser for oss at denne plattformen vil gi et mer omfattende bilde av proteininteraksjoner av biologiske prøver, spesielt for tykt intakt vev. Denne protokollen gir arbeidsflyten fra antistoffpreparat til vevsprøvefarging, til SRS mikroskopmontering, til epr-SRS vevsavbildning.

Introduction

Komplekse vevssystemer består av distinkte cellulære subpopulasjoner hvis romlige steder og interaksjonsnettverk er dypt sammenflettet med deres funksjoner og dysfunksjoner 1,2. For å avsløre vevsarkitekturen og forhøre kompleksiteten, er kunnskap om de romlige plasseringene av proteiner ved encellet oppløsning viktig. Derfor har svært multipleksede proteinavbildningsteknologier blitt stadig mer verdsatt og kan bli en hjørnestein for å studere vevsbiologi 3,4,5. Nåværende vanlige multipleksede proteinavbildningsmetoder kan klassifiseres i to hovedkategorier. Den ene er seriell immunfluorescensavbildning som er avhengig av flere runder med vevsfarging og avbildning, og den andre er bildemassecytometri kombinert med tungmetallmerkede antistoffer 6,7,8,9,10,11,12.

Her innføres en alternativ strategi for multiplekset antistoffbasert proteinavbildning. I motsetning til den utbredte fluorescensavbildningsmodaliteten, som bare kan visualisere 4-5 kanaler samtidig på grunn av den brede eksitasjonen og utslippsspektraet (full bredde ved halv maksimum (FWHM) ~ 500 cm-1), viser Raman-mikroskopi mye smalere spektral linewidth (FWHM ~ 10 cm-1) og gir dermed skalerbar multipleksitet. Nylig, ved å utnytte det smale spekteret, har en ny ordning med Raman-mikroskopi kalt elektronisk pre-resonans stimulert Raman-spredning (epr-SRS) mikroskopi blitt utviklet, noe som gir en kraftig strategi for multiplekset bildebehandling13. Ved å undersøke de elektronisk koblede vibrasjonsmodusene til Raman-fargestoffer oppnår epr-SRS en drastisk forbedringseffekt på10 13 ganger på Raman-tverrsnitt og overvinner følsomhetsflaskehalsen til konvensjonell Raman-mikroskopi (figur 1A)13,14,15. Som et resultat har deteksjonsgrensen for epr-SRS blitt presset til sub-μM, noe som muliggjør Raman-deteksjon av interessante molekylære markører som spesifikke proteiner og organeller inne i cellene13,16. Spesielt ved bruk av Raman fargestoffkonjugede antistoffer ble epr-SRS-avbildning av spesifikke proteiner i celler og vev (kalt immuno-eprSRS) demonstrert med sammenlignbar følsomhet for standard immunfluorescens (figur 1B) 13,17. Ved å justere pumpebølgelengden med bare 2 nm, vil epr-SRS-signalet være helt av (figur 1B), som viser høy vibrasjonskontrast.

På sondesiden er det utviklet et sett med regnbuelignende Raman-sonder kalt Manhattan Raman-spredning (MARS) fargestoffer for antistoffkonjugering 13,18,19,20. Denne unike Raman-paletten består av nye fargestoffer som bærer π-konjugiserte trippelbindinger (tilleggsmateriale), som hver viser en enkelt og smal epr-SRS-topp i det bioortogonale Raman-spektralområdet (figur 1C). Ved å modifisere strukturen til kjernekromoforen og isotopisk redigere begge atomene av trippelbindingen (supplementært materiale), er det utviklet spektralt separerte Raman-sonder. Ved hjelp av den skalerbare multipleksiteten tilbyr epr-SRS-mikroskopi kombinert med MARS-fargepaletten en optisk strategi for ett-skudds multipleksproteinavbildning i celler og vev.

Immuno-eprSRS gir en alternativ strategi for dagens multipleks proteinavbildningsmetoder med unike styrker. Sammenlignet med fluorescens tilnærminger med syklisk farging, avbildning og signalfjerning, sikrer denne Raman-baserte plattformen en-rund farging og avbildning. Derfor omgår den praktisk kompleksitet i sykliske prosedyrer og forenkler i stor grad protokollen, og åpner dermed nye territorier for multiplekset proteinavbildning. For eksempel, ved å utnytte en Raman-farget-skreddersydd vevsryddingsprotokoll, har immuno-eprSRS blitt utvidet til tre dimensjoner for svært multiplekset proteinkartlegging i tykt intakt vev17. Over 10 proteinmål ble visualisert langs millimeter tykk musehjernevev17. Mer nylig, kobling immuno-eprSRS med en optimalisert biomolekyl-oppbevaring ekspansjon mikroskopi (ExM) protokoll21, ett-skudd nanoskala bildebehandling av flere mål har også blitt demonstrert22. Sammenlignet med avbildningsmassespektroskopi 4,9, er epr-SRS ikke-ødeleggende og har iboende optisk seksjoneringsevne. Videre er epr-SRS mer tidseffektiv på vevsskanning. Vanligvis tar et vevsområde på 0,25 mm2 med en pikselstørrelse på 0,5 μm bare noen få minutter å bilde for en enkelt epr-SRS-kanal. For eksempel er den totale bildetiden til fire SRS-kanaler pluss fire fluorescenskanaler i figur 4 ca. 10 min.

Protocol

Protokollen ble utført i samsvar med dyreforsøksprotokollen (AC-AABD1552) godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee ved Columbia University. 1. Fremstilling av Raman-farget-konjugede antistoffer Klargjør konjugeringsbufferen som ~0,1 M NaHCO3 i PBS-buffer, pH = 8,3, oppbevar ved 4 °C. Forbered N-hydroksysuccinimid (NHS) esterfunksjonell MARS-sonde (tilleggsmateriale) løsning som 3 mM i vannfri DMSO. Syntese av …

Representative Results

Figur 3 viser eksempelbilder av epr-SRS i forskjellige prøver, inkludert faste celler (figur 3A), paraformaldehyd (PFA)-fast musevev (figur 3B) og formalinfaste parafinin innebygde (FFPE) menneskelige prøver (figur 3C). Den romlige oppløsningen til SRS-mikroskopi er diffraksjonsbegrenset, den typiske laterale oppløsningen er ~ 300 nm, og den aksiale oppløsningen er 1-2 μm ved hjelp av nær-infrar?…

Discussion

Her presenterer vi immuno-eprSRS-protokollen som i stor grad gjelder for vanlige vevstyper, inkludert ferskt bevart musevev, FFPE-humant vev og frossent musevev. Immuno-eprSRS er validert for et panel av epitoper i celler og vev, som oppført i tabell 1. Denne one-shot plattformen er spesielt egnet for applikasjoner der sykliske strategier ikke fungerer bra. For eksempel er syklisk fluorescens krevende for tykt vev, da flere runder med 3D-immunisolering er upraktisk lang17. Det er…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Ruth A. Singer og Richard K.P. Benninger for å ha gitt mus bukspyttkjertelvev. W.M. anerkjenner støtte fra NIH R01 (GM128214), R01 (GM132860), R01 (EB029523) og US Army (W911NF-19-1-0214).

Materials

16% Paraformaldehyde, EM Grade Electron Microscopy Sciences 15710
α-tubulin Abcam ab18251 Primary antibodies
α-tubulin BioLegend 625902 Primary antibodies
β-III-tubulin BioLegend 657402 Primary antibodies
β-III-tubulin Abcam ab41489 Primary antibodies
β-tubulin Abcam ab131205 Primary antibodies
Agarose, low gellling temperature Sigma Aldrich A9414 For brain embedding
Anti-a-tubulin antibody produced in rabbit (α-tubulin) Abcam ab52866 Primary antibodies
Anti-Calbindin antibody produced in mouse (Calbindin) Abcam ab82812 Primary antibodies
Anti-GABA B receptor R2  antibody produced in guinea pig (GABA B receptor R2) Millipore Sigma AB2255 Primary antibodies
Anti-GFAP antibody produced in goat (GFAP) Thermo Scientific PA5-18598 Primary antibodies
Anti-Glucagon  antibody produced in mouse (Glucagon) Santa Cruz Biotechnology sc-514592 Primary antibodies
Anti-insulin antibody produced in guinea pig (insulin) DAKO IR00261-2 Primary antibodies
Anti-MBP antibody produced in rat (MBP) Abcam ab7349 Primary antibodies
Anti-NeuN antibody produced in rabbit (NeuN) Thermo Scientific PA5-78639 Primary antibodies
Anti-Pancreatic polypeptide (PP) antibody produced in goat- Pancreatic polypeptide (PP) Sigma Aldrich SAB2500747 Primary antibodies
Anti-Pdx1 antibody produced in rabbit (Pdx1) Milipore 06-1379 Primary antibodies
Anti-Somatostatin antibody produced in rat (Somatostatin) Abcam ab30788 Primary antibodies
Anti-Vimentin antibody produced in chicken (Vimentin) Abcam ab24525 Primary antibodies
Band-pass filter KR Electronics KR2724 8 MHz
BNC 50 Ohm Terminator Mini Circuits STRM-50
BNC cable Thorlabs 2249-C Coaxial Cable, BNC Male / Male
Broadband dielectric mirror Thorlabs BB1-E03 750 – 1100 nm
C57BL/6J mice Jackson Laboratory 000664
Centrifuge
Condenser Olympus oil immersion, 1.4 N.A.
Cytokeratin 18 Abcam ab7797 Primary antibodies
Cytokeratin 18 Abcam ab24561 Primary antibodies
DC power supply TopWard 6302D Bias voltage is 64 V
Dichroic mount Thorlabs KM100CL Kinematic Mount for up to 1.3" (33 mm) Tall Rectangular Optics, Left Handed
Donkey anti-Chicken IgY (H+L) Jackson ImmunoResearch 703-005-155 Secondary antibodies for MARS conjugation
Donkey anti-Goat IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 705-005-147 Secondary antibodies for MARS conjugation
Donkey anti-Guinea Pig IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 706-005-148 Secondary antibodies for MARS conjugation
Donkey anti-Mouse IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 715-005-151 Secondary antibodies for MARS conjugation
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 711-005-152 Secondary antibodies for MARS conjugation
Donkey anti-Rat IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 712-005-153 Secondary antibodies for MARS conjugation
Donkey anti-Sheep IgG (H+L) Jackson ImmunoResearch 713-005-147 Secondary antibodies for MARS conjugation
DPBS Fisher Scientific 14-190-250
EpCAM Abcam ab71916 Primary antibodies
Ethanol Sigma Aldrich 443611
Fast-speed look-in amplifier Zurich Instruments HF2LI DC – 50 MHz
FFPE Kidney Sample USBiomax HuFPT072
Fibrillarin Abcam ab5821 Primary antibodies
Giantin Abcam ab24586 Primary antibodies
Glucagon Santa Cruz Biotechnology sc-514592 Primary antibodies
H2B Abcam ab1790 Primary antibodies
HeLa ATCC ATCC CCL-2
High O.D. bandpass filter Chroma Technology ET890/220m Filter the Stokes beam and transmit the pump beam
Hydrophobic pen Fisher Scientific NC1384846
Insulin ThermoFisher 701265 Primary antibodies
Integrated SRS laser system Applied Physics & Electronics, Inc. picoEMERALD picoEMERALD provides an output pulse train at 1,064 nm with 6-ps pulse width and 80-MHz repetition rate, which serves as the Stokes beam. The frequency doubled beam at 532 nm is used to synchronously seed a picosecond optical parametric oscillator (OPO) to produce a mode-locked pulse train with five~6 ps pulse width (the idler beam of the OPO is blocked with an interferometric filter). The output wavelength of the OPO is tunable from 720–950 nm, which serves as the pump beam. The intensity of the 1,064-nm Stokes beam is modulated sinusoidally by a built-in EOM at 8 MHz with a modulation depth of more than 90%. The pump beam is spatially overlapped with the Stokes beam by using a dichroic mirror inside picoEMERALD. The temporal overlap between pump and Stokes pulse trains is achieved with a built-in delay stage and optimized by the SRS signal of pure D2O at the microscope.
Inverted laser-scanning microscope Olympus FV1200MPE
Kinematic mirror mount Thorlabs POLARIS-K1-2AH 2 Low-Profile Hex Adjusters
Lectin from Triticum vulgaris (wheat) Sigma Aldrich L0636-5 mg
Long-pass dichroic beam splitter Semrock Di02-R980-25×36 980 nm laser BrightLine single-edge laser-flat dichroic beamsplitter
MAP2 BioLegend 801810 Primary antibodies
Microscopy imaging software Olympus FluoView
NanoQuant Plate Tecan For absorbance-based, small volume analyses in a plate reader.
Normal donkey serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121
NucBlue Fixed Cell ReadyProbes Reagent (DAPI) Thermo Scientific R37606
Nunc 4-Well Dishes Fisher Scientific 12-566-300
Objective lens Olympus XLPlan N x25, 1.05-NA, MP, working distance = 2 mm
Paint brush
Periscope assembly Thorlabs RS99 includes the top and bottom units, Ø1" post, and clamping fork.
pH meter
Plate reader Tecan Infinite 200 PRO An easy-to-use multimode plate reader. Absorbance measurement capabilities over a spectral range of 230–1000 nm.
ProLong Gold antifade reagent Thermo Scientific P36930
PSD95 Invitrogen 51-6900 Primary antibodies
Sephadex G-25 Medium GE Life Sciences 17-0033-01 gel filtration resin for desalting and buffer exchange
Shielded box with BNC connectors Pomona Electronics 2902 Aluminum Box With Cover, BNC Female/Female
Si photodiode Thorlabs FDS1010 350–1100 nm, 10 mm x 10 mm Active Area
Synapsin 2 ThermoFisher OSS00073G Primary antibodies
Tissue Path Superfrost Plus Gold Slides Fisher Scientific 22-035813 Adhesive slide to attract and chemically bond fresh or formalin-fixed tissue sections firmly to the slide surface (tiisue bindling glass slides)
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-500
Vibratome Leica VT1000
Vimentin Abcam ab8069 Primary antibodies
Xylenes Sigma Aldrich 214736

References

  1. Goltsev, Y., et al. Deep profiling of mouse splenic architecture with CODEX multiplexed imaging. Cell. 174 (4), 968-981 (2018).
  2. Taube, J. M., et al. The Society for Immunotherapy of Cancer statement on best practices for multiplex immunohistochemistry (IHC) and immunofluorescence (IF) staining and validation. Journal for Immunotherapy of Cancer. 8 (1), 000155 (2020).
  3. Lewis, S. M., et al. Spatial omics and multiplexed imaging to explore cancer biology. Nature Methods. 18 (9), 997-1012 (2021).
  4. Bodenmiller, B. Multiplexed epitope-based tissue imaging for discovery and healthcare applications. Cell Systems. 2 (4), 225-238 (2016).
  5. Hickey, J. W., et al. Spatial mapping of protein composition and tissue organization: a primer for multiplexed antibody-based imaging. Nature Methods. , (2021).
  6. Lin, J. -. R., et al. Highly multiplexed immunofluorescence imaging of human tissues and tumors using t-CyCIF and conventional optical microscopes. eLife. 7, 31657 (2018).
  7. Black, S., et al. CODEX multiplexed tissue imaging with DNA-conjugated antibodies. Nature Protocols. 16 (8), 3802-3835 (2021).
  8. Giesen, C., et al. Highly multiplexed imaging of tumor tissues with subcellular resolution by mass cytometry. Nature Methods. 11 (4), 417-422 (2014).
  9. Keren, L., et al. MIBI-TOF: A multiplexed imaging platform relates cellular phenotypes and tissue structure. Science Advances. 5 (10), 5851 (2019).
  10. Gerdes, M. J., et al. Highly multiplexed single-cell analysis of formalin-fixed, paraffin-embedded cancer tissue. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (29), 11982 (2013).
  11. Angelo, M., et al. Multiplexed ion beam imaging of human breast tumors. Nature Medicine. 20 (4), 436-442 (2014).
  12. Radtke, A. J., et al. IBEX: A versatile multiplex optical imaging approach for deep phenotyping and spatial analysis of cells in complex tissues. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (52), 33455 (2020).
  13. Wei, L., et al. Super-multiplex vibrational imaging. Nature. 544, 465 (2017).
  14. Wei, L., Min, W. Electronic preresonance stimulated Raman scattering microscopy. The Journal of Physical Chemistry Letters. 9 (15), 4294-4301 (2018).
  15. Shi, L., et al. Electronic resonant stimulated Raman scattering micro-spectroscopy. The Journal of Physical Chemistry B. 122 (39), 9218-9224 (2018).
  16. Fujioka, H., et al. Multicolor activatable Raman probes for simultaneous detection of plural enzyme activities. Journal of the American Chemical Society. 142 (49), 20701-20707 (2020).
  17. Shi, L., et al. Highly-multiplexed volumetric mapping with Raman dye imaging and tissue clearing. Nature Biotechnology. , (2021).
  18. Miao, Y., Qian, N., Shi, L., Hu, F., Min, W. 9-Cyanopyronin probe palette for super-multiplexed vibrational imaging. Nature Communications. 12 (1), 4518 (2021).
  19. Miao, Y., Shi, L., Hu, F., Min, W. Probe design for super-multiplexed vibrational imaging. Physical Biology. 16 (4), 041003 (2019).
  20. Qian, N., Min, W. Super-multiplexed vibrational probes: Being colorful makes a difference. Current Opinion in Chemical Biology. 67, 102115 (2022).
  21. Klimas, A., et al. Nanoscale imaging of biomolecules using molecule anchorable gel-enabled nanoscale in-situ fluorescence microscopy. Nature Portfolio. , (2021).
  22. Shi, L., et al. Super-resolution vibrational imaging using expansion stimulated Raman scattering microscopy. bioRxiv. , (2021).
  23. Benninger, R. K. P., Hodson, D. J. New understanding of β-cell heterogeneity and in situ islet function. Diabetes. 67 (4), 537 (2018).
  24. Hu, F., et al. Supermultiplexed optical imaging and barcoding with engineered polyynes. Nature Methods. 15 (3), 194-200 (2018).
  25. Hu, F., Shi, L., Min, W. Biological imaging of chemical bonds by stimulated Raman scattering microscopy. Nature Methods. 16 (9), 830-842 (2019).
  26. . Coherent Raman Scattering Microscope Available from: https://www.leica-microsystems.com/products/confocal-microscopes/p/leica-tcs-sp8-cars/ (2022)
check_url/kr/63547?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Shi, L., Wei, M., Min, W. Highly-Multiplexed Tissue Imaging with Raman Dyes. J. Vis. Exp. (182), e63547, doi:10.3791/63547 (2022).

View Video