Summary

Separazione automatica e raccolta di sostanze correlate al cancro da campioni clinici

Published: January 13, 2023
doi:

Summary

Questo documento descrive l’applicazione di apparecchiature automatizzate per separare e raccogliere in modo semplice ed efficiente sostanze, come il DNA privo di cellule e le cellule tumorali circolanti, dal sangue intero.

Abstract

Recentemente, le biopsie liquide sono state utilizzate per diagnosticare varie malattie, tra cui il cancro. I fluidi corporei contengono molte sostanze, tra cui cellule, proteine e acidi nucleici provenienti da tessuti normali, ma alcune di queste sostanze provengono anche dall’area malata. L’indagine e l’analisi di queste sostanze nei fluidi corporei svolgono un ruolo fondamentale nella diagnosi di varie malattie. Pertanto, è importante separare accuratamente le sostanze richieste e vengono sviluppate diverse tecniche da utilizzare a tale scopo.

Abbiamo sviluppato un tipo di dispositivo e piattaforma lab-on-a-disc chiamato CD-PRIME. Questo dispositivo è automatizzato e ha buoni risultati per la contaminazione del campione e la stabilità del campione. Inoltre, ha vantaggi di una buona resa di acquisizione, un breve tempo di funzionamento e un’elevata riproducibilità. Inoltre, a seconda del tipo di disco da montare, il plasma contenente DNA privo di cellule, cellule tumorali circolanti, cellule mononucleate del sangue periferico o buffy coat può essere separato. Pertanto, l’acquisizione di una varietà di materiali presenti nei fluidi corporei può essere effettuata per una varietà di applicazioni a valle, incluso lo studio dell’omica.

Introduction

La diagnosi precoce e accurata di varie malattie, incluso il cancro, è il fattore più importante nello stabilire una strategia di trattamento 1,2,3,4. In particolare, la diagnosi precoce del cancro è strettamente correlata all’aumento delle possibilità di sopravvivenza per il paziente 5,6,7,8. Recentemente, le biopsie liquide sono state sotto i riflettori per la diagnosi precoce del cancro. I tumori solidi subiscono angiogenesi e rilasciano varie sostanze nel sangue. In particolare, DNA circolanti (ctDNA), RNA circolanti (ctRNA), proteine, vescicole come esosomi e cellule tumorali circolanti (CTC) sono stati trovati nel sangue di pazienti oncologici 2,9. Sebbene ci siano differenze nella quantità di queste sostanze, sono costantemente osservate non solo nelle fasi iniziali ma anche nelle fasi successive 6,10. Tuttavia, queste differenze individuali sono molto elevate; ad esempio, la quantità di DNA privo di cellule (cfDNA) contenente ctDNA è inferiore a 1.000 ng e il numero di CTC è inferiore a 100 in 10 ml di sangue intero da pazienti oncologici11,12,13. Molti studi hanno caratterizzato il cancro utilizzando queste sostanze presenti in quantità minori (cioè cfDNA, ctDNA e CTC). Per ottenere risultati accurati, è importante separare accuratamente piccole quantità di sostanze con elevata purezza13,14. I metodi di centrifugazione convenzionali sono comunemente usati, ma sono difficili da gestire e hanno una bassa purezza a seconda dell’abilità dell’utente. Dalla scoperta dei CTC, sono state sviluppate diverse tecniche di separazione, come la centrifugazione o la separazione del grado di densità, l’immunobead e i metodi microfluidici. Diverse tecniche di contenimento sono state sviluppate dalla scoperta dei CTC. Tuttavia, queste tecniche sono spesso limitate quando è necessario isolare le cellule dai vari chip e membrane utilizzati per isolarle15. Inoltre, i metodi di etichettatura richiedono attrezzature come FACS e ci sono limiti al processo a valle a causa della contaminazione dell’etichettatura.

Recentemente, l’uso di biopsie liquide è aumentato e sono stati condotti vari studi per la diagnosi precoce del cancro. Sebbene questo metodo sia semplice, ci sono ancora difficoltà nell’analisi a valle, e vari studi stanno tentando di superare queste difficoltà16,17. Inoltre, molti siti, compresi gli ospedali, richiedono metodi automatizzati, riproducibili e ad alta purezza che siano convenienti da usare. Qui, abbiamo sviluppato un lab-on-a-disc per la separazione automatica delle sostanze dai campioni di sangue dopo una biopsia liquida. Questi dispositivi si basano sul principio della centrifugazione, della microfluidica e della cattura cellulare delle dimensioni dei pori. Esistono tre tipi di dischi: LBx-1 può acquisire plasma e buffy coat, mentre LBx-2 può acquisire plasma e PBMC da sangue intero con un volume inferiore a 10 ml; FAST-auto può anche acquisire CTC utilizzando una membrana rimovibile dal disco. È possibile utilizzare fino a quattro di ciascun disco in una sola esecuzione. Soprattutto, il vantaggio di questo dispositivo e metodo è che può ottenere una varietà di sostanze derivate dal cancro dallo stesso campione utilizzando una piccola quantità di sangue. Ciò significa che il sangue del paziente deve essere prelevato solo una volta. Inoltre, ha il vantaggio di escludere errori dovuti a differenze nel periodo di prelievo del sangue. Questa piattaforma è facile da usare e fornisce risultati accurati per biopsie liquide e applicazioni a valle. In questo protocollo, viene introdotto l’utilizzo del dispositivo e della cartuccia.

Protocol

Tutti i campioni di sangue intero sono stati ottenuti da pazienti affetti da cancro del polmone. La ricerca e l’analisi presso Clinomics sono condotte dal Cancer Genomics Research Institute e l’approvazione della ricerca IRB da parte del governo è guidata dal Comitato di revisione istituzionale dell’Asan Medical Center (IRB NO. 2021-0802) con il numero IRB registrato per la ricerca presso Clinomics. 1. Preparazione del campione Raccogliere 9 ml di sangue intero in u…

Representative Results

L’obiettivo di questa tecnica è quello di isolare facilmente e automaticamente le sostanze associate al cancro dal sangue intero. In particolare, chiunque può utilizzare questa tecnica in tutti i campi adatti di ricerca e analisi. La separazione simultanea e riproducibile di più sostanze in un singolo campione di sangue è significativa nelle biopsie liquide. I dischi LBx-1 e LBx-2 sono utilizzati per isolare il plasma e il buffy coat o PBMC dal sangue intero. La Figura 1 mostra i materia…

Discussion

La quantità e la concentrazione di cfDNA e CTC dipende dall’individuo, dallo stadio e dal tipo di cancro. Dipende anche dalle condizioni del paziente 2,4,5,10,20. In particolare, nelle fasi iniziali o precancerose del cancro, le concentrazioni di sostanze correlate al cancro sono molto basse, quindi c’è un’alta possibilità che non possa essere rilevato. Tut…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo manoscritto è stato sostenuto in parte dal Korea Medical Device Development Fund (KMDF, Grant No. RS-2020-KD000019) e dal Korea Health Industry Development Institute (KHIDI, Grant No. HI19C0521020020).

Materials

1% BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma-Aldrich A3059
1.5 mL Microcentrifuge Tube Axygen MCT-150-C-S
15 mL Conical Tube SPL 50015
4150 TapeStation System Agilent G2992AA Cell-free DNA Screen Tape (Agilent, 5067-5630), Cell-free DNA Sample Buffer (Agilent, 5067-5633)
Apostle MiniMax High Efficiency Cell-Free DNA Isolation Kit  Apostle A17622-250 5 mL X 50 preps version
BD Vacutainer blood collection tubes BD 367525 EDTA Blood Collection Tube (10 mL)
BioViewCCBS Clinomics BioView Clinomics-Customized Bioview System. Allegro Plus microscope-based customization equipment
CD45 Monoclonal Antibody (HI30), PE-Alexa Fluor 610 Invitrogen MHCD4522
FAST Auto cartridge Clinomics CLX-M3001
LBx-1 cartridge Clinomics CLX-M4101
LBx-2 cartridge Clinomics CLX-M4201
OPR-2000 instrument Clinomics CLX-I2001
Cover Glass Marienfeld Superior HSU-0101040
DynaMag 2 Magnet Stand Thermo Fisher Scientific 12321D
Ficoll Paque Solution GE healthcare 17-1440-03 density gradient solution
Filter Tip, 10 µL Axygen AX-TF-10 Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination.
Filter Tip, 200 µL Axygen AX-TF-200 Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination.
Filter Tip, 100 µL Axygen AX-TF-100 Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination.
Filter Tip, 1000 µL Axygen AX-TF-1000 Pipette tips with aerosol barriers are recommended to help prevent cross contamination.
FITC anti-human CD326 (EpCAM) Antibody BioLegend 324204
FITC Mouse Anti-Human Cytokeratin BD Biosciences 347653
Formaldehyde solution (35 wt. % in H2O) Sigma Aldrich 433284
Kimtech Science Wipers Yuhan-Kimberly 41117
Latex glove Microflex 63-754
Magnetic Bead Separation Rack V&P Scientific VP 772F2M-2
Manual Pipetting  (0.5-10 µL) Eppendorf 3120000020
Manual Pipetting  (2-20 µL) Eppendorf 3120000038
Manual Pipetting  (10-100 µL) Eppendorf 3120000046
Manual Pipetting  (20-200 µL) Eppendorf 3120000054
Manual Pipetting  (100-1000 µL) Eppendorf 3120000062
Mounting Medium With DAPI - Aqueous, Fluoroshield abcam ab104139
Normal Human IgG Control R&D Systems 1-001-A
OLYMPUS BX-UCB Olympus 9217316
Pan Cytokeratin Monoclonal Antibody (AE1/AE3), Alexa Fluor 488 Invitrogen 53-9003-82
PBS (Phosphate Buffered Saline Solution) Corning 21-040CVC
Portable Pipet Aid Drummond 4-000-201
Slide Glass Marienfeld Superior HSU-1000612
StainTray Staining box Simport M920
Sterile Serological Pipette (10 mL) SPL 91010
Triton X-100 solution Sigma Aldrich 93443
TWEEN 20 Sigma Aldrich P7949
Whole Blood Stored at 4-8 °C by collecting in EDTA or cfDNA stable tube : If the whole blood is insufficient in 9 mL, add PBS (phosphate buffered saline) as much as necessary.
X-Cite 120Q (Fluorescence Lamp Illuminator) Excelitas 010-00157

References

  1. Babayan, A., Pantel, K. Advances in liquid biopsy approaches for early detection and monitoring of cancer. Genome Medicine. 10 (1), 21 (2018).
  2. Crowley, E., Di Nicolantonio, F., Loupakis, F., Bardelli, A. Liquid biopsy: monitoring cancer-genetics in the blood. Nature Reviews Clinical Oncology. 10 (8), 472-484 (2013).
  3. Bardelli, A., Pantel, K. Liquid biopsies, what we do not know (yet). Cancer Cell. 31 (2), 172-179 (2017).
  4. Mattox, A. K., et al. Applications of liquid biopsies for cancer. Science Translational Medicine. 11 (507), (2019).
  5. Heitzer, E., Perakis, S., Geigl, J. B., Speicher, M. R. The potential of liquid biopsies for the early detection of cancer. NPJ Precision Oncology. 1 (1), 36 (2017).
  6. Scudellari, M. Myths that will not die. Nature. 582 (7582), 322-326 (2015).
  7. Prasad, V., Fojo, T., Brada, M. Precision oncology: origins, optimism, and potential. The Lancet Oncology. 17 (2), 81-86 (2016).
  8. Prasad, V. Perspective: The precision-oncology illusion. Nature. 537 (7619), 63 (2016).
  9. Siravegna, G., Marsoni, S., Siena, S., Bardelli, A. Integrating liquid biopsies into the management of cancer. Nature Reviews Clinical Oncology. 14 (9), 531-548 (2017).
  10. Bettegowda, C., et al. Detection of circulating tumor DNA in early-and late-stage human malignancies. Science Translational Medicine. 6 (224), 24 (2014).
  11. Udomruk, S., Orrapin, S., Pruksakorn, D., Chaiyawat, P. Size distribution of cell-free DNA in oncology. Critical Reviews in Oncology/Hematology. 166, 103455 (2021).
  12. Paterlini-Brechot, P., Benali, N. L. Circulating tumor cells (CTC) detection: clinical impact and future directions. Cancer Letters. 253 (2), 180-204 (2007).
  13. Loeian, M. S., et al. Liquid biopsy using the nanotube-CTC-chip: capture of invasive CTCs with high purity using preferential adherence in breast cancer patients. Lab on a Chip. 19 (11), 1899-1915 (2019).
  14. Rikkert, L. G., Van Der Pol, E., Van Leeuwen, T. G., Nieuwland, R., Coumans, F. A. W. Centrifugation affects the purity of liquid biopsy-based tumor biomarkers. Cytometry Part A. 93 (12), 1207-1212 (2018).
  15. Sharma, S., et al. Circulating tumor cell isolation, culture, and downstream molecular analysis. Biotechnology advances. 36 (4), 1063-1078 (2018).
  16. Bennett, C. W., Berchem, G., Kim, Y. J., El-Khoury, V. Cell-free DNA and next-generation sequencing in the service of personalized medicine for lung cancer. Oncotarget. 7 (43), 71013 (2016).
  17. Lowes, L. E., et al. Circulating tumor cells (CTC) and cell-free DNA (cfDNA) workshop 2016: scientific opportunities and logistics for cancer clinical trial incorporation. International Journal of Molecular Sciences. 17 (9), 1505 (2016).
  18. Bryzgunova, O. E., Konoshenko, M. Y., Laktionov, P. P. Concentration of cell-free DNA in different tumor types. Expert Review of Molecular Diagnostics. 21 (1), 63-75 (2021).
  19. Park, Y., et al. Circulating tumour cells as an indicator of early and systemic recurrence after surgical resection in pancreatic ductal adenocarcinoma. Scientific Reports. 11 (1), 1-12 (2021).
  20. Heidrich, I., Ačkar, L., Mossahebi Mohammadi, P., Pantel, K. Liquid biopsies: Potential and challenges. International Journal of Cancer. 148 (3), 528-545 (2021).
  21. Celec, P., Vlková, B., Lauková, L., Bábíčková, J., Boor, P. Cell-free DNA: the role in pathophysiology and as a biomarker in kidney diseases. Expert Reviews in Molecular Medicine. 20, 1 (2018).
  22. Thierry, A. R., et al. Origin and quantification of circulating DNA in mice with human colorectal cancer xenografts. Nucleic Acids Research. 38 (18), 6159-6175 (2010).
  23. Moreira, V. G., de la Cera Martínez, T., Gonzalez, E. G., Garcia, B. P., Menendez, F. V. A. Increase in and clearance of cell-free plasma DNA in hemodialysis quantified by real-time PCR. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine (CCLM). 44 (12), 1410-1415 (2006).
  24. Gauthier, V. J., Tyler, L. N., Mannik, M. Blood clearance kinetics and liver uptake of mononucleosomes in mice. Journal of Immunology. 156 (3), 1151-1156 (1996).
  25. Meng, S., et al. Circulating tumor cells in patients with breast cancer dormancy. Clinical Cancer Research. 10 (24), 8152-8162 (2004).
  26. Alix-Panabières, C., Pantel, K. Challenges in circulating tumour cell research. Nature Reviews Cancer. 14 (9), 623-631 (2014).
  27. Zhou, J., et al. Isolation of circulating tumor cells in non-small-cell-lung-cancer patients using a multi-flow microfluidic channel. Microsystems & Nanoengineering. 5 (1), 8 (2019).
  28. Sajay, B. N. G., et al. Towards an optimal and unbiased approach for tumor cell isolation. Biomedical Microdevices. 15 (4), 699-709 (2013).
  29. Bailey, P. C., Martin, S. S. Insights on CTC biology and clinical impact emerging from advances in capture technology. Cells. 8 (6), 553 (2019).
  30. Ahn, S. M., Simpson, R. J. Body fluid proteomics: Prospects for biomarker discovery. Proteomics-Clinical Applications. 1 (9), 1004-1015 (2007).
check_url/kr/64325?article_type=t

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Cite This Article
Bae, J., Jeong, J., Kim, B. C., Lee, S. Automatic Separation and Collection of Cancer-Related Substances from Clinical Samples. J. Vis. Exp. (191), e64325, doi:10.3791/64325 (2023).

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