Summary

Protocolo de ensaio de cisalhamento para a determinação de propriedades de material de célula única

Published: May 19, 2023
doi:

Summary

Este protocolo descreve a quantificação das propriedades mecânicas de linhagens celulares cancerosas e não cancerosas in vitro. Diferenças conservadas na mecânica de células cancerosas e normais podem atuar como um biomarcador que pode ter implicações no prognóstico e diagnóstico.

Abstract

A biomecânica irregular é uma marca da biologia do câncer sujeita a extenso estudo. As propriedades mecânicas de uma célula são semelhantes às de um material. A resistência de uma célula ao estresse e à tensão, seu tempo de relaxamento e sua elasticidade são propriedades que podem ser derivadas e comparadas a outros tipos de células. Quantificar as propriedades mecânicas de células cancerosas (malignas) versus normais (não malignas) permite que os pesquisadores descubram ainda mais os fundamentos biofísicos desta doença. Embora as propriedades mecânicas das células cancerosas sejam conhecidas por diferir consistentemente das propriedades mecânicas das células normais, um procedimento experimental padrão para deduzir essas propriedades das células em cultura está faltando.

Este trabalho descreve um procedimento para quantificar as propriedades mecânicas de células isoladas in vitro usando um ensaio de cisalhamento fluido. O princípio por trás deste ensaio envolve a aplicação de tensão de cisalhamento de fluido em uma única célula e o monitoramento óptico da deformação celular resultante ao longo do tempo. As propriedades mecânicas celulares são posteriormente caracterizadas usando a análise de correlação digital de imagem (DIC) e ajustando um modelo viscoelástico apropriado aos dados experimentais gerados a partir da análise DIC. De modo geral, o protocolo aqui delineado visa fornecer um método mais eficaz e direcionado para o diagnóstico de cânceres de difícil tratamento.

Introduction

O estudo das diferenças biofísicas entre células cancerosas e não cancerosas permite novas oportunidades diagnósticas e terapêuticas1. A compreensão de como as diferenças na biomecânica/mecanobiologia contribuem para a progressão tumoral e resistência ao tratamento revelará novos caminhos para a terapia-alvo e o diagnóstico precoce2.

Embora se saiba que as propriedades mecânicas das células cancerosas diferem das células normais (por exemplo, viscoelasticidade da membrana plasmática e do envelope nuclear)3,4,5, faltam métodos robustos e reprodutíveis para medir essas propriedades em células vivas6. O método de ensaio de cisalhamento é utilizado para quantificar as propriedades mecânicas de células, submetendo células isoladas à tensão de cisalhamento fluida e analisando suas respostas individuais e resistência à tensão aplicada 3,4,5,7,8,9. Embora vários métodos e técnicas tenham sido utilizados para caracterizar as propriedades mecânicas de células isoladas, estes tendem a afetar as propriedades do material celular por i) perfurar/danificar a membrana celular devido à profundidade de indentação, geometrias complexas da ponta ou enrijecimento do substrato associado à microscopia de força atômica (AFM)10,11, ii) induzir fotodano celular durante o aprisionamento óptico12, 13, ou iii) indução de estados complexos de estresse associados à aspiração por micropipetas14,15. Esses efeitos externos estão associados a incertezas significativas na acurácia das medidas de viscoelasticidade celular 6,16,17.

Para resolver essas limitações, o método de ensaio de cisalhamento descrito aqui fornece uma abordagem altamente controlável e simples para simular o fluxo fisiológico no corpo sem afetar as propriedades do material celular no processo. As tensões de cisalhamento de fluidos neste ensaio representam tensões mecânicas experimentadas pelas células do corpo, seja por fluidos dentro do interstício tumoral ou no sangue durante a circulação18,19,20. Além disso, esses estresses fluidos promovem vários comportamentos malignos nas células cancerosas, incluindo progressão, migração, metástase e morte celular 19,21,22,23, que variam entre células tumorigênicas e não tumorigênicas. Além disso, as características mecânicas alteradas das células cancerosas (isto é, muitas vezes são mais “moles” do que as células normais encontradas dentro do mesmo órgão) permitem que elas persistam em microambientes tumorais hostis, invadam tecidos normais circundantes e metastatizem para locais distantes24,25,26. Ao criar um ambiente pseudobiológico onde as células experimentam níveis fisiológicos de tensão de cisalhamento de fluidos, um processo que é fisiologicamente relevante e não destrutivo para a célula é alcançado. As respostas celulares a estas tensões de cisalhamento de fluidos aplicadas permitem caracterizar as propriedades mecânicas celulares.

Este trabalho fornece um protocolo de ensaio de cisalhamento para o estudo extensivo das propriedades mecânicas e comportamento de células cancerosas e não cancerosas sob estresse de cisalhamento aplicado. As células respondem às forças externas de forma elástica e viscosa, podendo, portanto, ser idealizadas como um material viscoelástico3. Esta técnica é categorizada em: (i) cultura celular de células isoladas dispersas, (ii) aplicação controlada de tensão de cisalhamento fluido, (iii) imagem in situ e observação do comportamento celular (incluindo resistência ao estresse e deformação), (iv) análise de deformação de células para determinar a extensão da deformação e (v) caracterização das propriedades viscoelásticas de células isoladas. Ao interrogar essas propriedades e comportamentos mecânicos, mecanobiologia celular complexa pode ser destilada para dados quantificáveis. Um protocolo delineando este método permite a catalogação e comparação entre vários tipos de células malignas e não malignas. A quantificação dessas diferenças tem o potencial de estabelecer biomarcadores diagnósticos e terapêuticos.

Protocol

1. Preparação para o ensaio de cisalhamento unicelular Cultura celularSemeando aproximadamente 50.000 células isoladas suspensas em uma placa de Petri de 35 mm x 10 mm contendo 2 mL de meio de cultura.NOTA: Vórtice as células suspensas antes da semeadura para quebrar os agregados celulares. Incubar as células a 37 °C e permitir entre 10 a 48 h para a ligação celular e formação completa de proteínas do citoesqueleto.NOTA: Considere a duração da ligação …

Representative Results

O protocolo de ensaio de cisalhamento acoplado à análise de deformação usando DIC e um modelo viscoelástico é bem sucedido em quantificar as propriedades mecânicas de uma única célula in vitro. Esse método foi testado em linhagens celulares humanas e murinas, incluindo células mamárias humanas normais (MCF-10A)3,4,9, células de câncer de mama triplo-negativas menos metastáticas (MDA-MB-468)3, células de câncer de mama triplo-negativas (MDA-MB-231)3, células de osteossarc…

Discussion

O método de ensaio de cisalhamento, que inclui a criação de um ambiente pseudomecanobiológico para simular a interação das células com o microambiente mecânico circundante e suas respostas a estresses mecânicos, produziu um catálogo de propriedades mecânicas celulares, cujos padrões mostram atipias físicas conservadas entre linhagens de células cancerosas3,4,5,7,8<sup c…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem aos pesquisadores anteriores do grupo Soboyejo do Instituto Politécnico de Worcester que foram pioneiros nesta técnica: Drs. Yifang Cao, Jingjie Hu e Vanessa Uzonwanne. Este trabalho foi apoiado pelo Instituto Nacional do Câncer (NIH/NCI K22 CA258410 a M.D.). As figuras foram criadas com BioRender.com.

Materials

CELL CULTURE
.25% Trypsin, 2.21 mM EDTA, 1x[-] sodium bicarbonate Corning 25-053-ci For cellular detachment from substrate in cell culture
15 mL centrifuge tubes Falcon by Corning 05-527-90
35 mm Petri dishes Corning 430165
50 mL centrifuge tubes Falcon by Corning 14-432-22
centrifuge any For sterile cell culture
Dulbecco's Modification of Eagle's Medium (DMEM) 1x Corning 10-013-cv Or any other media for culturing cells. DMEM was used for culturing U87 cells
gloves any For sterile cell culture
Heracell Vios 160i CO2 Incubator Thermo Scientific 51033770 For Incubation during cell culture
Hood any For sterile cell culture
micropipette any For sterile cell culture
micropipette tips any For sterile cell culture
Microscope Leica/any For sterile cell culture
Phosphate Buffered Saline without calcium and magnesium PBS, 1x Corning 21-040-CM
pipetman any For sterile cell culture
pipette tips any For sterile cell culture
Precision GP 10 liquid incubator Thermo Scientific TSGP02
T25 flask Corning 430639
T75 flask Corning 430641U
SHEAR ASSAY
100 mL beaker any For creating DMEM + methyl cellulose viscous shear media
DMEM Corning
Flow chamber + rubber gasket Glycotech 31-001 Circular Flow chamber Kit ( for 35 mm tissue culture dishes)
Hybrid Rheometer HR-2 Discovery Hybrid Rheometer For determination of shear fluid viscosity
magnetic stir bar any For creating DMEM + methyl cellulose viscous shear media
magnetic stir plate any For creating DMEM + methyl cellulose viscous shear media
methyl cellulose any To increase viscosity of DMEM in flow media
Syringe Pump KD Scientific Geminin 88 plus 788088 For programming fluid infusion and withdrawal
syringes, tubing, and connectors For shear apparatus setup
SOFTWARE
ABAQUS software Simulia
Digitial Image Correlation software LaVision, Germany DAVIS 10.1.2
Imaging software Leica/any microscope software
MATLAB MATLAB MATLAB_R2020B

References

  1. Sethi, S., Ali, S., Philip, P. A., Sarkar, F. H. Clinical advances in molecular biomarkers for cancer diagnosis and therapy. International Journal of Molecular Sciences. 14 (7), 14771-14784 (2013).
  2. Runel, G., Lopez-Ramirez, N., Chlasta, J., Masse, I. Biomechanical properties of cancer cells. Cells. 10 (4), 887 (2021).
  3. Hu, J., Zhou, Y., Obayemi, J. D., Du, J., Soboyejo, W. O. An investigation of the viscoelastic properties and the actin cytoskeletal structure of triple negative breast cancer cells. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials. 86, 1-13 (2018).
  4. Onwudiwe, K., et al. Investigation of creep properties and the cytoskeletal structures of non-tumorigenic breast cells and triple-negative breast cancer cells. Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 110 (5), 1004-1020 (2022).
  5. Ani, C. J., et al. A shear assay study of single normal/breast cancer cell deformation and detachment from poly-di-methyl-siloxane (PDMS) surfaces. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials. 91, 76-90 (2019).
  6. Suresh, S. Biomechanics and biophysics of cancer cells. Acta Biomaterialia. 3 (4), 413-438 (2007).
  7. Cao, Y., et al. Investigation of the viscoelasticity of human osteosarcoma cells using a shear assay method. Journal of Materials Research. 21 (8), 1922-1930 (2006).
  8. Cao, Y. On the measurement of human osteosarcoma cell elastic modulus using shear assay experiments. Journal of Materials Science. Materials in Medicine. 18 (1), 103-109 (2007).
  9. Onwudiwe, K., et al. Actin cytoskeletal structure and the statistical variations of the mechanical properties of non-tumorigenic breast and triple-negative breast cancer cells. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials. 119, 104505 (2021).
  10. Kirmizis, D., Logothetidis, S. Atomic force microscopy probing in the measurement of cell mechanics. International Journal of Nanomedicine. 5, 137-145 (2010).
  11. Haase, K., Pelling, A. E. Investigating cell mechanics with atomic force microscopy. Journal of the Royal Society. Interface. 12 (104), 20140970 (2015).
  12. Zhang, H., Liu, K. K. Optical tweezers for single cells. Journal of the Royal Society. Interface. 5 (24), 671-690 (2008).
  13. Peterman, E. J. G., Gittes, F., Schmidt, C. F. Laser-induced heating in optical traps. Biophysical Journal. 84, 1308-1316 (2003).
  14. Hochmuth, R. M. Micropipette aspiration of living cells. Journal of Biomechanics. 33 (1), 15-22 (2000).
  15. Evans, E., Yeung, A. Apparent viscosity and corticcal tension of blood granulocytes determined by micropipet aspiration. Biophysical Journal. 56 (1), 151-160 (1989).
  16. Van Vliet, K. J., Bao, G., Suresh, S. The biomechanics toolbox: experimental approaches for living cells and biomolecules. Acta Materialia. 51 (19), 5881-5905 (2003).
  17. Moeendarbary, E., Harris, A. R. Cell mechanics: principles, practices, and prospects. Wiley Interdisciplinary Reviews. Systems Biology and Medicine. 6 (5), 371-388 (2014).
  18. Choi, H. Y., et al. Hydrodynamic shear stress promotes epithelial-mesenchymal transition by downregulating ERK and GSK3beta activities. Breast Cancer Research. 21 (1), 6 (2019).
  19. Northcott, J. M., Dean, I. S., Mouw, J. K., Weaver, V. M. Feeling stress: The mechanics of cancer progression and aggression. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 6, 17 (2018).
  20. Onwudiwe, K., Najera, J., Siri, S., Datta, M. Do tumor mechanical stresses promote cancer immune escape. Cells. 11 (23), 3840 (2022).
  21. Heldin, C. H., Rubin, K., Pietras, K., Ostman, A. High interstitial fluid pressure – an obstacle in cancer therapy. Nature Reviews. Cancer. 4 (10), 806-813 (2004).
  22. Krog, B. L., Henry, M. D. Biomechanics of the circulating tumor cell microenvironment. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1092, 209-233 (2018).
  23. Moose, D. L., et al. Cancer cells resist mechanical destruction in circulation via RhoA/actomyosin-dependent mechano-adaptation. Cell Reports. 30 (11), 3864-3874 (2020).
  24. Mao, B. H., Nguyen Thi, K. M., Tang, M. J., Kamm, R. D., Tu, T. Y. The interface stiffness and topographic feature dictate interfacial invasiveness of cancer spheroids. Biofabrication. 15 (1), (2023).
  25. Kashani, A. S., Packirisamy, M. Cancer cells optimize elasticity for efficient migration. Royal Society Open Science. 7 (10), 200747 (2020).
  26. Riehl, B. D., Kim, E., Bouzid, T., Lim, J. Y. The role of microenvironmental cues and mechanical loading milieus in breast cancer cell progression and metastasis. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 608526 (2021).
check_url/kr/65333?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Holen, L. J., Onwudiwe, K., Najera, J., Zarodniuk, M., Obayemi, J. D., Soboyejo, W. O., Datta, M. Shear Assay Protocol for the Determination of Single-Cell Material Properties. J. Vis. Exp. (195), e65333, doi:10.3791/65333 (2023).

View Video