Summary

Abordagem simplificada de imagem intravital para monitoramento de longo prazo da dinâmica do tecido epitelial em um microscópio confocal invertido

Published: June 30, 2023
doi:

Summary

O protocolo apresenta uma nova ferramenta para simplificar a obtenção de imagens intravitais usando microscopia confocal invertida.

Abstract

A compreensão do comportamento celular in vivo normal e aberrante é necessária para desenvolver intervenções clínicas que impeçam o início e a progressão da doença. Portanto, é fundamental otimizar as abordagens de imagem que facilitem a observação da dinâmica celular in situ, onde a estrutura e a composição do tecido permanecem inalteradas. A epiderme é a barreira mais externa do corpo, bem como a fonte dos cânceres humanos mais prevalentes, ou seja, os carcinomas cutâneos de pele. A acessibilidade do tecido cutâneo apresenta uma oportunidade única para monitorar o comportamento das células epiteliais e dérmicas em animais intactos usando microscopia intravital não invasiva. No entanto, essa abordagem sofisticada de imagem tem sido realizada principalmente usando microscópios multifótons verticais, que representam uma barreira significativa de entrada para a maioria dos investigadores. Este estudo apresenta um microscópio impresso em 3D com design personalizado, inserido em estágio de microscópio adequado para uso com microscópios confocais invertidos, simplificando a imagem intravital a longo prazo da pele da orelha em camundongos transgênicos vivos. Acreditamos que esta invenção versátil, que pode ser personalizada para se ajustar à marca e ao modelo de microscópio invertido de escolha e adaptada para sistemas de órgãos adicionais de imagem, será inestimável para a maior comunidade de pesquisa científica, melhorando significativamente a acessibilidade da microscopia intravital. Esse avanço tecnológico é fundamental para reforçar nossa compreensão da dinâmica de células vivas em contextos normais e de doenças.

Introduction

A microscopia intravital é uma poderosa ferramenta que permite o monitoramento do comportamento celular em seus ambientes in vivo não perturbados. Este método único forneceu informações importantes sobre o funcionamento interno de sistemas orgânicos complexos de mamíferos, incluindo o pulmão1, cérebro2, fígado3, glândula mamária4, intestino5 e pele6. Além disso, essa abordagem tem revelado alterações comportamentais celulares durante o desenvolvimentotumoral7, cicatrização deferidas8,9, inflamação10 e outras diversas patologias in situ. Neste estudo, nos concentramos em melhorar a acessibilidade da microscopia intravital para obter imagens da dinâmica epitelial e estromal viva em pele intacta de camundongos. A compreensão do comportamento celular na pele de mamíferos é de grande importância clínica devido à notável capacidade regenerativa e tumorigênica deste tecido.

A imagem intravital em camundongos tem sido realizada principalmente usando microscópios multifótons verticais devido à sua capacidade de fornecer imagens de alta resolução em profundidades teciduais >100 μm11,12. No entanto, esses instrumentos carecem da versatilidade e acessibilidade mais geral dos microscópios confocais invertidos, que são mais fáceis de usar e econômicos, fornecem a capacidade de obter imagens de células cultivadas, não requerem escuridão completa durante a aquisição das imagens e geralmente são mais seguros, entre outras vantagens notáveis13,14. Neste trabalho, apresentamos uma nova ferramenta que melhora significativamente a acessibilidade de imagens intravitais, adaptando essa abordagem para microscópios confocais invertidos.

Aqui, apresentamos um design de inserção de estágio personalizado impresso em 3D que incorpora várias características importantes para facilitar imagens intravitais estáveis e de longo prazo da pele da orelha de camundongos em um microscópio confocal invertido (Figura 1, Figura 2, Figura 3, Figura 4 e Figura 5). Esses recursos especializados incluem um orifício objetivo deslocado que permite que o corpo inteiro de um mouse adulto fique totalmente plano durante a aquisição de imagens. Isso minimiza a interferência vibracional dos movimentos do corpo de camundongos nas imagens e elimina a necessidade de administrar cetamina e xilazina para atenuar a respiração, uma prática frequentemente associada a imagens intravitais6. Além disso, os suportes de canto na pastilha posicionam corretamente um cone nasal de isoflurano para se alinhar com a face do mouse, um clipe de orelha de metal imobiliza a orelha do mouse para um disco de deslizamento de capa personalizado e uma placa de calor de biofeedback de circuito fechado destacável opcional fica nivelada dentro da inserção para suportar a temperatura corporal do mouse durante longas sessões de imagem. O disco de deslizamento de capa personalizado, que fornece uma superfície plana essencial para a cabeça e a orelha do rato ficarem planas, foi gerado em uma oficina de máquinas removendo as paredes de um prato genérico de cultura celular contendo lamínula. O uso de uma lente de imersão em óleo de silicone de 40x (abertura numérica de 1,25 [N.A.], distância de trabalho de 0,3 mm) em conjunto com o disco de deslizamento de cobertura e inserção de estágio personalizada fornece imagens de alta resolução >50 μm de profundidade na derme da orelha.

Para testar a funcionalidade desta nova inserção de estágio de microscópio invertido, capturamos pilhas z abrangendo todas as camadas epiteliais epidérmicas ao longo de um curso de tempo de 3 h na orelha de um camundongo adulto vivo transgênico K14-H2B-mCherry15 (núcleos epiteliais nesta linhagem de camundongo contêm uma etiqueta fluorescente vermelha) (Figura 6A-A‘). Também capturamos pilhas-z abrangendo várias camadas de fibroblastos dentro da derme da pele durante um curso de tempo de 3 h na orelha de um Pdgfra-rtTA transgênico vivo16; Camundongos adultos pTRE-H2B-GFP17 (núcleos de fibroblastos nesta linhagem de camundongos contêm um rótulo fluorescente verde após indução de doxiciclina) (Figura 6B-D). Nossos dados de alta resolução demonstram estabilidade consistente pela falta de deriva nos planos x, y e z, comprovando a eficácia desta nova ferramenta de imagem intravital para uso em microscópios invertidos. É importante ressaltar que as dimensões dessa inserção de estágio impressa em 3D podem ser ajustadas, conforme descrito em Arquivo Suplementar 1, Arquivo Suplementar 2 e Arquivo Suplementar 3, para caber em qualquer microscópio invertido, e o posicionamento da abertura objetiva pode ser movido para locais alternativos dentro da pastilha para melhor se adequar à imagem de um determinado tecido e/ou modelo animal de interesse. Esta invenção pode, assim, capacitar laboratórios individuais, ou investigadores com acesso confocal de instalações centrais, para adaptar esta ferramenta para suas necessidades únicas de imagem intravital, simplificando assim a avaliação de biologia celular in vivo diversa.

Protocol

Esta pesquisa foi realizada em conformidade com as diretrizes de cuidados e uso de animais da Emory University e Atlanta Veterans Affairs Medical Center e foi aprovada pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC). 1. Instalação da inserção de imagem ao vivo no estágio do microscópio invertido Construa a inserção usando arquivos .stl (Arquivo Suplementar 1, Arquivo Suplementar 2 e Arquivo Suplementar 3) espe…

Representative Results

A montagem adequada da inserção de imagem ao vivo em um microscópio confocal invertido e a orientação apropriada de um camundongo transgênico sobre a inserção são validadas pela aquisição de pilhas z de tecido auditivo vivo marcado fluorescentemente ao longo de um curso de tempo ≥1 h com evidência mínima de deriva nos eixos x, y e z. As imagens devem ser capturadas em intervalos consistentes (o tempo de intervalo dependerá da questão biológica, da força do sinal de fluorescência, etc.) para que a din?…

Discussion

Neste estudo, apresentamos uma nova ferramenta que facilita imagens intravitais estáveis e de longo prazo de epitélios intactos da pele de camundongos em microscópios confocais invertidos. Esta invenção é feita de PLA, que é o material mais comum e barato imprimível em 3D; todos os custos internos de impressão 3D para esta inserção totalizam < $5. As duas peças de inserção separadas (Figura 1, Arquivo Suplementar 1 e Arquivo Suplementar 2) pode…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a Valentina Greco pelos ratos K14-mCherry-H2B. Somos gratos à Oficina de Máquinas do Departamento de Física da Universidade de Emory por gerar os discos de vidro de cobertura. Este trabalho foi financiado pelo Career Development Award #IK2 BX005370 do US Department of Veterans Affairs BLRD Service para LS, NIH Awards RF1-AG079269 e R56-AG072473 para MJMR, e I3 Emory SOM/GT Computational and Data Analysis Award para MJMR.

Materials

3D Printer Qudi Tech i-Fast 3D prints using PLA material
40x 1.25NA silicone objective lens Nikon
AxR Laser Scanning Confocal Microscope Nikon
Cotton Tipped Swab VWR 76337-046 Cream/ointment application
Doxycycline hyclate Sigma-Aldrich D9891 Induces GFP labeling of fibroblast nuclei in Pdgfra-rtTA; pTRE-H2B-GFP mice
Flathead Screwdriver (2.5 mm) Affiix insert to microscope stage
Flathead Screws x 4 (#6-32) Nikon Screw insert into microscope stage
Glass Bottom Culture Dish chemglass Life Sciences CLS-1811-002 Modified by removing walls of dish for use as coverslip disk compatible with live insert; 35 mm wide disk contains 20 mm wide glass coverslip; dish walls were removed by machine shop
Heat Plate controller Physitemp TCAT-2LV Animal Temperature Controller – Low Voltage; anal prob attachment for mouse body temperature monitoring
Hex Wrench (1.5 mm) For M3 setscrew adjustments
Hex Wrench (2.5 mm) Adjust tension on metal ear clip
Intravital Imaging Insert
Isoflurane Med-Vet International HPA030782-100uL Mouse anesthesia
Labeling Tape (or Scotch Tape) VWR 10127-458 Alternative to metal ear clip to immobilize ear to coverslip
Metal fastener used as ear clip
Mouse: C57BL/6-Pdgfraem1(rtTA)Xsun/J The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:034459 Fibrroblast-specific promoter driving doxycycline-inducible rtTA expression
Mouse: K14-H2BPAmCherry Courtesy of Dr. Valentina Greco at Yale University Labels epidermal epithelial cell nuclei with mCherry; referred to in text as "K14-H2B-mCherry"
Mouse: pTRE-H2B-GFP: STOCK
Tg(tetO-HIST1H2BJ/GFP)47Efu/J
The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:005104  Labels fibroblast nuclei with GFP when combined with Pdgfra-rtTA and induced with doxycycline
Multipurpose Sealing Wrap Glad Enhance mouse warmth
Optixcare VWR MSPP-078932779 Eye lubricant
Set screws x 3 (M3; 6 mm) Thorlabs SS3M6 Attachment for heatplate module
Silicone Immersion Oil Applied to 40x silicone objective
Small Animal Heating Plate Physitemp HP-4M Provides heat to animal
Somnoflow Low-Flow Electronic Vaporizer Kent Scientific SF-01 Mouse anesthesia
Vacuum Grease Flinn Scientific AP1095 Seals coverslip disk to insert
Veet hair removal 
Water circulating heat pad Stryker Medical TP700 for mouse revival post-imaging

References

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Hamersky IV, M., Tekale, K., Winfree, L. M., Rowan, M. J. M., Seldin, L. Streamlined Intravital Imaging Approach for Long-Term Monitoring of Epithelial Tissue Dynamics on an Inverted Confocal Microscope. J. Vis. Exp. (196), e65529, doi:10.3791/65529 (2023).

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