Summary

Strømlinet intravital billeddannelsesmetode til langsigtet overvågning af epitelvævsdynamik på et inverteret konfokalmikroskop

Published: June 30, 2023
doi:

Summary

Protokollen præsenterer et nyt værktøj til at forenkle intravital billeddannelse ved hjælp af omvendt konfokal mikroskopi.

Abstract

Forståelse af normal og afvigende in vivo-celleadfærd er nødvendig for at udvikle kliniske interventioner for at modvirke sygdomsinitiering og progression. Det er derfor afgørende at optimere billeddannelsesmetoder, der letter observationen af celledynamik in situ, hvor vævsstruktur og sammensætning forbliver uforstyrret. Den epidermis er kroppens yderste barriere, samt kilden til de mest udbredte menneskelige kræftformer, nemlig kutane hud carcinomer. Tilgængeligheden af hudvæv giver en unik mulighed for at overvåge epitel- og dermalcelleadfærd hos intakte dyr ved hjælp af ikke-invasiv intravital mikroskopi. Ikke desto mindre er denne sofistikerede billeddannelsesmetode primært opnået ved hjælp af opretstående multifotonmikroskoper, som udgør en betydelig adgangsbarriere for de fleste efterforskere. Denne undersøgelse præsenterer en specialdesignet, 3D-printet mikroskopindsats, der er egnet til brug med inverterede konfokale mikroskoper, hvilket strømliner den langsigtede intravitale billeddannelse af ørehud hos levende transgene mus. Vi mener, at denne alsidige opfindelse, som kan tilpasses til at passe til det omvendte mikroskopmærke og den valgte model og tilpasses til at afbilde yderligere organsystemer, vil vise sig uvurderlig for det større videnskabelige forskningssamfund ved væsentligt at forbedre tilgængeligheden af intravital mikroskopi. Dette teknologiske fremskridt er afgørende for at styrke vores forståelse af levende celledynamik i normale og sygdomssammenhænge.

Introduction

Intravital mikroskopi er et kraftfuldt værktøj, der tillader overvågning af celleadfærd i deres uforstyrrede in vivo-miljøer. Denne unikke metode har givet vigtig indsigt i de indre funktioner i komplekse pattedyrs organsystemer, herunder lunge1, hjerne2, lever3, brystkirtel4, tarm5 og hud6. Desuden har denne tilgang afsløret celleadfærdsændringer under tumorudvikling7, sårheling8,9, betændelse10 og andre forskellige patologier in situ. I denne undersøgelse fokuserer vi på at forbedre tilgængeligheden af intravital mikroskopi til billede af levende epitel- og stromaldynamik i intakt musehud. Forståelse af celleadfærd i pattedyrs hud er af høj klinisk betydning på grund af den bemærkelsesværdige regenerative og tumorigene kapacitet af dette væv.

Intravital billeddannelse i mus er primært blevet udført ved hjælp af opretstående multifotonmikroskoper på grund af deres evne til at give billeddannelse i høj opløsning ved vævsdybder >100 μm11,12. Ikke desto mindre mangler disse instrumenter arbejdshestens alsidighed og mere generelle tilgængelighed af inverterede konfokale mikroskoper, som er mere brugervenlige og omkostningseffektive, giver mulighed for at afbilde dyrkede celler, ikke kræver fuldstændig mørke under billedoptagelse og generelt er sikrere, blandt andre bemærkelsesværdige fordele13,14. I denne undersøgelse præsenterer vi et nyt værktøj, der signifikant forbedrer intravital billeddannelse tilgængelighed ved at tilpasse denne tilgang til inverterede konfokale mikroskoper.

Her præsenterer vi et 3D-printet brugerdefineret sceneindsatsdesign, der indeholder flere nøglefunktioner for at lette stabil, langsigtet intravital billeddannelse af museørehud på et omvendt konfokalmikroskop (figur 1, figur 2, figur 3, figur 4 og figur 5). Disse specialiserede funktioner omfatter et forskudt objektivt hul, der gør det muligt for hele kroppen af en voksen mus at ligge helt fladt under billeddannelse. Dette minimerer vibrationsinterferensen af musekroppens bevægelser ved billeddannelse og eliminerer behovet for at administrere ketamin og xylazin for at dæmpe vejrtrækningen, en praksis, der ofte kombineres med intravital billeddannelse6. Derudover placerer hjørnebeslag på indsatsen korrekt en isofluran næsekegle for at justere med musens overflade, en metaløreclips immobiliserer museøret til en specialbygget coverslip-disk, og en valgfri aftagelig lukket sløjfe biofeedback-varmeplade ligger flush inde i indsatsen for at understøtte musens kropstemperatur under lange billedbehandlingssessioner. Den brugerdefinerede coverslip-disk, som giver en flad overflade, der er afgørende for, at musens hoved og øre kan ligge fladt, blev genereret i et maskinværksted ved at fjerne væggene i en generisk coverslip-holdig cellekulturskål. Brugen af et 40x silikoneolienedsænkningsobjektiv (1,25 numerisk blænde [NA], 0,3 mm arbejdsafstand) sammen med coverslip-disken og brugerdefineret sceneindsats giver billeder i høj opløsning >50 μm dybt ind i øredermis.

For at teste funktionaliteten af denne nye inverterede mikroskopindsats, fangede vi z-stakke, der spænder over alle epidermale epitellag over et 3 timers tidsforløb i øret på en levende transgen K14-H2B-mCherry15 voksen mus (epitelkerner i denne muselinje indeholder en rød fluorescerende etiket) (figur 6A-A ). Vi fangede også z-stakke, der spænder over flere fibroblastlag i huddermis over et 3 timers tidsforløb i øret på en levende transgen Pdgfra-rtTA16; pTRE-H2B-GFP17 voksen mus (fibroblastkerner i denne muselinje indeholder en grøn fluorescerende etiket efter doxycyclininduktion) (figur 6B-D). Vores data i høj opløsning viser konstant stabilitet ved manglende drift i x-, y- og z-planerne, hvilket beviser effektiviteten af dette nye intravitale billeddannelsesværktøj til brug på inverterede mikroskoper. Det er vigtigt, at dimensionerne på denne 3D-printede trinindsats kan justeres, som beskrevet i Supplementary File 1, Supplementary File 2 og Supplementary File 3, så de passer til ethvert omvendt mikroskop, og placeringen af objektivåbningen kan flyttes til alternative steder i indsatsen for bedre at passe til billeddannelse af et bestemt væv og / eller dyremodel af interesse. Denne opfindelse kan således give individuelle laboratorier eller efterforskere med kernefacilitetskonfokal adgang mulighed for at tilpasse dette værktøj til deres unikke intravitale billeddannelsesbehov og derved strømline evalueringen af forskelligartet in vivo-cellebiologi.

Protocol

Denne forskning blev udført i overensstemmelse med Emory University og Atlanta Veterans Affairs Medical Center retningslinjer for dyrepleje og brug og er blevet godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). 1. Installation af live imaging insertet på det inverterede mikroskop trin Konstruer indsatsen ved hjælp af .stl-filer (supplerende fil 1, supplerende fil 2 og supplerende fil 3) med angivelse af 3D-dimensioner og design (se …

Representative Results

Korrekt samling af levende billedindsatsen på et omvendt konfokalmikroskop og passende orientering af en transgen mus oven på indsatsen valideres ved at erhverve z-stakke af fluorescerende mærket, levende ørevæv over et tidsforløb ≥1 time med minimal tegn på drift i x-, y- og z-akserne. Billeder skal tages med ensartede intervaller (intervaltid afhænger af det biologiske spørgsmål, styrken af fluorescenssignalet osv.), Så celledynamik og billeddrift kan spores over tid. Gennem hele tidsforløbet afslører ov…

Discussion

I denne undersøgelse præsenterer vi et nyt værktøj, der letter stabil, langsigtet intravital billeddannelse af intakt musehudepitel på inverterede konfokale mikroskoper. Denne opfindelse er lavet af PLA, som er det mest almindelige og billige 3D-printbare materiale; alle interne 3D-printomkostninger for dette skær beløber sig til < $ 5. De to separate skærstykker (figur 1, supplerende fil 1 og supplerende fil 2) kan let samles ved hjælp af sætskrue…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Valentina Greco for K14-mCherry-H2B-musene. Vi er taknemmelige for Emory University Physics Department Machine Shop for at generere glasdækselskiverne. Dette arbejde blev finansieret af Career Development Award #IK2 BX005370 fra US Department of Veterans Affairs BLRD Service til LS, NIH Awards RF1-AG079269 og R56-AG072473 til MJMR og I3 Emory SOM/GT Computational and Data Analysis Award til MJMR.

Materials

3D Printer Qudi Tech i-Fast 3D prints using PLA material
40x 1.25NA silicone objective lens Nikon
AxR Laser Scanning Confocal Microscope Nikon
Cotton Tipped Swab VWR 76337-046 Cream/ointment application
Doxycycline hyclate Sigma-Aldrich D9891 Induces GFP labeling of fibroblast nuclei in Pdgfra-rtTA; pTRE-H2B-GFP mice
Flathead Screwdriver (2.5 mm) Affiix insert to microscope stage
Flathead Screws x 4 (#6-32) Nikon Screw insert into microscope stage
Glass Bottom Culture Dish chemglass Life Sciences CLS-1811-002 Modified by removing walls of dish for use as coverslip disk compatible with live insert; 35 mm wide disk contains 20 mm wide glass coverslip; dish walls were removed by machine shop
Heat Plate controller Physitemp TCAT-2LV Animal Temperature Controller – Low Voltage; anal prob attachment for mouse body temperature monitoring
Hex Wrench (1.5 mm) For M3 setscrew adjustments
Hex Wrench (2.5 mm) Adjust tension on metal ear clip
Intravital Imaging Insert
Isoflurane Med-Vet International HPA030782-100uL Mouse anesthesia
Labeling Tape (or Scotch Tape) VWR 10127-458 Alternative to metal ear clip to immobilize ear to coverslip
Metal fastener used as ear clip
Mouse: C57BL/6-Pdgfraem1(rtTA)Xsun/J The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:034459 Fibrroblast-specific promoter driving doxycycline-inducible rtTA expression
Mouse: K14-H2BPAmCherry Courtesy of Dr. Valentina Greco at Yale University Labels epidermal epithelial cell nuclei with mCherry; referred to in text as "K14-H2B-mCherry"
Mouse: pTRE-H2B-GFP: STOCK
Tg(tetO-HIST1H2BJ/GFP)47Efu/J
The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:005104  Labels fibroblast nuclei with GFP when combined with Pdgfra-rtTA and induced with doxycycline
Multipurpose Sealing Wrap Glad Enhance mouse warmth
Optixcare VWR MSPP-078932779 Eye lubricant
Set screws x 3 (M3; 6 mm) Thorlabs SS3M6 Attachment for heatplate module
Silicone Immersion Oil Applied to 40x silicone objective
Small Animal Heating Plate Physitemp HP-4M Provides heat to animal
Somnoflow Low-Flow Electronic Vaporizer Kent Scientific SF-01 Mouse anesthesia
Vacuum Grease Flinn Scientific AP1095 Seals coverslip disk to insert
Veet hair removal 
Water circulating heat pad Stryker Medical TP700 for mouse revival post-imaging

References

  1. Babes, L., Yipp, B. G., Senger, D. L. Intravital microscopy of the metastatic pulmonary environment. Methods in Molecular Biology. , 383-396 (2023).
  2. Nal Chen, ., et al. Neutrophils promote glioblastoma tumor cell migration after biopsy. Cells. 11 (14), 2196 (2022).
  3. Courson, J. A., Langlois, K. W., Lam, F. W. Intravital microscopy to study platelet-leukocyte-endothelial interactions in the mouse liver. Journal of Visualized Experiments. 188 (188), (2022).
  4. Rios, A. C., van Rheenen, J., Scheele, C. L. G. J. Multidimensional imaging of breast cancer. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 13 (5), (2022).
  5. Fischer, M., Edelblum, K. L. Intravital microscopy to visualize murine small intestinal intraepithelial lymphocyte migration. Current Protocols. 2 (8), (2022).
  6. Pineda, C. M., et al. Intravital imaging of hair follicle regeneration in the mouse. Nature Protocols. 10 (7), 1116-1130 (2015).
  7. Entenberg, D., Oktay, M. H., Condeelis, J. S. Intravital imaging to study cancer progression and metastasis. Nature Reviews. Cancer. 23 (1), 25-42 (2023).
  8. Turk, M., Biernaskie, J., Mahoney, D. J., Jenne, C. N. Intravital microscopy techniques to image wound healing in mouse skin. Methods in Molecular Biology. , 165-180 (2022).
  9. Pal Arndt, ., et al. A quantitative 3D intravital look at the juxtaglomerular renin-cell-niche reveals an individual intra/extraglomerular feedback system. Frontiers in Physiology. 13, 980787 (2022).
  10. Oal Yam, A., et al. Neutrophil conversion to a tumor-killing phenotype underpins effective microbial therapy. 암 연구학. 83 (8), 1315-1328 (2023).
  11. Huang, S., Rompolas, P. Two-photon microscopy for intracutaneous imaging of stem cell activity in mice. Experimental Dermatology. 26 (5), 379-383 (2017).
  12. Durr, N. J., Weisspfennig, C. T., Holfeld, B. A., Ben-Yakar, A. Maximum imaging depth of two-photon autofluorescence microscopy in epithelial tissues. Journal of Biomedical Optics. 16 (2), 026008 (2011).
  13. Tauer, U. Advantages and risks of multiphoton microscopy in physiology. Experimental Physiology. 87 (6), 709-714 (2002).
  14. Yoshitake, T., et al. Direct comparison between confocal and multiphoton microscopy for rapid histopathological evaluation of unfixed human breast tissue. Journal of Biomedical Optics. 21 (12), 126021 (2016).
  15. Mesa, K., Rompolas, P., Zito, G., et al. Niche-induced cell death and epithelial phagocytosis regulate hair follicle stem cell pool. Nature. 522, 94-97 (2015).
  16. Ral Li, ., et al. Pdgfra marks a cellular lineage with distinct contributions to myofibroblasts in lung maturation and injury response. eLife. 7, (2018).
  17. Tal Tumbar, ., et al. Defining the epithelial stem cell niche in skin. Science. 303 (5656), 359-363 (2004).
  18. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harbor Protocols. 2 (2), 5563 (2011).
  19. Sanderson, J. Multi-photon microscopy. Current Protocols. 3 (1), 634 (2023).

Play Video

Cite This Article
Hamersky IV, M., Tekale, K., Winfree, L. M., Rowan, M. J. M., Seldin, L. Streamlined Intravital Imaging Approach for Long-Term Monitoring of Epithelial Tissue Dynamics on an Inverted Confocal Microscope. J. Vis. Exp. (196), e65529, doi:10.3791/65529 (2023).

View Video