Summary
В данной работе мы представляем протокол оценки ноцицепции у мышей, инфицированных Trypanosoma evansi, с использованием электронного аппарата фон Фрея в качестве инструмента, измеряющего механические пороги задней лапы и внутренних органов.
Abstract
Патогенез инфекционных заболеваний до сих пор остается сложной областью для изучения. У домашних животных может наблюдаться течение нескольких клинических признаков, таких как аллодиния и боль. Тем не менее, знание их путей и правильное лечение требуют контролируемых экспериментов, многие из которых проводятся с использованием лабораторных животных. Измерение изменений механических порогов задней лапы и внутренних органов является полезным методом для наблюдения за изменениями в восприятии боли у грызунов. Реакция отмены может быть измерена сначала в базовых тестах, что обеспечивает лучший контроль экспериментальных групп. Последующие тесты могут быть проведены после индуцирования инфекции и добавления препаратов в протокол. Использование электронного аппарата фон Фрея в сочетании с использованием лицевой шкалы для наблюдения за изменениями, подобными боли, позволяет проводить простую, точную и последовательную оценку аллодинии и боли у мышей. Таким образом, эксперименты с использованием настоящей методики для лечения инфекции Trypanosoma evansi представляют собой полезный метод оценки аллодинии и боли у лабораторно инфицированных животных, который может быть применен к традиционному лечению домашних животных.
Introduction
Trypanosoma evansi является этиологическим агентом заболевания, называемого в Южной Америке "surra" или "mal-das-cadeiras" 1,2. Обычно поражает лошадей и крупный рогатый скот, а также дикую фауну, передаваясь через летучих мышей-гематофагов, табанид и укусы мух 1,3. Сурра является основным заболеванием домашних животных, которое может привести к летальному исходу при отсутствии правильного лечения, проявляя неспецифические клинические признаки, такие как анемия, потеря аппетита и веса, мышечная слабость и аборты, которые могут варьироваться в зависимости от хозяина и географического региона 2,4,5,6.
Выраженность аллодинии и боли у инфицированных животных в течение болезни все еще является новой темой 2,7. Стремление понять патогенез, стоящий за этими признаками, является важным шагом для улучшения и уточнения используемого в настоящее время лечения путем добавления эффективных обезболивающих препаратов к классическому трипаноцидному протоколу 5,6. В этом сценарии возможность репликации болезни с использованием мышиной модели представляет собой преимущество, поскольку мышей можно легко содержать в контролируемых условиях в лаборатории, и, следовательно, результаты более стабильны, чем в полевых экспериментах с использованием домашнего скота.
Механический порог обычно получают с помощью электронного аппарата фон Фрея (EvF) для оценки аллодинии в огромном числе экспериментов 2,8,9. Этот прибор используется для оценки чувствительности тканей к механической стимуляции: как только аппарат касается лапы животного, через прикрепленный к прибору наконечник объемом 20-200 мкл, фиксируется сила, с которой животное отводит лапу.
Грызуны обычно используются в качестве стандартных животных в этих экспериментах, и большинство результатов экстраполируются на другие виды, поскольку большинство исследованных болезней происходят от других видов, на которых было бы трудно провести контролируемое исследование. Кроме того, аллодиния и боль тесно связаны. Использование специальной шкалы лица для оценки боли у инфицированных мышей играет важную роль в качестве подтверждающего адъюванта для подтверждения наличия боли в течение инфекции T. evansi 2,10.
В этом протоколе мы демонстрируем новую модель для оценки аллодинии и боли у мышей, экспериментально инфицированных T. evansi, демонстрируя высокую корреляцию между переменными, тем самым оказываясь сильной моделью. Кроме того, для проведения всей процедуры требуется небольшое количество исследователей, что снижает вероятность вмешательства человека во время эксперимента. Это также позволяет исследователю воспроизвести целевое заболевание во время острого течения и добавить несколько различных лечебных препаратов в экспериментальный дизайн, тем самым получая стабильные результаты за короткий период.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все эксперименты проводились с использованием 10-недельных взрослых самок швейцарских мышей (35-55 г). Животных размещали в полисульфоновых клетках (3-5 животных в клетке) в помещении с контролируемой температурой (21 ± 1 °C), 12 ч светлым / 12 ч темным циклом, а также стандартным лабораторным кормом и водой ad libitum. Десять животных были распределены в каждую группу в каждом тесте, чтобы продемонстрировать последовательные эффекты медикаментозного лечения. Проект эксперимента был представлен и одобрен Этическим комитетом Государственного университета Санта-Катарины (CEUA) (номер протокола: 6019201123). Все эксперименты на животных проводились в соответствии с руководящими принципами ARRIVE.
1. Препарат и посев Trypanosoma evansi
ВНИМАНИЕ: Надевайте одноразовый лабораторный халат, перчатки, маску и средства защиты глаз при работе с инфицированными образцами крови, реагентами и другими химическими соединениями.
- Включите оборудование для водяной бани и отрегулируйте его при постоянной температуре 37 °C.
- Достаньте микроцентрифужную пробирку с образцом консервированной крови из ультраморозильной камеры (-80 °C). Поместите его на водяную баню до тех пор, пока кровь не оттает.
Примечание: Один и тот же изолят следует использовать для заражения всех мышей в каждой группе различных экспериментов, чтобы поддерживать равное количество кровеносных проходов. - Используйте фосфатно-солевой буфер (PBS, 0,1 М), содержащий 60% D-(+)-глюкозы (pH 7,4), для последовательного разведения (10:1 vv) до достижения 1 × 104 трипаносом на 0,1 мл. Определение количества клеток паразита путем ручного подсчета клеток с помощью камеры Нейбауэра на микроскопе со 100-кратным объективом2.
- Введите 0,1 мл разбавленного раствора крови (инфицированная группа) или тот же объем в 0,9% физиологический раствор (контрольная группа) внутрибрюшинно, используя иглу 26 G 1/2", соединенную с инсулиновым шприцем.
2. Настройка и эксплуатация электронного аппарата фон Фрея
ПРИМЕЧАНИЕ: Будьте внимательны к тому, как записываются полученные данные. Некоторые EvF-оборудование имеют специальные программы для передачи полученных данных с аппарата на другие электронные устройства, такие как компьютеры, планшеты или смартфоны.
- Включите прибор EvF. Перед началом эксперимента убедитесь, что оборудование хорошо заряжено, наблюдая за уровнем заряда батареи, отображаемым на экране оборудования, и зарядите его при необходимости.
- Подключите аппарат EvF к выбранному электронному устройству через Wi-Fi для передачи и сохранения полученных данных.
- Вставьте полипропиленовый наконечник объемом 10 мкл в конус аппарата EvF и установите индикацию на ноль (0,00 г), нажав кнопку с символом лапы.
- Обратите внимание на то, что после того, как оцененная ткань будет прощупана; Максимальное приложенное давление отображается на дисплее прибора EvF. После этого перенесите его на выбранное электронное устройство, нажав кнопку с символом антенны для безопасной записи.
- Сбросьте показания до нуля и приготовьтесь провести новое измерение, просто снова нажав кнопку с символом лапы.
3. Общие соображения по оценке механических пороговых значений
- Проводите все эксперименты в тихой комнате с контролируемой температурой 21 °C и 12-часовым световым / 12-часовым темным циклом, и обязательно соблюдайте циркадный цикл мыши, выполняя все оценки в одно и то же время дня2.
- Попросите одного и того же человека выполнить как базовую, так и экспериментальную оценку механических пороговых значений для уменьшения систематической ошибки и обеспечения согласованности измерений; Убедитесь, что эксперименты не ослеплены.
- Аккуратно поместите каждую мышь в отдельную камеру из полиметилметакрилата (ПММА) с перфорированной верхушкой, размещенную на сетчатой подставке 2,8 мм².
- Дайте мышам акклиматизироваться в течение 30 минут в камерах из ПММА перед оценкой как исходных, так и экспериментальных механических пороговых значений2.
- Установите сетчатый пол на удобной высоте (на устойчивой поверхности), чтобы животные были доступны со всех сторон. Убедитесь, что брюшко и все четыре лапы мышей легко доступны через сетчатые отверстия в полу.
- Накройте устойчивую поверхность, используемую для выделения камер, абсорбирующим материалом для поглощения или сбора мочеиспускания и дефекации. Убедитесь, что руки исследователя могут свободно перемещаться под камерами во время работы с аппаратом EvF.
4. Базовая оценка механического порога и реакции мыши на стимулы
- Для измерения живота разделите брюшную полость на три виртуальные части (черепную, среднюю и каудальную области). Выберите область черепа (анатомически содержащую печень) в качестве стандартной целевой ткани для оценки механического порога висцеральной аллодинии. Для измерения лапы выберите правую заднюю лапу для стандартизации.
- Проведите исходное измерение у каждой мыши за 48 часов до заражения. Для этого поместите мышей в содержащиеся камеры, подготовьте аппарат EvF и обеими руками медленно поднимайте зонд, чтобы стимулировать целевую ткань.
- Постепенно увеличивайте давление на ткани до тех пор, пока мышь не проявит ноцицептивное поведение. Для оценки правой задней лапы обратите внимание на втягивание лапы, облизывание лапы или прыжки с четырьмя лапами 2,8,9. Для висцеральной оценки обратите внимание на резкое втягивание живота, немедленное облизывание или расчесывание зондируемого участка или прыжки с четырьмя лапами 2,11.
- Сохраните полученное значение, перенеся данные на выбранное электронное устройство, содержащее конкретную программу EvF, или запиши их в зачетную книжку. Сбросьте дисплей на ноль и повторите процесс четыре раза, чтобы получить пять измерений8.
ПРИМЕЧАНИЕ: Рассмотрим только три похожих измерения для оценки среднего значения2 - Измеряйте механический порог присутствия мыши в соседней камере до тех пор, пока каждую мышь не прощупают пять раз и не получат среднее значение для каждого животного.
- Повторите исходные измерения через 24 ч и исключите мышей со средними значениями ниже 3,00 г или с разницей между базальными измерениями выше 2,00 г 2,8.
Примечание: Для каждой мыши в каждом эксперименте должна быть выбрана только одна целевая ткань, чтобы животные не привыкли к зондированию, так как количество оценок будет значительно выше за короткий период.
5. Экспериментальная оценка механического порога правой задней лапы и висцеральной аллодинии
- Оцените механический порог правой задней лапы или висцеральной аллодинии через 1 ч после инфекции для оценки на 0-й день.
- Повторяйте процедуру каждые 24 часа в течение 5 дней после заражения.
ПРИМЕЧАНИЕ: если необходимо провести лечение, выберите подходящий момент времени в рамках плана эксперимента. - Верните мышей в исходные клетки, чтобы животные не дрались друг с другом, с доступом к стандартному лабораторному корму и воде в неограниченном количестве после завершения измерений.
- Проведите тест на нормальность для проверки нормального распределения данных и дальнейшего соответствующего статистического анализа собранных данных.
6. Оценка шкалы мышиной гримасы
- Убедитесь, что каждая мышь хорошо видна, находясь в содержащей камере, и осмотрите каждую мышь перед экспериментом, чтобы убедиться в отсутствии повреждений на конечностях, животе или лице, а также в отсутствии изменений шерсти.
- Наблюдайте за областью орбиты мыши. Классифицируйте открытые глаза как отсутствие боли (0 баллов), в то время как очевидная боль может быть представлена, когда мышь закрывает глаза (2 балла).
- Понаблюдайте за носом мыши. Классифицируют нормальный нос как отсутствие боли, в то время как наличие выпуклости на переносице представляет собой очевидную боль.
- Понаблюдайте за щеками мыши. Классифицируйте нормальные щеки как отсутствие боли, в то время как наличие выпуклости на обеих щеках представляет собой явную боль.
- Понаблюдайте за положением ушей мыши. Классифицируют округлые уши как отсутствие боли, при этом уши поворачиваются наружу или назад, в сторону от лица, в заостренной форме, представляют явную боль. Пространство между ушами увеличивается с оценкой боли.
- Понаблюдайте за усами мыши. Классифицируйте усы с их естественным изгибом вниз как отсутствие боли, в то время как усы, которые либо оттянуты назад к щеке, либо вытянуты вперед, представляют собой явную боль.
- Поскольку врожденное поведение, такое как уход за собой, может мешать выражению лица, не рассматривайте их как поведение, связанное с болью. Подождите, пока мышь остановит это поведение перед каждой оценкой единицы действия.
- Проведите тест на нормальность для проверки нормального распределения данных и дальнейшего соответствующего статистического анализа собранных данных.
Примечание: В конце всех экспериментов мышей гуманно усыпляли с использованием кетамина (90 мг/кг) и ксилазина (7,5 мг/кг), вводимых внутрибрюшинно. После достижения подтвержденного плана глубокой анестезии им был подвергнут вывих шейки матки.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Снижение механического порога вследствие инфекции T. evansi по данным электронного аппарата фон Фрея как на правой задней лапе, так и на висцеральных тканях
Эксперимент проводился в течение 5 дней, согласно предыдущим данным, относящимся к имеющемуся образцу T. evansi 2. Инфицированные мыши начали демонстрировать значительную разницу в механическом пороге на правой задней лапе на 3-й день после заражения и оставались значительно ниже, чем в контрольной группе, в течение следующих 2 дней после заражения (рис. 1A) по сравнению с неинфицированными мышами. Аналогичные результаты для абдоминальной тактильной чувствительности показали висцеральную аллодинию у инфицированных мышей, начиная с 3-го дня после заражения и оставаясь значительно ниже, чем в контрольной группе, в течение следующих 2 дней после инфекции (рис. 1B).
Рисунок 1: Оценка аллодинии у мышей, экспериментально инфицированных Trypanosoma evansi. (А) аллодиния правой задней лапы и (В) висцеральная аллодиния. Данные выражены в виде среднего SD ± десяти животных для каждой опытной группы. Статистический анализ: t-критерий Стьюдента, один непарный анализ на каждую временную точку. Звездочками отмечены достоверные различия между экспериментальными группами, рассматривающими одну и ту же анализируемую временную точку (p < 0,05). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Индукция черт лица, связанных с болью у мышей, инфекцией T. evansi и численная интерпретация с помощью оценки боли по шкале гримасы мыши
Инфицированные мыши начали проявлять значительные признаки связанных с болью черт лица на 3-й день после заражения, показав средний балл 0,4 [0-1] в указанный момент времени. Та же тенденция наблюдалась и в ходе эксперимента, в котором инфицированная группа показала значимые различия по сравнению с контрольной группой, показав средние баллы 0,6 [0-1] и 1,3 [0-2] на 4 и 5 день после заражения соответственно. Контрольная группа не набрала баллов по шкале гримасы мыши, как ожидалось. Статистический анализ проводили с использованием t-критерия Стьюдента, одного непарного анализа на каждый момент времени, учитывая значение p < 0,05. Кроме того, коэффициент корреляции Пирсона (r) идентифицировал паттерны взаимодействия между оценкой боли по шкале гримасы мыши и аллодинией правой задней лапы или между той же шкалой и висцеральной аллодинией, значения которых составили -96,35% и -84,08% соответственно. Кроме того, коэффициенты детерминации (R2) для оценки боли по шкале гримасы мыши и аллодинии правой задней лапы или висцеральной аллодинии составили 0,9283 и 0,7070 соответственно.
Настоящее исследование согласуется с предыдущими данными, которые подтвердили наличие воспаления и боли на протяжении инфекции T. evansi 2,3,7,12. Более того, описанный метод обеспечивает точную методологию выявления и измерения аллодинии и боли у мышей. Кроме того, использование шкалы Mouse Grimace Scale для оценки боли у инфицированных мышей показало очень высокий отрицательный r (от 90 до 100%) по сравнению с результатами, выраженными при оценке аллодинии правой задней лапы, и высокий отрицательный r (от 70 до 89%) при оценке висцеральной аллодинии у соответствующих животных13. Аналогичным образом, использование оценки боли по шкале гримасы мыши у инфицированных мышей показало очень сильный R2 (от 0,90 до 1,00) по сравнению с результатами, выраженными при оценке аллодинии правой задней лапы, и сильный R2 (от 0,70 до 0,89) для оценки висцеральной аллодинии у тех же животных14.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Важнейшим этапом в экспериментах с участием инфицированных животных является контроль уровня паразитемии. Различные штаммы T. evansi могут вести себя у мышей по-разному, что приводит к переходу от острых к хроническим инфекциям 2,4,5,6. Кроме того, изменения в дозе инфекции могут снизить или увеличить время выживания мышей. Таким образом, рекомендуется получить кривую выживаемости до начала экспериментов, чтобы определить правильный период эксперимента и предотвратить разочарование в связи с неожиданными событиями смерти мышей15,16. Кроме того, эти данные могут определить гуманные конечные точки для эксперимента, если это применимо.
Кроме того, один и тот же изолят должен быть использован для заражения всех мышей в эксперименте, чтобы обеспечить равное количество проходов крови, как описано в разделе протокола. Таким же образом криоконсервированная или свежая инфицированная кровь может быть использована для заражения мышей, поскольку некоторые криоконсервированные образцы могут быть инактивированы после размораживания на водяной бане. Однако свежая инфицированная кровь может быстрее вызывать паразитемию и, следовательно, более раннюю смерть17,18.
Модификации в эксперименте, такие как добавление трипаноцидальных или обезболивающих препаратов, являются жизнеспособными. Новые группы означают больше животных, и важно помнить, что даже контрольные группы для выбранных препаратов должны быть подвергнуты базовым измерениям. По нашему опыту, примерно 20-25% мышей исключаются из эксперимента после второго исходного измерения, что согласуется с предыдущимиданными8. Это означает, что первоначальное количество животных должно быть выше, чем экспериментальное количество животных, что может быть проблемой, когда оценивается большее количество групп и, следовательно, оценивается большее количество мышей.
Фармакокинетика и фармакодинамика должны быть приняты во внимание для данной модели. Некоторым препаратам требуется длительное время, чтобы оказать свое фармакологическое действие, что может повлиять на экспериментальный дизайн модели, где мыши обычно умирают в среднем от 4 до 5 дней. Кроме того, если животные голодают для выбранного лечения, период акклиматизации может быть важным фактором, который следует учитывать, поскольку он повлияет как на динамику препарата, так и на график и процедуру эксперимента, как указано в разделе протокола.
Большим усовершенствованием данного метода является то, что один хорошо обученный исследователь может выполнять всю процедуру считывания EvF (как исходные, так и экспериментальные измерения), оставаясь при этом слепым к инфекции или лечению. Другой исследователь должен провести инфекцию в начале эксперимента. После процедуры заражения в этом нет необходимости, так как аппарат EvF имеет специальную программу измерения Wi-Fi фон Фрея, которая позволяет полноценно управлять оборудованием только одному человеку. Кроме того, этот метод быстрее, чем обычное оборудование Filament von Frey и проще в выполнении 8,19.
Тем не менее, усталость может быть осложнением, так как один и тот же исследователь должен выполнять все показания на животных, и черезнекоторое время может развиться истощение из-за повторяющихся движений. Принимая во внимание ожидаемую выживаемость мышей, инфицированных T. evansi, большое количество групп в экспериментальном дизайне не поощряется. По нашему опыту, в среднем 10 мышей за раз (в зависимости от плана эксперимента) могут быть измерены менее чем за 30 минут. Кроме того, для каждой мыши в каждом эксперименте должна быть выбрана только одна целевая ткань, чтобы животные не привыкли к зондированию, как объясняется в разделе протокола, что также снижает вероятность развития усталости у исследователя.
Кроме того, как для оценки EvF (измерения правой задней лапы и висцеральных пальцев), так и для оценки по шкале гримасы мыши требуются хорошо обученные исследователи. Перед проведением экспериментов исследователь должен провести длительное время за практикой. Чтобы правильно оценить изменения мимики у мышей, исследователь должен знать не только ожидаемые изменения, но и нормальное выражение лица обычной мыши и ее вариации нормальности иповедения. Кроме того, чтобы правильно оценить механический порог мышей с помощью аппарата EvF, исследователь должен повторить несколько базовых измерений до тех пор, пока реакция мыши на стимулы зонда не будет легко распознана и не будет достигнута консистенция 2,8.
Будущие применения протокола включают оценку аллодинии и боли, а также ее лечение на мышах, инфицированных T. evansi. Настоящая модель позволяет научным исследователям оценить связанный с болью патогенез заболевания, обычно встречающегося у домашнего скота, у мышей в контролируемой среде в лаборатории.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
У авторов нет конфликта интересов, о котором можно было бы заявить.
Acknowledgments
Авторы выражают особую благодарность Государственному университету Санта-Катарины за финансовую поддержку, Лаборатории фармакологии животных и космоса, а также Лаборатории биохимии гемопаразитов и векторов за криоконсервированный образец крови, инфицированный T. evansi , использованный в этих экспериментах.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 26 G 1/2" needle coupled to insulin syringe | TKL | 80288090100 | Used to infund solutions on laboratory animals |
| Accessories for von Frey analgesimeter | INSIGHT | EFF 303 | Containment box with support for digital analgesimeter assessment |
| D-(+)-Glucose | SIGMA-ALDRICH | G7021 | A monosaccharide which is the main source of energy in the form of ATP for living organisms |
| Digital analgesimeter | INSIGHT | von Frey Wi-Fi | The von Frey Wi-Fi is a portable device used to assess tissue sensitivity to mechanical stimuli |
| Gilson type 10 µL polypropylene tip | CRALPLAST | 18261 | Polypropylene to be used on eletronic von Frey apparatus, recommended for hind paw allodynia assessment |
| Laboratory water bath | BEING INSTRUMENT | BW-22P | Used to heat liquid and semi-solid substances contained in appropriate recipients to specific temperature |
| Phosphate buffered saline | SIGMA-ALDRICH | 806552 | A balanced salt solution buffer used for a variety of cell culture applications |
| Swiss mice (Mus musculus) from both gender | UFSC | Swiss Webster | Laboratory animals used for controlled experiments |
| Trypanosoma evansi cryiopreserved sample | UDESC | - | Sample used to infect all mice, ceded by the Hemoparasites and Vectors Biochemistry Laboratory |
| Universal type 10 µL polypropylene tip | CRALPLAST | 18171 | Polypropylene to be used on eletronic von Frey apparatus, recommended for visceral allodynia assessment |
References
- Desquesnes, M., et al. Trypanosoma evansi and surra: a review and perspectives on origin, history, distribution, taxonomy, morphology, hosts, and pathogenic effects. BioMed Research International. 2013, 194176 (2013).
- Cipriani, D. S., et al. Experimental Trypanosoma evansi infection induces pain along with oxidative stress, prevented by COX-2 inhibition. Experimental Parasitology. 247, 108477 (2023).
- Paim, F. C., et al. Cytokines in rats experimentally infected with Trypanosoma evansi. Experimental Parasitology. 128 (4), 365-370 (2011).
- Gillingwater, K., et al. In vivo investigations of selected diamidine compounds against Trypanosoma evansi using a mouse model. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 53 (12), 5074-5079 (2009).
- Dkhil, M. A., et al. Treatment of Trypanosoma evansi-infected mice with Eucalyptus camaldulensis led to a change in brain response and spleen immunomodulation. Frontiers in Microbiology. 13, 833520 (2022).
- Dkhil, M. A., et al. Murine liver response to Allium sativum treatment during infection induced-trypanosomiasis. Saudi Journal of Biological Sciences. 28 (6), 3270-3274 (2021).
- Martins de Moraes, C., et al. Infection by Trypanosoma evansi in horses from Brazil. Revista Portuguesa de Ciências Veterinárias. 102 (561-562), 159-163 (2007).
- Martinov, T., et al. Measuring changes in tactile sensitivity in the hind paw of mice using an electronic von Frey apparatus. Journal of Visualized Experiments. 82, e51212 (2013).
- Rodríguez-Angulo, H., et al. Role of TNF in sickness behavior and allodynia during the acute phase of Chagas' disease. Experimental Parasitology. 134 (4), 422-429 (2013).
- Langford, D. J., et al. Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse. Nature Methods. 7, 447-449 (2010).
- Eijkelkamp, N., et al. Increased visceral sensitivity to capsaicin after DSS-induced colitis in mice: spinal cord c-Fos expression and behavior. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 293 (4), 749-757 (2007).
- Mekata, H., et al. Expression of regulatory dendritic cell-related cytokines in cattle experimentally infected with Trypanosoma evansi. Journal of Veterinary Medical Science. 77 (8), 1017-1019 (2015).
- Mukaka, M. M. Statistics corner: a guide to appropriate use of correlation coefficient in medical research. Malawi Medical Journal. 24 (3), 69-71 (2012).
- Schober, P., et al. Correlation coefficients: appropriate use and interpretation. Anesthesia and Analgesia. 126 (5), 1763-1768 (2018).
- Kamidi, C. M., et al. Differential virulence of camel Trypanosoma evansi isolates in mice. Parasitology. 145 (9), 1235-1242 (2018).
- Mekata, H., et al. Isolation, cloning, and pathologic analysis of Trypanosoma evansi field isolates. Parasitology Research. 112, 1513-1521 (2013).
- Silva, A. S., et al. Trypanosoma evansi pathogenicity strain in rats inoculated with parasite in fresh and cryopreserved blood. Ciência Rural. 39 (6), 1842-1846 (2009).
- Silva, A. S., et al. Acetylcholinesterase activity and lipid peroxidation in the brain and spinal cord of rats infected with Trypanosoma evansi. Veterinary Parasitology. 175, 237-244 (2011).
- Diógenes, A. K. L., et al. Concurrent validity of electronic von Frey as an assessment tool for burn associated pain. Burns. 46 (6), 1328-1336 (2020).
- Kalueff, A. V., et al. Neurobiology of rodent self-grooming and its value for translational neuroscience. Nature Reviews Neuroscience. 17, 45-59 (2016).
