Summary

Isolering och Härledning av Mouse Embryonala Germinal celler

Published: October 22, 2009
doi:

Summary

Förmågan hos embryonala embryon cellerna differentieras till primordial embryon celler under tidiga utvecklingsskeden är ett perfekt sätt att hantera vår hypotes om cancer och infertilitet. Detta protokoll visar hur man kan isolera ursprungliga embryon celler från att utvecklas gonaderna 10,5-11,5 dagar mus inlägg coitum embryon.

Abstract

Förmågan hos embryonala embryon celler (t.ex.) att differentieras till ursprungliga embryon celler (PGCs) och senare i könsceller under tidiga utvecklingsstadier är en perfekt modell för att ta itu med vår hypotes om cancer och infertilitet. Detta protokoll visar hur man kan isolera ursprungliga embryon celler från att utvecklas gonaderna 10,5-11,5 dagar efter coitum (DPC) musembryon. Utveckla gonad åsar från mus embryon (C57BL6J) har tagit avstånd genom mekanisk störning med kollagenas, sedan beläggas med en mus embryo fibroblast feeder layer (MEF-CF1) som tidigare var mitotically inaktiveras med mitomycin C i närvaro av knockout medier och kompletteras med leukemi Inhibitor Factor (LIF), grundläggande Fibroblast Growth Factor (bFGF) och Stem Cell Factor (SCF). Med hjälp av dessa optimerade metoder för PCG identifiering, isolering, och etablering av odlingsbetingelser tillåter långsiktiga kulturer av EG celler för mer än 40 dagar. Den embryonala embryon cellinjer visade embryonala fenotyp och uttryck för gemensamma används markörer av pluripotenta staten. Isolering och härledning av embryon celler i kultur som ett verktyg för att förstå deras utveckling in vitro och ger möjlighet att följa kumulativa skador på genetisk och epigenetisk nivå efter exponering för oxidativ stress.

Protocol

Del 1: Gravida Mouse Laparotomy Använda halsdislokation, euthanize en gravid C57BL6J hanmöss vid 10,5-11,5 DPC. Rengör buken med antimikrobiell tvål, och sedan, raka den. Efter rakning, tvätta buken med en saltlösning. Sedan torka buken med en steril gasbinda. Täck med musen med ett nytt sterilt område. Gör en ventral snitt med hjälp av pincett och sax dissekering. Identifiera och ta bort hela livmodern från bukhålan. Musembryon kommer at…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka för den ovärderliga hjälp av Dr Neal Först och Kourtney Wilkinson för manuskriptet redigering, Dr Lucy Senter, Dr Brigit Willeford och Mike Basett för hjälp med utbildning och djuromsorg vid MSU ALAC ackrediterade musen anläggning, Dr Dwayne Wise för hans hjälp med mikroskopi och ta bilder, Cesar Monroy, Hannah Swoope och Bobbie Huddleston för deras hjälp med videoproduktion vid MSU. Denna forskning har finansierats av byrån för institutionell forskning och Institutionen för biologiska vetenskaper vid Mississippi State University.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
10.5 – 11.5 dpc pregnant C57BL6J female mouse crossed with the same background male mouse.        
Mouse Fibroblast MEF-CF1 ATCC     SCRC-1040  
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS)   Invitrogen 14190/086  
Collagenase /Dispase Solution   Roche 269638  
Gelatin   Sigma G1890  
Mitomycin C   Sigma M4287  
Trypsin EDTA   Invitrogen 25200-072  
MEF Medium: Dulbecco Medium Eagle Modified (D-MEM) GLUTAMAX High glucose   Invitrogen 10566024  
10% Fetal Bovine Serum   Invitrogen 16000/044  
1% of antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096  
Knockout Media: 80% knockout D-MEM   Invitrogen 10829/018  
20% Knockout serum Invitrogen Cat. No. 1028/028, 200mM L-glutamine Invitrogen     25130/081 with β-mercaptoethanol Sigma Catalogue Number: M7522
1X non essential amino acid solution   Invitrogen 11140/050  
1% antibiotic-antimycotic   Invitrogen 15420/096 supplemented with grow factor as 2500 U of Leukemia inhibitory factor (mLIF-ESGRO) Millipore Catalogue Number: ESG1106
40 ng/ml of Recombinant Murine Stem Cell Factor (SCF) ReproTech     250-03  
20 ng/ml of Basic Fibroblast Growth factor (bFGF)   Invitrogen 13256-029  
Corning center well culture dish 60mm   Fisher 07-200-79 1.5 ml eppendorf tube, and 15 ml falcon tubes
Forceps No. 14 and 15, scalpel 35 mm, dissection scissors, surgical fields, antimicrobial soap, saline solution 0.9 %, gauze, ice foam container, razor blade, scalpel 35 mm, fine forceps No. 4 and 5, fine teasing needle with handle, filter paper sheets, and pulled glass pipettes.

Equipment: dissecting stereomicroscope, light source Schott Fostec, inverted microscope, micropipette 10 and 200ul, centrifuge, bio safety Cabinet.

Referências

  1. DeFelici, M. . Cell Biology: A laboratory Handbook. 1, 73-85 (1998).
  2. Donovan, P. J., De Miguel, M. P. Turning Germ Cells into Stem Cells. Current Opinion in Genetics and Development. 13, 463-471 (2003).
  3. Labosky, P. A., Hogan, B. L. M., Sharp, P. T., Mason, I. Part 12: Mouse Primordial Germ Cells: isolation and in vitro culture. Molecular embryology: methods and protocols. 97, (1999).
  4. Mc Laren, A., Southee, D. Entry of Mouse Embryonic Germ Cells into Meiosis. Biologia do Desenvolvimento. 187, 107-113 (1997).
  5. Yoshimizu, T., Obinata, M., Matsui, Y. Stage-specific tissue and cell interactions play key roles in mouse germ cell specification. Development. 128, 481-490 (2001).
  6. Zhang, J., Hhvorostov, I., Teitell, M. From MEFs to Matrigel I: Passaging hESCs in the Presence of MEFs. J Vis Exp. , (2008).
check_url/pt/1635?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Moreno-Ortiz, H., Esteban-Perez, C., Badran, W., Kent-First, M. Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells. J. Vis. Exp. (32), e1635, doi:10.3791/1635 (2009).

View Video