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Artigo de método

Usando a luciferase Infecções bacterianas Imagem em camundongos

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DOI:

10.3791/2547

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18 de fevereiro de 2011

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Neste artigo

Resumo

Métodos de imagem de bioluminescência de infecções bacterianas em animais vivos são descritos. Patógenos são modificados para expressar luciferase permitindo que imagens de corpo inteiro óptico de infecções em animais vivos. Modelos animais podem ser infectados com patógenos luciferase expressar eo curso resultante de doença visualizadas em tempo real pela imagem de bioluminescência.

Resumo

Imagem é uma técnica valiosa que pode ser usado para monitorar processos biológicos. Em particular, a presença de células cancerosas, células-tronco, tipos específicos de célula imunológica, patógenos virais, parasitas e bactérias podem ser acompanhadas em tempo real dentro de animais vivos 1-2. Aplicação de imagem de bioluminescência para o estudo de patógenos tem vantagens em relação às estratégias convencionais para análise de infecções em modelos animais 3-4. Infecções podem ser visualizados dentro de animais individuais ao longo do tempo, sem a necessidade de eutanásia para determinar a localização ea quantidade do patógeno. Imageamento óptico permite o exame abrangente de todos os tecidos e órgãos, ao invés de amostragem de locais previamente conhecido por ser infectados. Além disso, a precisão da inoculação em tecidos específicos pode ser diretamente determinada antes do transporte de animais para a frente que foram inoculados sem sucesso durante todo o experimento. Variabilidade entre os animais podem ser controlados pela falta de imagens permite que cada animal a ser seguido individualmente. Imagem tem o potencial para reduzir significativamente o número de animais necessários por causa da capacidade de obter dados de numerosos pontos de tempo sem a necessidade de tecidos de amostra para determinar carga de patógenos 3-4.

Este protocolo descreve métodos para visualizar infecções em animais vivos usando imagens de bioluminescência de linhagens recombinantes de bactérias expressando luciferase. O besouro clique (CBRLuc) e luciferases firefly (FFluc) utilizam como substrato luciferina 5-6. A luz produzida por ambos os CBRluc FFluc e tem um comprimento de onda de 500 nm larga a 700 nm, tornando estes luciferases repórteres excelente para a imagem óptica em modelos animais de vida 7-9. Isso ocorre principalmente porque comprimentos de onda da luz é superior a 600 nm são necessárias para evitar a absorção pela hemoglobina e, assim, viajar através de tecidos de mamíferos, de forma eficiente. Luciferase é geneticamente introduzido na bactéria para produzir sinal de luz 10. Os ratos são pulmonar inoculada com bactérias bioluminescentes intratraqueal para permitir o monitoramento de infecções em tempo real. Após a injeção luciferina, as imagens são adquiridas usando o Sistema de Imagem IVIS. Durante a gravação, os ratos são anestesiados com isoflurano usando uma XGI-8 Gas Sistema Anethesia. As imagens podem ser analisados ​​para localizar e quantificar a fonte do sinal, que representa o local da infecção bacteriana (s) e número, respectivamente. Depois de imagem, a determinação de UFC é realizada em tecido homogeneizado para confirmar a presença de bactérias. Várias doses de bactérias são usadas para correlacionar número de bactérias com luminescência. Imagem pode ser aplicada ao estudo da patogenia e avaliação da eficácia dos compostos antibacterianos e vacinas.

Protocolo

1. Infecção pulmonar por entubação endotraqueal

  1. Pesar ratos e, opcionalmente, as marcas podem ser feitas nas orelhas para fácil identificação.
  2. Anestesiar os ratos com cetamina (100 mg por g de peso do mouse) e xilazina (10 mg por g de peso do rato) por inoculação intraperitoneal.
  3. Camundongos lugar em gaiolas até totalmente anestesiado. Aperte as pontas dos seus pés para verificar pedal reflexo. Ratos deve exibir reduzida ou nenhuma reação reflexa.
  4. Posicione o mouse sobre o suporte intubação deitado de costas.
  5. Fix um elástico para ficar intubação e depois colocá-lo sob os incisivos superiores do mouse. Use fita adesiv....

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Discussão

Apesar de seguir estes protocolos normalmente irá resultar em imagens de alta qualidade, é importante considerar algumas questões-chave a fim de obter dados precisos e consistentes a partir de estudos de imagem. Luminescência imagens devem ser adquiridas que têm contagens de 600 a 60000 para garantir que o sinal está acima do fundo ea câmera não está saturado. Se o sinal obtido é inferior a 600 as condições de exposição deve ser ajustado para aumentar a contagem. Se o sinal obtido é mais de 60.000 a câmera está saturado.......

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Divulgações

Os estudos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos estabelecidos pela Institutional Animal Care e do Comitê Uso de Texas A & M University.

Agradecimentos

Os autores agradecem os membros Cirillo laboratório pelas valiosas discussões e assistência ao longo deste estudo. Agradecemos ao Dr. Joshua Hill e do laboratório do Dr. James Samuel para a assistência durante as filmagens com o do presente protocolo. Este trabalho foi financiado por bolsa 48523 da Fundação Bill & Melinda Gates Foundation e AI47866 concessão do National Institutes of Health.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
IsófluranoVETONE501027
Ketamina Butler Animal Health Supply
Xilazina MP Biomedicals158307
LuciferinaGMTLUCK-100
Solução Fetal PlusVortech Pharmaceutical Ls, Ltd
Cateter (22G x 1”)Terumo Medical Corp.OX2225CA
Fio guia Hallowell EMC210A3491
Octócope com espéculo Hallowell EMC000A3748
Sistema Xenogen IVISCaliper Life Sciences
Sistema de anestesia a gás XGI-8Caliper Life Sciences
Software Living ImagingCaliper Life Sciences
Cones nasais transparentesCaliper Life Sciences
Divisor de difusor de luz Caliper Life Sciences

Referências

  1. Wilson, T., Hastings, J. W. Bioluminescence. Annu Rev Cell Dev Biol. 14, 197-230 (1998).
  2. Contag, C. H., Bachmann, M. H. Advances in in vivo bioluminescence imaging of gene expression. Annu Rev Biomed Eng. 4, 235-260 (2002).
  3. Hutchens, M., Luker, G. D.

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Reimpressões e permissões

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