Summary

Imunoprecipitação da Cromatina eficiente usando Limitando quantidades de biomassa

Published: May 01, 2013
doi:

Summary

Nós descrevemos um método robusto para cromatina imunoprecipitação utilizando células T primárias. O método baseia-se em métodos normais, mas utiliza um conjunto específico de condições e reagentes que melhoram a eficiência de uma quantidade limitada de células. Importante, é apresentada uma descrição detalhada da fase de análise de dados.

Abstract

Cromatina imunoprecipitação (CHIP) é um método amplamente utilizado para determinar as interações entre diferentes proteínas com o DNA na cromatina de células vivas. Exemplos incluem sequências específicas de DNA de ligação fatores de transcrição, histonas e seus diferentes estados de modificação, enzimas como RNA polimerases e fatores auxiliares e componentes de reparação do ADN. Apesar de sua onipresença, há uma falta de up-to-date, metodologias detalhadas para ambos banco preparação do material e para a análise precisa permitindo métricas quantitativas de interação. Devido a esta falta de informação, e também porque, como qualquer imunoprecipitação, as condições devem ser re-otimizado para novos conjuntos de condições experimentais, o ensaio chip é suscetível a resultados imprecisos ou mal quantitativa.

Nosso protocolo é em última análise, derivada do trabalho seminal no fator de transcrição: interações DNA 1,2, mas incorpora uma série de melhorias para sensibilizantesvidade e reprodutibilidade para os tipos de células de difícil obtenção. O protocolo foi utilizado com sucesso 3,4, ambos utilizando qPCR para quantificar o enriquecimento do ADN, ou uma variante usando semi-quantitativa do protocolo abaixo.

Esta análise quantitativa de material amplificado por PCR é realizada computacionalmente, e representa um factor limitante no ensaio. Controlos e outras considerações importantes incluem a utilização de um isotipo do anticorpo, bem como a avaliação de uma região do ADN genómico de controlo, tal como uma região intergénica não predito para ser ligado pela proteína sob estudo (ou antecipados não apresentam alterações ao abrigo as condições experimentais). Além disso, uma curva padrão de material de entrada para cada amostra de chip é usada para determinar os níveis absolutos de enriquecimento do material experimental. Uso de curvas padrão ajuda a levar em conta as diferenças entre conjuntos de primers, independentemente de como eles são projetados com cuidado, e também a eficiência diferemcias em toda a gama de concentrações de modelo para um único conjunto de primers. Nosso protocolo é diferente de outros que estão disponíveis 5-8 em que extensivamente cobrir a, fase posterior análise.

Protocol

1. Isolamento de mouse Esplenopatias Naïve células T CD4 Sacrificar o mouse em uma forma humana consistente com o uso do Comité (IACUC) protocolos institucionais Cuidados e Animal. Dissecar o baço e colocá-lo em uma placa de Petri contendo 10 ml de DMEM com 10% de FBS. Esmagar o baço usando fosco extremidades de duas lâminas de vidro para liberar os esplenócitos. Transferência da suspensão de células num tubo cónico de 15 ml. Recolher as células por centrifugação a 200 xg (~…

Representative Results

A cromatina imunoprecipitação (CHIP) protocolo apresentado aqui controles para as diferenças, se houver, na quantidade de DNA utilizado na PCR através da utilização de um par de primers que amplifica uma região do genoma não ligado, servindo, assim, como um "controle de carga". No exemplo mostrado na Figura 3, utilizou-se a região de codificação do gene de rato ACTB como uma região não acoplada para a proteína de interesse e o local de ligação ao factor de transcriçã…

Discussion

O protocolo acima fornece um método robusto de quantificar com precisão o enriquecimento do ADN a partir dos linfócitos primários usando chip. Uma das principais razões para a robustez deste protocolo é a inclusão da diversidade biológica repetições. O protocolo acima usa três repetições, o enriquecimento para os quais é calculado de forma independente. As saídas são então calculadas para fornecer um grau de enriquecimento e desvios padrão calculados para proporcionar uma medida de variabilidade. Para …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo NIH concede CA141009 e GM39067. Agradecemos E. Parnell e R. Yarrington para comentários sobre a parte escrita.

Materials

Name of the reagent Company Catalog number Comments
Formaldehyde Sigma F-8775 Store at RT
Phosphate Buffered Saline Hyclone SH30256.01 Store at 4 °C
Protease Inhibitor tablets Roche 04693116001 Store at 4 °C
Protein G magnetic beads Active Motif 101945 Store at 4 °C
RNase A (20 mg/ml) EMD Millipore 556746 Store at -20 °C
Proteinase K (20 mg/ml) Roche 03115879001 Dissolve in 50 mM Tris-HCl, 10 mM CaCl2, pH 8.0
Platinum Taq DNA Polymerase Invitrogen 10966-034 Store at -20 °C
SYBR Green I Invitrogen S7567 Store at -20 °C
1 M Glycine Store at RT
Cell lysis buffer (5 mM Pipes, pH 8.0; 85 mM KCl; 0.5% NP-40) Store at 4 °C
Nuclear lysis buffer (50 mM Tris, pH 8.1; 10 mM EDTA; 1% SDS) Store at RT
ChIP dilution buffer (0.01% SDS; 1.1% Triton X-100; 1.2 mM EDTA; 16.7 mM Tris pH 8.1; 190 mM NaCl) Store at 4 °C
Low salt wash buffer (0.1% SDS; 1% Triton X-100; 2 mM EDTA; 20 mM Tris pH 8.1; 150 mM NaCl) Store at 4 °C
High salt wash buffer (0.1% SDS; 1% Triton X-100; 2 mM EDTA; 20 mM Tris pH 8.1; 600 mM NaCl) Store at 4 °C
LiCl wash buffer (0.25 M LiCl; 1% NP-40; 1% Sodium Deoxycholate, 1 mM EDTA; 10 mM Tris pH 8.0) Store at 4 °C
TE buffer (10 mM Tris, pH 7.4, 1 mM EDTA) Store at 4 °C
Elution buffer (1% SDS; 0.1 M NaHCO3) Prepare fresh
5 M NaCl Store at RT
0.5 M EDTA Store at RT
1 M Tris-HCl, pH 6.5 Store at RT
Table of Specific Reagents
Clay Adams Brand Nutator Becton Dickinson Model: 421105
Magnetic Stand Promega Z5342
Qiaquick PCR Purification Kit Qiagen 28106
Masonix Sonicator 3000 QSonica Model: S3000
UV Spectrophotometer NanoDrop Technologies ND-1000
Heating Block VWR 13259-030
Rotator VWR 80085-692
Refrigerated bench top centrifuge Beckman Coulter Model: Allegra X-12R
Microcentrifuge Eppendorf 5415 D
Table of Equipment

Referências

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Citar este artigo
Tantin, D., Voth, W. P., Shakya, A. Efficient Chromatin Immunoprecipitation using Limiting Amounts of Biomass. J. Vis. Exp. (75), e50064, doi:10.3791/50064 (2013).

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