Summary

Поколению прав кардиомиоцитов: Дифференциация Протокол от Ф-свободной человеческой индуцированных плюрипотентных стволовых клеток

Published: June 28, 2013
doi:

Summary

Плюрипотентных стволовых клеток, или эмбриональных или индуцированных плюрипотентных стволовых (плюрипотентных), клетки представляют собой ценный источник человеческого дифференцированных клеток, в том числе кардиомиоциты. Здесь мы сосредоточимся на сердечную индукции клеток IPS, показывающий, как использовать их, чтобы получить функциональные человеческие кардиомиоциты через эмбриональные тельца-протоколу.

Abstract

Для того, чтобы расследовать события вождения развития сердца и определить молекулярные механизмы, приводящие к инфаркту заболеваний у людей, очень важно для создания первого человека функциональные кардиомиоциты (CMS). Использование этих клеток в лекарств и токсикологических исследований также было бы весьма полезным, позволяя новых фармакологических молекул для лечения нарушений сердечного быть подтверждено предварительно клинически на клетки человеческого происхождения. Из возможных источников КМ, индуцированных плюрипотентных стволовых (плюрипотентных) клетки являются одним из наиболее перспективных, так как они могут быть получены непосредственно из легкодоступных ткани пациента и имеют внутреннюю способность давать начало всем типам клеток тела 1. Некоторые методы были предложены для дифференциации плюрипотентных клеток в КМ, от классического эмбриональных телец (ЕВ) агрегирование подход к определенным химическим протоколы 2,3. В этой статье мы предлагаем ЭТ-протоколу и показать, как это метод может быть использована для эффективной генерации функциональных CM-подобные клетки из без фидерного слоя плюрипотентных клеток.

Introduction

Исторически сложилось, что исследование генетических и молекулярных механизмов вождения человеческого развития и болезни было основано на поколение генетически модифицированных животных моделях. Тем не менее, многочисленные человеческие фенотипы не могут быть успешно воспроизведена в мышах, в основном из-за биологических различий, существующих между двумя видами. С другой стороны, доступ к ткани человека может быть ограничен и зачастую не обеспечивают достаточное количество материала должно быть получено для углубленных экспериментальных исследований. Области сердечно-сосудистой биологии и страдает от этих ограничений: физиология человеческого сердца значительно отличается от мыши, и значительное количество ткани сердца доступна только посмертные или во время операции на сердце. Поиск оптимального источника для разграничения функциональных человека КМ Таким образом, становится центральной темой в сердечно-сосудистой биологии и много усилий было сделано для решения этой проблемы. Различные типы клетки были предложены, яncluding скелетных миобластами, местные сердечных стволовых клеток, мононуклеарных клеток костного мозга, эндотелиальные предшественники, и мезенхимальных стволовых клеток. Однако данные, полученные с использованием этих клеток не была последовательной 4.

Вывод человеческих эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) первые 5 и новаторские открытия индуцированных плюрипотентных стволовых (плюрипотентных) клеток Яманака и Thomson 6,7 позже, видимо, обеспечивает решения: эти клетки обладают способностью расти бесконечно, и потенциал, чтобы дать подняться на все клетки производные трех зародышевых листков, в том числе КМ. Применение плюрипотентных клетках предлагает дополнительные преимущества: были построены на основе аутологичных клеток взрослой, они обладают таким же генома человека или пациента, из которых они получены. Поэтому они позволяют развитие в пробирке моделей, способ исследования человеческих генетических заболеваний и механизмы развития. В силу этой особенности плюрипотентных клеток также может Øvercome проблемы, связанные с иммунным отторжением и этические вопросы 8. По этим причинам, хотя ЭСК все еще представляют собой золотой стандарт в области биологии стволовых клеток, исследователи по всему миру в настоящее время переход к более клеточной технологии IP-адресов.

плюрипотентных клеток в настоящее время используются для моделирования болезней человека в пробирке при различных условиях, включая врожденные сердечно-сосудистых расстройств 9,10. В последнее время применение плюрипотентных моделирования заболевании клетки была выполнена для моногенных расстройств сердечного (то есть задолго синдрома QT, катехоламинергическая полиморфная желудочковая тахикардия) и патологий, в котором пороки сердца являются частью сложного фенотипа (т.е. Leopard и Тимоти синдромов, дилатационная кардиомиопатия). Эти отчеты подтвердили, что пациент-специфические плюрипотентных клеток, которые дифференцируются в КМ экран как фенотипические и функциональные характеристики, как и болезнь в естественных условиях.

Однако существуетпо-прежнему много проблем для повышения эффективности индукции плюрипотентных клеток в сердечной линии. Спонтанное возникновение сервера почтовых ящиков из ЭСК человека через образование агрегатов называют эмбриональные тельца (ЭТ) оказались успешными 17. После этого открытия, многие другие методы были предложены. Многие группы значительно повысить эффективность дифференциации протокола и перешли к определенным химическим и животных, свободных от произведений культуры реагентов (см. лицедейство, К., и др.., Circulation исследований (2012) для всеобъемлющего обзора всех существующих методов 3 ).

Тем не менее, классический метод, основанный на EB агрегации еще представляет чаще всего используются для выполнения функциональных исследований и исследования механизмов болезни. Предлагаемый протокол основан на агрегацию клеток плюрипотентных в ЭТ и культуры в присутствии сыворотки и аскорбиновая кислота, которая была показана для повышения сердечной процесс дифференциации и роsitively повлиять на созревание этих клеток 18,19. В этой статье мы рассмотрим эту методику в деталях и покажет, как использовать без фидерного слоя линий плюрипотентных ячейки для создания конкретного пациента полученных ИПС-CMS.

Protocol

1. Без фидерного слоя Техническое обслуживание и пассажи клеток человека плюрипотентных Линии Подготовьте Матригель покрытием блюд. Оттепели один флакон человека ESC-квалифицированный матрицы на льду в течение одного часа и разбавить его в 25 мл среды DMEM-F12 среду. Добавить 1 мл до 35 ?…

Representative Results

В наших исследованиях мы сгенерировали КМ от нескольких линий плюрипотентных ячейки. Эти строки были изначально формируется на слое подачи MEF, но были немедленно помещены на матригеле использованием определенной среде (либо mTESR1 или Nutristem). Различные анализы были использованы для прове…

Discussion

Плюрипотентных стволовых клеток есть потенциал, чтобы дифференцировать спонтанно в КМ, хотя и с низкой эффективностью и высокой вариабельности линий. Разработку новых методов индукции сконцентрировала свое внимание на повышении эффективности процесса и движется в сторону более опр?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

BS при поддержке Университета Милан-Бикокка летних студенческих программ обучения исследований; Работа выполнена при поддержке из средств Министерства здравоохранения Италии и итальянским министерством образования, университетов и исследований и Фонд Хуманитас ГХ; Мы благодарим Майкла В.Г. Латронико в критическом чтении рукописи.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
      Media and Reagents
Human ESC-qualified Matrix BD Biosciences 354277 Thaw the 5 ml bottle at 4 °C on ice O/N, aliquot in pre-chilled cryo-tubes on ice, according to the data sheet dilution instructions and store at -20 °C .
Fibronectin, from human plasma, 0.1% solution Sigma F0896-2MG Working concentration: 5 μg/cm2
Laminin Sigma L2020-1MG Working concentration: 5 μg/cm2
PBS (no Mg and Ca), 10X Lonza BE17-515F  
PBS (with Mg and Ca), 10X Bio Sera XC-S2067/500  
Dispase II, neutral protease, grade II Roche 4942078001 Stock: 10 mg/ml in DMEM-F12 at -20 °C, working solution: 1 mg/ml in PBS (no Mg/Ca)
Trypsin/EDTA, 0.5% Sigma T3924  
Collagenase type 2 Worthington 4176 Dilute to 480 U/ml (e.g. 1.6 mg/ml) in PBS with Mg and Ca
DMEM-F12 Life Technologies 21331-020  
Knockout DMEM Life Technologies 10829-018  
Knockout Serum Replacement (KSR) Life Technologies 10828-028 Thaw at 4 °C, aliquot and store at -20 °C
Foetal Bovine Serum (origin South America) Invitrogen 10270-106 Batches should be tested for their cardiogenic potential. Thaw at 4 °C, heat-inactivate at 56 °C for 30 min, aliquot and store at -20 °C
PenStrep, penicillin-Streptomycin, 100X Life Technologies 15140-122  
GlutaMAX, 100X Life Technologies 35050-038  
MEM NEAA, 100X Invitrogen 11140-135  
N2 supplement, 100X Life Technologies 17502-048  
B27 supplement, 50X Life Technologies 12587-010  
2-mercaptoethanol Invitrogen 31350-010  
Gelatin, from porcine skin Sigma G1890-100G Make stock at 1% in water, store at -20 °C. Dilute to 0.1% in PBS and keep at 4 °C
mTeSR1 Stem Cell Technologies 5850 Combine Supplement 5X with the basic medium, aliquot and store at -20 °C. Do not keep complete medium at 4 °C for more than 1 week
Nutristem hESC XF Stemgent from Biological Industries 05-100-1A Thaw at 4 °C O/N, aliquot and store at -20 °C until use. Aliquots may be kept at 4 °C for no more than a week.
mFreSR Stem Cell Technologies 5853  
Ascorbic acid Sigma A4544-25G Prepare stocks at 10 mg/ml in water. Store aliquots at -20 °C in the dark. Add to EBM at the final concentration (500X)
      Plasticware
35 mm culture dishes Becton Dickinson 353001  
Cell scraper Corning Incorporated 3008  
12-well plates Becton Dickinson 353043  
Permanox 2-well chamber slides Thermo Fisher Scientific 177437  
Glass 2-well chamber slides Thermo Fisher Scientific 177380  
6-well plates, ultra-low-attachment surface Corning Incorporated 3471  
18G needle Becton Dickinson 304622  
Glass pasteur pipettes, 230 mm VWR International 612-1702  
2.5 ml syringe Becton Dickinson 300188  
      Equipments
IVF Workstation KSystem, by Nikon    
Nikon SMZ1500 Stereomicroscope Nikon    

Referências

  1. Di Pasquale, E., Latronico, M. V., Jotti, G. S., Condorelli, G. Lentiviral vectors and cardiovascular diseases: a genetic tool for manipulating cardiomyocyte differentiation and function. Gene Therapy. 19, 642-648 (2012).
  2. Laflamme, M. A., Murry, C. E. Heart regeneration. Nature. 473, 326-335 (2011).
  3. Mummery, C. L., et al. Differentiation of human embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells to cardiomyocytes: a methods overview. Circulation Research. 111, 344-358 (2012).
  4. Wu, S. M., Chien, K. R., Mummery, C. Origins and fates of cardiovascular progenitor cells. Cell. 132, 537-543 (2008).
  5. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
  6. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  7. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  8. Yamanaka, S. A fresh look at iPS cells. Cell. 137, 13-17 (2009).
  9. Josowitz, R., Carvajal-Vergara, X., Lemischka, I. R., Gelb, B. D. Induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes as models for genetic cardiovascular disorders. Curr. Opin. Cardiol. 26, 223-229 (2011).
  10. Park, I. H., et al. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134, 877-886 (2008).
  11. Carvajal-Vergara, X., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell-derived models of LEOPARD syndrome. Nature. 465, 808-812 (2012).
  12. Moretti, A., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell models for long-QT syndrome. N. Engl. J. Med. 363, 1397-1409 (2010).
  13. Yazawa, M., et al. Using induced pluripotent stem cells to investigate cardiac phenotypes in Timothy syndrome. Nature. 471, 230-234 (2011).
  14. Itzhaki, I., et al. Modeling of catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia with patient-specific human-induced pluripotent stem cells. Journal of the American College of Cardiology. 60, 990-1000 (2012).
  15. Jung, C. B., et al. Dantrolene rescues arrhythmogenic RYR2 defect in a patient-specific stem cell model of catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia. EMBO Molecular Medicine. 4, 180-191 (2012).
  16. Sun, N., et al. Patient-specific induced pluripotent stem cells as a model for familial dilated cardiomyopathy. Science Translational Medicine. 4, 130ra147 (2012).
  17. Kehat, I., et al. Human embryonic stem cells can differentiate into myocytes with structural and functional properties of cardiomyocytes. The Journal of Clinical Investigation. 108, 407-414 (2001).
  18. Cao, N., et al. Ascorbic acid enhances the cardiac differentiation of induced pluripotent stem cells through promoting the proliferation of cardiac progenitor cells. Cell Research. 22, 219-236 (2012).
  19. Takahashi, T., et al. Ascorbic acid enhances differentiation of embryonic stem cells into cardiac myocytes. Circulation. 107, 1912-1916 (2003).
  20. Moretti, A., et al. Patient-specific induced pluripotent stem-cell models for long-QT syndrome. N. Engl. J. Med. 363, 1397-1409 (2011).
  21. Watanabe, K., et al. A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 25, 681-686 (2007).
check_url/pt/50429?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Di Pasquale, E., Song, B., Condorelli, G. Generation of Human Cardiomyocytes: A Differentiation Protocol from Feeder-free Human Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (76), e50429, doi:10.3791/50429 (2013).

View Video