Summary

Um método aperfeiçoado para a preparação de colágeno tipo I Da Pele

Published: January 21, 2014
doi:

Summary

Procedimentos tradicionais para o isolamento do tipo solúvel 1 colágeno (col1) requerem cerca de 10 dias do início ao fim por causa de incubações tampão longas e trabalhosas resuspensions de fibrilas. Aqui, nós descrevemos um meio para purificar a partir de pequenas biópsias COL1 dérmicos em menos de 3 horas.

Abstract

Tipo 1 Solúvel colagénio (COL1) é amplamente utilizado como um substrato adesivo para culturas de células e como um andaime para aplicações de regeneração celular. Clinicamente, esta proteína é amplamente utilizado para a cirurgia estética, injeções dérmicas, enxerto ósseo e cirurgia reconstrutiva. As fontes de COL1 para estes processos são geralmente não-humanos, o que aumenta o potencial para a inflamação e a rejeição, bem como a transmissão da doença de xenobióticos. Em vista disto, um método eficiente e rápido para purificar COL1 de quantidades limitadas de tecidos autologously derivados iria contornar muitos destes problemas, no entanto, os protocolos de isolamento convencionais são demorados e muitas vezes necessitam de grandes quantidades de tecidos colagenosos. Aqui, demonstramos um método de extracção COL1 eficiente que reduz o tempo necessário para isolar e purificar a proteína a partir de cerca de 10 dias para menos de 3 horas. Escolhemos a derme como a fonte de tecido devido à sua disponibilidade durante muitos procedimentos cirúrgicos. Tseu método usa buffers de extração tradicionais combinados com agitação vigorosa e filtração centrífuga para obter altamente pura, COL1 solúvel de pequenas quantidades de cório. Resumidamente, as biópsias da derme são lavados em gelada dH2O após a remoção de gordura, tecido conectivo, e cabelo. As amostras de pele são retirados de proteínas e polissacarídeos noncollagenous usando 0,5 M de acetato de sódio e uma alta velocidade de bancada homogeneizador. O colagénio de sólidos residuais é subsequentemente extraído com um tampão de citrato de sódio 0,075 M com o homogeneizador. Estes extractos são purificados usando 100.000 MW de corte filtros centrífugos que produzem preparações COL1 de qualidade comparável ou superior aos produtos comerciais ou aquelas obtidas através de procedimentos tradicionais. Prevemos que este método vai proporcionar a utilização dos derivados de autologously COL1 para uma multiplicidade de pesquisa e aplicações clínicas.

Introduction

Durante décadas, os investigadores e os fornecedores comerciais isolaram COL1 solubilizado a partir de uma variedade de fontes de tecidos, incluindo a pele e tendões usando uma variação de um protocolo de extracção de ácido simples, seguido de neutralização, o que resulta numa libertação de uma matriz de fibrilas COL1 organizados que podem ser utilizados para uma infinidade de aplicações biomédicas 1-4. Embora existam muitos exemplos de aplicações clínicas para COL1, alguns deles empregam COL1 autologously derivados porque a preparação desta proteína requer longas extrações levando dias ou semanas para realizar 5-7. Como resultado, os investigadores e médicos investigação utilizam geralmente caros, preparações comerciais de COL1 que são preparados usando os tecidos não-humanas, tais como rato, bovino, porcino ou cório ou usando pele retiradas de cadáveres ou depois da circuncisão masculina. Para aplicações regenerativas, muitos destes produtos apresentam variabilidade no que diz respeito à sua capacidade para formar sólidomatrizes ou construções de tecidos capazes de suportar a ligação de células e o crescimento. Por conseguinte, existe uma grande necessidade de um novo método normalizado concebido para extrair rapidamente COL1 a partir de fontes de tecidos autólogos acessíveis e abundantes.

Tal método poderia economizar tempo e dinheiro no ambiente de pesquisa, onde COL1 poderia ser extraído do modelo animal de interesse e utilizado para testes pré-clínicos de tecidos artificiais montados em andaimes à base de colágeno. Ao mesmo tempo, ter a opção de usar um rapidamente isolada, COL1 autologously derivado na clínica seria aumentar a segurança geral dos pacientes que, de outra forma recebem alogénicas ou xenogénicas preparações. Para os pacientes que receberam uma preparação autogeneic, este método simplificado seria reduzir bastante o intervalo entre a coleta de biópsia e aplicação de colágeno. Por estas razões, buscamos aperfeiçoar um método de isolamento e purificação COL1 estabelecido há muito tempo usando ag de alta velocidadeacreditação e de exclusão de tamanho de centrifugação. Este método é simples de executar, usando soluções padrão e equipamentos encontrados em muitos laboratórios. Ao empregar a agitação de alta velocidade, o nosso protocolo reduz o tempo necessário para isolar solúvel, dérmica COL1 de aproximadamente 10 dias para menos de 3 horas 8. Importante, este método pode ser facilmente realizada no cenário clínico, a fim de preparar COL1 autologously-derivado para utilização em doentes durante um único conjunto de procedimentos.

Protocol

Aqui vamos demonstrar o isolamento de COL1 de pele de cordeiro. Como escrito, este protocolo pode também ser utilizado com êxito para isolar COL1 de coelho e pele humana. 1. Prepare dérmica Amostra Equilibrar todos os reagentes a 4 ° C antes de usar. Lavar amostra dérmica (25-50 g) em gelada dH 2 O e remover qualquer lã, pele, cabelo ou com creme depilatório. Use uma lâmina de barbear de ponta única para raspar a limpo amostra de tecido conj…

Representative Results

Este protocolo de isolamento COL1 requer cerca de 2 horas e 15 minutos para ser concluído. A Figura 1 mostra um diagrama esquemático que representa as principais etapas deste processo. Preparação da amostra e realizando os 7 ciclos de agitações de alta velocidade e lavagens com acetato de sódio leva cerca de 35 minutos (Figuras 1A-C). Realizando uma agitação e enxágüe ciclo com dH2O demora cerca de 5 min (Figuras 1D e 1E). A adição de citrato de …

Discussion

Um componente importante do presente método é a compressão eficaz repetida da amostra cutânea para remover o excesso de líquido. É essencial para remover tanto quanto possível, de acetato de sódio no passo de 2,5 por compressão da amostra. Usamos uma espátula para compactar a pele contra o lado do tubo, no entanto, gaze também pode ser usado, embora isto exigir a remoção da amostra do tubo e aumentar o tempo necessário para realizar estes passos. Da mesma forma, é importante para comprimir a amostra no pa…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado por uma bolsa de investigação dos Institutos Nacionais de Saúde (HL068915 para DBC), uma nova Researcher Award do Fundo de Investigação Thrasher (a PAC), um Grant-in-Aid da American Heart Association (12GRNT11910008 para DBC) , uma bolsa de investigação da Fundação das Crianças do Coração (para DBC) e doações para Hospital Cardiológico Fundo das Crianças de Boston Condução, a família de Ryan Endowment, e por David Pullman.

Materials

FastPrep-24 System MP Biomedicals 116004500
Centrifuge Beckman J6-MI Swing bucket rotor to accommodate 50 mL conical tubes at 3200 g.

Referências

  1. Nageotte, J. Coagulation fibrillaire in vitro du collagène dissous dans un acide dilué. CR hebd. séances Acad. Sei. 184, 115 (1927).
  2. Schmitt, F. O., Hall, C. E., Jakus, M. A. Electron microscope investigation of the structure of collagen. J. Cell Comp. Physiol. 20, 11-33 (1942).
  3. Choi, Y. H., et al. Cardiac conduction through engineered tissue. Am. J. Pathol. 169, 72-85 (2006).
  4. Pacak, C. A., Cowan, D. B. Fabrication of myogenic engineered tissue constructs. J. Vis. Exp. (27), (2009).
  5. Cliche, S., Amiot, J., Avezard, C., Gariepy, C. Extraction and characterization of collagen with or without telopeptides from chicken skin. Poultry Sci. 82, 503-509 (2003).
  6. Rajan, N., Habermehl, J., Cote, M. F., Doillon, C. J., Mantovani, D. Preparation of ready-to-use, storable and reconstituted type I collagen from rat tail tendon for tissue engineering applications. Nat. Protoc. 1, 2753-2758 (2006).
  7. Seifter, S., Gallop, P., Colowick, S., Kaplan, N. Preparation and properties of soluble collagens. Methods in Enzymology. , (1963).
  8. Pacak, C. A., Powers, J. M., Cowan, D. B. Ultrarapid purification of collagen type I for tissue engineering applications. Tissue Eng. Part C Methods. 17, 879-885 (2011).
  9. Ohan, M. P., Dunn, M. G. Glucose stabilizes collagen sterilized with gamma irradiation. J. Biomed. Mater. Res. A. 67, 1188-1195 (2003).
  10. Tyan, Y. C., Liao, J. D., Lin, S. P., Chen, C. C. The study of the sterilization effect of gamma ray irradiation of immobilized collagen polypropylene nonwoven fabric surfaces. J. Biomed. Mater. Res. A. 67, 1033-1043 (2003).
  11. Ber, S., Torun Kose, G., Hasirci, V. Bone tissue engineering on patterned collagen films: an in vitro study. Biomaterials. 26, 1977-1986 (2005).
  12. Liu, Y., Sun, S., Singha, S., Cho, M. R., Gordon, R. J. 3-D femtosecond laser patterning of collagen for directed cell attachment. Biomaterials. 26, 4597-4605 (2005).
  13. Thakar, R. G., Ho, F., Huang, N. F., Liepmann, D., Li, S. Regulation of vascular smooth muscle cells by micropatterning. Biochem. Biophys. Res. Comm. 307, 883-890 (2003).
  14. Leighton, J., Justh, G., Esper, M., Kronenthal, R. L. Collagen-coated cellulose sponge: three dimensional matrix for tissue culture of Walker tumor 256. Science. 155, 1259-1261 (1967).

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Citar este artigo
Pacak, C. A., MacKay, A. A., Cowan, D. B. An Improved Method for the Preparation of Type I Collagen From Skin. J. Vis. Exp. (83), e51011, doi:10.3791/51011 (2014).

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