Summary

Methode voor het verkrijgen van Primary eierstokkankercellen Van Solid Exemplaren

Published: February 04, 2014
doi:

Summary

Deze studie beschrijft een gedetailleerde methode voor de isolatie en karakterisering van primaire eierstokkanker cellen van vaste klinische monsters. Eierstokkanker klinische monsters worden onderworpen aan enzymatische vertering om levensvatbare, fibroblast gratis ovariumcarcinoom (EOC) cellen zeer geschikt voor verdere toepassingen te verkrijgen.

Abstract

Betrouwbare instrumenten voor het onderzoeken van eierstokkanker initiatie en progressie zijn dringend nodig. Hoewel het gebruik van eierstokkanker cellijnen een waardevol hulpmiddel voor het begrijpen van eierstokkanker, het gebruik ervan heeft vele beperkingen. Deze omvatten het gebrek aan heterogeniteit en de overvloed aan genetische veranderingen geassocieerd met uitgebreide in vitro passage. Hier beschrijven we een werkwijze die zorgt voor een snelle vaststelling van primaire eierstokkanker cellen vormen vaste klinische monsters verzameld op het moment van de operatie. De methode worden klinische specimens enzymatische digestie gedurende 30 minuten. De geïsoleerde celsuspensie wordt toegestaan ​​om te groeien en kan worden gebruikt voor stroomafwaartse toepassing waaronder drug discovery. Het voordeel van primaire eierstokkanker cellijnen vastgesteld eierstokkanker cellijnen is dat ze representatief zijn voor de oorspronkelijke specifieke klinische monsters die afkomstig zijn van en kunnen worden afgeleid van verschillende locaties of primary of uitgezaaide eierstokkanker.

Introduction

Ondanks de relatief lage incidentie, eierstokkanker is de dodelijkste van de gynaecologische aandoeningen en de vijfde belangrijkste oorzaak van sterfgevallen door kanker onder vrouwen 1,2. Dit is voornamelijk te wijten aan het gebrek aan betrouwbare instrumenten en modellen die trouw recapituleren de initiatie en progressie van de ziekte 3. De meeste van onze huidige kennis over eierstokkanker is mogelijk door het gebruik van geïmmortaliseerde ovariële oppervlak epitheelcellen (IOSEs), eierstokkanker cellijnen en primaire eierstokkanker cellen gewonnen uit ascitisvloeistof 4-7. Helaas is het gebruik ervan heeft verschillende beperkingen waaronder een aantal genetische en fenotypische veranderingen in verband met immortalisatie proces of in vitro passages en de heterogeniteit van de bevolking voortvloeien uit ascitisvloeistof bereiding.

Daarom primaire eierstokkanker cellen afkomstig van herkenbare en specifieke stevige exemplaren van eierstokkanker vertegenwoordigen een unique hulpmiddel voor het bestuderen van de eierstokken progressie van kanker.

De belangrijkste moeilijkheden bij het verkrijgen van deze kwaadaardige cellen zijn te wijten aan een overmatige groei van stromale cellen of fibroblasten, samen met het verlies van levensvatbaarheid en voortijdige gebrek aan proliferatieve capaciteit in de cultuur van deze EOC cellen. Verschillende methoden om eencellige suspensies Om vanaf solide tumoren bestaat, door mechanische middelen of enzymatische dissociatie, maar bepaalde technieken leveren een grotere hoeveelheid van de gewenste uitkomst 8. Hier laten we zien dat enzymatische digestie met dispase II resulteert in een effectief herstel van levensvatbare,-fibroblast gratis EOC cellen. De aldus verkregen EOC culturen zeer gevoelig voor genetische manipulatie en zijn ook bruikbaar in drug tests; die EOC culturen zijn geschikt voor vele verdere toepassingen.

Protocol

Ethiek Verklaring Solid exemplaren van eierstokkanker werden verkregen van de Universiteit van Minnesota Tissue Procurement Facility (TPF) na Institutional Review Board Committee: Human Onderwerp Board (IRB) goedkeuring. 1. Reagens Setup Bereid volledige DMEM medium aan te vullen DMEM met 10% FBS en 100 eenheden penicilline-streptomycine. Bewaar het bij 4 ° C en opwarmen tot 37 ° C vóór gebruik. Aliquot dispase II in afzonderlijke volumes van …

Representative Results

Verse klinische monsters van eierstokkanker verzameld na operatie (figuur 1) en in stukjes (Figuren 2A en 2B) die de cel suspensie. Dit zorgt voor een optimale belichting van de specimens aan de enzymatische behandeling. Cel suspensie wordt blootgesteld aan enzymatische digestie en geïncubeerd bij 37 ° C gedurende 30 minuten. Tijdens de incubatietijd de suspensie steeds troebel (vooral na elke roeren) en dit is een teken van weefsel disaggregatie. Aan het einde van de…

Discussion

Een beter begrip van eierstokkanker etiologie en ontwikkeling is cruciaal voor het verbeteren van de uitkomst van de vrouwen die door deze verwoestende ziekte. In deze context is het gebruik van gevestigde en "commercieel verkrijgbaar" eierstokkanker cellijn ongetwijfeld enorm nuttig. Echter, vandaag weten we dat kanker cellijnen zijn niet representatief voor de menselijke tumor ze afkomstig zijn uit in vele aspecten, waaronder het gebrek aan heterogeniteit 9,10.

Hier me…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We zouden graag de medewerkers van de Tissue Procurement Facility van de Universiteit van Minnesota bedanken voor hulp met de patiënt weefselmonsters collectie. Dit werk werd ondersteund door het Ministerie van Defensie eierstokkanker Research Program (OCRP) OC093424 naar MB, door Randy Shaver Kankeronderzoek en de communautaire Fonds MB, door de Minnesota eierstokkanker Alliance MB en door de Gynaecologische Oncologie Departementale fonds MB. De financiers hadden geen rol in onderzoeksopzet, gegevensverzameling en-analyse, besluit tot publicatie of voorbereiding van het manuscript.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
REAGENTS:
1X PBS, sterile  Invitrogen 14190-144
 Screw lid, polypropylene specimen container, sterile (Thermoscientific) Thermoscientific 02 1090
 DMEM medium, sterile  Invitrogen 11995-065
 Fetal bovine serum, sterile Thermo Scientific Hyclone SH30396.03
 100x penicillin-streptomycin, liquid (Invitrogen) Invitrogen 15140-122
 Dispase II, sterile (Roche) Roche 04942 078 001
 Small fine-tip forceps and scalpel blade, sterile Fisher Scientific forceps: 08-953E, blades: 08-927-5D
 Small dissecting scissors, sterile Fisher Scientific 08-945
 15 ml conical capped tubes, sterile (BD Falcon) BD, Falcon 352097
50 ml conical capped tubes, sterile (BD Falcon) BD, Falcon 352027
 10 ml serological pipette, sterile  Corning 13-678-11E
6 ml syringe plunger, sterile  Tyco Healthcare 8881516911
Nylon filter (70 μm ) cell strainer, sterile (BD Falcon) BD Falcon 352350
5-cm Petri dish, sterile  Corning 430166
10-cm Petri dish, sterile  Corning 430167

Referências

  1. Kurman, R. J., Visvanathan, K., Roden, R., Wu, T. C., Ie M, S. h. i. h. Early detection and treatment of ovarian cancer: shifting from early stage to minimal volume of disease based on a new model of carcinogenesis. Am. J. Obstet. Gynecol. 198 (4), 351-356 (2008).
  2. Kuhn, E., Kurman, R. J., Shih, I. M. Ovarian Cancer Is an Imported Disease: Fact or Fiction. Curr. Obstet. Gynecol. Rep. 1 (1), 1-9 (2012).
  3. Sarojini, S., et al. Early detection biomarkers for ovarian. J. Oncol. , (2012).
  4. Shepherd, T. G., Theriault, B. L., Campbell, E. J. Nachtigal M.W. Primary culture of ovarian surface epithelial cells and ascites-derived ovarian cancer cells from patients. Nat. Protoc. 1 (6), 2643-2649 (2006).
  5. Tsao, S. W., et al. Characterization of human ovarian surface epithelial cells immortalized by human papilloma viral oncogenes (HPV-E6E7 ORFs). Exp. Cell. Res. 218 (2), 499-507 (1995).
  6. Auersperg, N., Maines-Bandiera, S. L., Dyck, H. G., Kruk, P. A. Characterization of cultured human ovarian surface epithelial cells: phenotypic plasticity and premalignant changes. Lab. Invest. 71 (4), 510-518 (1994).
  7. Brewer, M., et al. In vitro model of normal, immortalized ovarian surface epithelial and ovarian cancer cells for chemoprevention of ovarian cancer. Gynecol. Oncol. 98 (2), 182-192 (2005).
  8. Sueblinvong, T., et al. Establishment, characterization and downstream application of primary ovarian cancer cells derived from solid tumors. PLoS One. 7 (11), (2012).
  9. Rockwell, S. In vivo-in vitro tumour cell lines: characteristics and limitations as models for human cancer. Br. J. Cancer Suppl. 41 (4), 118-122 (1980).
  10. Wong, C., Chen, S. The development, application and limitations of breast cancer cell lines to study tamoxifen and aromatase inhibitor resistance. J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 131 (3-5), 83-92 (2012).
check_url/pt/51581?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Pribyl, L. J., Coughlin, K. A., Sueblinvong, T., Shields, K., Iizuka, Y., Downs, L. S., Ghebre, R. G., Bazzaro, M. Method for Obtaining Primary Ovarian Cancer Cells From Solid Specimens. J. Vis. Exp. (84), e51581, doi:10.3791/51581 (2014).

View Video